Терапевтическая техника в ветеринарии

Личная гигиена и техника безопасности при работе с животными. Методы введения лекарственных веществ. Магнитные зонды и техника их постановки. Осложнения при введении зондов и способы их устранения. Терапия раздражающими и отвлекающими средствами.

Рубрика Сельское, лесное хозяйство и землепользование
Вид курсовая работа
Язык русский
Дата добавления 22.05.2012
Размер файла 109,7 K

Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже

Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.

Жидкость в прямую кишку (ректально) можно вводить двумя способами - гидравлическим и нагнетательным. При гидравлическом введении жидкостей в прямую кишку она поступает из резервуара, расположенного выше тела животного, под воздействием силы тяжести.

Для проведения клизм с гидравлической подачей жидкости можно использовать кружку Эсмарха, клистерную кружку, металлический, стеклянный, пластмассовый резервуар или бак большой емкости с имеющейся выводной трубкой в нижней части, к которой подсоединяют длинную резиновую трубку. Чтобы до введения в прямую кишку жидкость удержать в резервуаре, на резиновую трубку накладывают металлический зажим. Для мелких животных можно использовать воронку с резиновой трубкой, а также цилиндр от шприца Жане с резиновой трубкой.

При нагнетательном введении жидкости в прямую кишку используют приборы и приспособления, которые создают повышенное давление жидкости. Для нагнетательной клизмы воду в прямую кишку для крупных животных подают с помощью краскопульта или водопроводной сети. Для этого способа необходимо иметь смеситель для создания воды определенной температура, водомер, показывающий количество подаваемой воды. Если нет водомера, тогда предварительно измеряют за какое время вытекает необходимое количество воды. Нагнетательные клизмы проводят осторожно под небольшим напором воды.

Для проведения глубоких клизм можно использовать дармтампонаторы, которые бывают резиновые (Меликсетяна), металлические (Майера) и брезентовые (Целишева). Для проведения нагнетательных клизм мелким животным можно использовать спринцовки разного объема.

При проведении клизм животное фиксируют в стоячем положении, если это невозможно, тогда животное фиксируют в лежачем положении. Для клизм раствор готовят заранее. Перед выполнением клизм у крупных животных желательно прямую кишку очистить от каловых масс рукой.

Резиновые трубки с наконечниками или дармтампонатором стерилизуют кипячением или протирают 70° этиловым спиртом. После этого наконечники резиновых трубок или дармтампонатор смазывают стерильным вазелином и осторожно вставляют в прямую кишку. Наконечник вводят в прямую кишку на глубину 20-30 см для крупных животных и на 3-5 см для мелких животных и только затем приступают к введению жидкости в прямую кишку.

Если наконечник при введении в прямую кишку встречает препятствие (упирается в стенку прямой кишки) или наблюдается прекращение тока жидкости, тогда следует наконечник с резиновой трубкой несколько выдвинуть, а затем медленно продвинуть вперед. Во время введения необходимо следить за тем, чтобы жидкость поступала медленно. Если наблюдается усиленный позыв к акту дефекации, тогда скорость введения жидкости необходимо уменьшить или прекратить введение, одновременно прижимая корень хвоста к анальному отверстию.

Очистительные клизмы проводят при запорах различного происхождения, при отравлениях, перед операциями, а также перед проведением лекарственных, капельных и питательных клизм. Очистительные клизмы опасны, а иногда и противопоказаны при перитонитах, желудочных и кишечных кровотечениях и воспалительных процессах в области ануса.

Введенная ректально лекарственная жидкость оказывает термическое, механическое и химическое воздействие на толстый отдел кишечника, при этом растягивает и раздражает кишечную стенку и разжижает каловые массы.

Обычно используют воду с температурой тела животного. При запорах, связанных с вялой перистальтикой кишечника или метеоризме, вода должна быть в пределах 20° С. Это связано с тем, что холодная вода, введенная в кишечник, усиливает перистальтику, а введение очень холодной воды может вызвать спазм кишечника.

При спазмах кишечника применяют воду с температурой около +40°С. Это связано с тем, что горячая вода замедляет перистальтику и хорошо отмывает слизь.

Механическое воздействие связано с растяжением кишечника, что вызывает усиление перистальтики. При опорожнительных клизмах в прямую кишку вводят за один прием лошадям - до 15 л, крупному рогатому скоту - до 20 л, овцам - до 3 л, свиньям - до 2 л, собакам - до 1 л, кошкам - до 0,1 л жидкости. В этом случае жидкость лучше вводить гидродинамическим способом. Чем больше объем жидкости вводится ректально и чем быстрее она поступает в прямую кишку, тем большим раздражающим действием она обладает. Количество жидкости, которое животное может удерживать в кишечнике зависит от состояния кишечной стенки. При вялой перистальтике ректально можно ввести большое количество жидкости, а при воспалительных процессах в толстом кишечнике быстро наступает акт дефекации, что препятствует введению большого объема жидкости. Чем медленнее вводить жидкость, тем дольше она удерживается в кишечнике. Для усиления перистальтики кишечника и лучшего разжижения каловых масс можно в воду добавить мыло или глицерин.

Очистительная клизма проводится перед всеми видами клизм для освобождения прямой кишки от каловых масс путем введения крупным животным 7-10 л, а для мелких - 0,5-1 л воды, подогретой до температуры тела.

Промывательная сифонная клизма отличается от опорожнительной тем, что при них удаляется не только кал, но и при более длительном промывании удаляются со слизистой оболочки кишечника слизь, гной и токсические продукты. Эту неоднократную манипуляцию осуществляют теплой водой (около 400С) и слабыми растворами натрия хлорида, калия перманганата, фурацилина и других лекарственных веществ. Количество вводимой жидкости увеличивают в 1,5 раза, по сравнению с опорожнительными клизмами. Теплую жидкость вводят ректально при помощи воронки с резиновым шлангом, который посредством стеклянной трубки соединяют с более короткой резиновой трубкой. Диаметр просвета трубки должен быть не менее 1,5 см. Свободный конец резиновой трубки смазывают вазелином и вводят глубоко в анальное отверстие, а в воронку вливают жидкость. После этого воронку опускают ниже, чтобы жидкость с примесью каловых масс выходила обратно. Содержимое воронки выливают и процесс повторяют до тех пор, пока не будет вытекать чистая вода.

Послабляющие клизмы рассчитаны на слабительное действие, выражающееся усилением секреции или транссудации, и на регуляцию перистальтики. С этой целью применяют растительные или минеральные масла, глицерин, 23% растворы средних солей. Масла перед введением в прямую кишку предварительно подогреваются до 30-50°С и вводят крупным животным до 1,5 л, мелким - до 0,5 л. Для лучшего слабительного эффекта введенное масло задерживают в кишечнике на 15-20 минут. Для этого прижимают корень хвоста к анальному отверстию. При этом введенное в кишечник масло расщепляется с образованием послабляюще действующих жирных кислот. Однако и в нерас- щепленном виде масло, смазывая кишечную стенку, способствует удалению каловых масс.

Питательные клизмы проводят тогда, когда у животных длительное время отсутствовал аппетит и по разным причинам нельзя задать питательные вещества через зонд. Перед проведением питательной клизмы проводят освобождение прямой кишки с помощью очистительной клизмы. Затем через один час приступают к проведению питательной клизмы. Для этого используют 1020% раствор глюкозы, изотонический раствор натрия хлорида, рисовый, овсяный или пшеничный отвар, крахмальный клейстер и другие питательные смеси. Данные жидкости вводят в количестве 1-2 литра для крупных животных и 0,10,5 литра для мелких 2 - 3 раза в день. Длительное нахождение в прямой кишке питательных смесей может привести к интенсивному развитию там гнилостной и условно-патогенной микрофлоры, поэтому после питательных клизм рекомендуется через 0,5 - 1 час проводить очистительную клизму.

Субаквальную клизму применяют собакам с целью сквозного промывания кишечника и желудка при гастроэнтеритах и острых отравлениях.

Перед проведением субаквальной клизмы прямую кишку у собак освобождают с помощью очистительной клизмы. Животное фиксируют путем приподнимания задней части туловища. Затем в кружку Эсмарха наливают воду с температурой около 37-500С и вводят в прямую кишку. Чтобы вода не изливалась из прямой кишки на наконечник наматывают немного бинта или надевают резиновую трубку с таким расчетом, чтобы создать тампонаду кишечника. Кружку с водой поднимают на высоту 1,5-2 метра. Воду вводят до тех пор, пока не появится рвота, что указывает на поступление ее в желудок. В случае беспокойства животного введение жидкости прекращают, пока животное не успокоится.

Данную процедуру собаки переносят очень тяжело. В первые часы после проведения субаквальной клизмы животные отказываются от приема пиши, но затем аппетит восстанавливается и общее состояние улучшается.

Противопоказаниями для проведения субаквальной клизмы являются болезни сердца, почек, печени, язвы желудка, нарушения проходимости кишечника.

Терморегулирующие клизмы применяют при нарушении терморегуляции у животных. С этой целью при гипертермии применяют воду ниже 30-35°, а при гипотермии - 37-40°С.

Лекарственные клизмы делают животным для местного и резорбтивного действия. Для воздействия на слизистую оболочку кишечника применяют растворы вяжущих, обволакивающих и других средств, для воздействия на микрофлору - антимикробные средства.

Для резорбтивного действия иногда применяют успокаивающие, снотворные и другие вещества. Лекарственные вещества, обладающие раздражающими свойствами, вводят в прямую кишку вместе со слизистыми отварами. Объем лекарственных клизм крупным животным для местного действия - 2-5 литра, для резорбтивного - 0,5 литра.

Вводить лекарственные вещества в прямую кишку нужно медленно с температурой раствора около 30-40°С. Лекарственные растворы можно вводить в прямую кишку капельно со скоростью 40-60 капель в минуту. Такое введение имеет ряд преимуществ: лекарственные вещества лучше всасываются, не растягивают кишечник, не вызывают рефлекторного ускорения перистальтики.

Парентеральные методы введения лекарственных веществ Инъекции

Инъекции и вливания - введение в организм жидких лекарственных форм парентерально, то есть минуя желудочно-кишечный тракт.

Они бывают: внутрикожные, подкожные, внутримышечные, внутривенные, внутриартериальные, внутрисердечные, внутрикостные, внутритрахеаль- ные, внутрибрюшинные.

Инструменты и приборы для инъекции. Иглы. Иглы инъекционные состоят из трубки и оливы (канюли), которые изготавливают из нержавеющих металлов. Одноразовые иглы изготавливают из металлической трубки и пластмассовой канюли. Иглы снабжены стержнями (мандренами). Существует общепризнанная маркировка игл или их нумерация. Первые две цифры номера указывают на диаметр трубки в десятых долях миллиметра, последующие две (иногда три) - на длину иглы в миллиметрах. Например - 1230, 1530, 0830, 10120 ит. д.

Иглы инъекционные к цельностеклянным шприцам типа Луера обозначают теми же номерами, но с добавлением справа буквы "С", например 0813"С".

Шприцы. Системы шприцов разнообразны. В ветеринарной практике наиболее часто используются шприцы "Рекорд". "Провац-Рекорд", "Луера", Жане и другие.

Шприц "Рекорд" состоит из металлического поршня, стеклянного, с делениями, цилиндра в металлической оправе. Нижняя оправа имеет конус, который служит для насаживания иглы, а верхняя - шайбочку (крышку), которая препятствует выскальзыванию поршня из цилиндра. Металлический поршень имеет канавку для постановки уплотнительного металлического или силиконового кольца. Емкость шприцов типа "Рекорд" разная (1; 2; 5; 10 и 20 мл).

Шприц "Луер" сделан весь из стекла. Стеклянный поршень хорошо пришлифован к цилиндру и не пропускает жидкость. Шприц легко поддается механической очистке и стерилизации. Существенным недостатком этого типа шприцов является их непрочность. Особенно быстро ломается стеклянная коническая насадка для игл. Емкость шприцов типа "Луер" разная (1; 2; 5; 10 и 20 мл).

Шприц Провац- "Рекорд" отличается от шприцов типа "Рекорд" тем, что у него на стержне поршня имеются деления и подвижная шайбочка (бегунок), при помощи которой можно устанавливать (дозировать) объем жидкости, необходимый для одной инъекции. Емкость такого шприца может быть 1; 2; 5; 10 и 20 мл.

Шприц Жане состоит из стеклянного градуированного цилиндра и металлического или резинового поршня. Емкость шприцов Жане бывает 100; 150; 200 и 500 мл.

Аппарат Конькова (ри) состоит из стеклянного цилиндра емкостью 150 мл, резиновой трубки, металлической канюли и иглы.

Аппарат Боброва представляет собой широкогорлый градуированный сосуд с резиновой пробкой, в которой имеется два отверстия для изогнутых под прямым углом стеклянных трубок. Одна из них короткая - соединена с нагнетательными резиновыми баллонами; другая - длинная трубка - спускается почти до дна сосуда и соединяется посредством резиновой трубки с инъекционной иглой.

Системы для переливания крови, инфузионных растворов и кровезаменителей одноразового применения. Они состоят из соединительных прозрачных трубок, капельно-фильтрующего устройства и игл для присоединения к емкости с раствором и к животном. Имеется зажим, позволяющий регулировать скорость введения жидкости.

Для инъекций используют только стерильные иглы и шприцы.

Перед введением необходимо проверить качество раствора и подогреть его до температуры 37-40оС. Все парентерально вводимые лекарственные растворы должны быть стерильные. При введении растворов внимательно следят за реакцией животного, а при появлении беспокойства введение прекращают.

Перед выполнением инъекций моют и дезинфицируют руки. Шприц наполняют лекарственным раствором, поднимают его иглой вверх и небольшим продвижением поршня вытесняют из шприца и иглы воздух.

Если пузырьки воздуха находятся на стенках цилиндра шприца, тогда необходимо легким встряхиванием их удалить в верхнюю часть шприца. Перед введением шприц фиксируют в правой руке, при этом большим, средним и безымянным пальцем держат цилиндр шприца, мизинцем прижимают оливу иглы, а указательным - стержень поршня.

Внутрикожные инъекции. При внутрикожных инъекциях используют шприцы емкостью 1-2 мл и короткие тонкие инъекционные иглы или специальные иглы для внутрикожного введения. Внутрикожные инъекции применяют чаще всего при проведении аллергической диагностики. Крупным животным внутрикожные инъекции проводят в средней трети шеи, телятам - в области лопатки или в средней трети шеи, свиньям - на наружной поверхности уха, мелкому рогатому скоту - в складку с нижней стороны хвоста, курам - в бородку. Внутрикожно инъецируют небольшое количество жидкости (0,1-0,5 мл).

Перед внутрикожными инъекциями место укола подготавливают. Пальцами левой руки собирают кожу в небольшую складку, в которую делают укол почти параллельно поверхности кожи (рис. 19). Затем иглу постепенно продвигают дальше в толщу, тоже параллельно поверхности кожи. Закончив введение иглы в толщу кожи, проводят инъекцию раствора, нажимая на толкатель поршня. После этого иглу извлекают.

При правильно выполненной внутрикожной инъекции в коже образуется небольшое уплотнение с хорошо выраженными краями. При проникновении иглы, а следовательно и введении раствора в подкожную клетчатку, этого не наблюдается. В этом случае иглу слегка извлекают и придают ей другое направление.

Для выполнения внутрикожных инъекций используют шприцы с хорошо подогнанным поршнем, иначе жидкость будет просачиваться между стенкой шприца и поршнем.

Подкожные инъекции. Для подкожных инъекций можно использовать шприцы различной емкости, аппарат Боброва, системы для переливания крови и инъекционные иглы.

При проведении подкожных инъекций животное фиксируют в стоячем положении и инъецируют раствор в части тела, богатые подкожной клетчаткой и относительно бедные нервами и кровеносными сосудами. Подкожная клетчатка способствует быстрому рассасыванию лекарственного вещества, которое быстро попадает в большой круг кровообращения. Подкожные инъекции нельзя делать вблизи суставов, сухожильных влагалищ, хрящей и в местах прилегания сбруи у лошадей, или ошейника у собак. Подкожно можно вводить водные и масляные растворы лекарственных веществ, которые не обладают сильным раздражающим действием и не вызывают некроза тканей.

Лошадям и крупному рогатому скоту подкожные инъекции проводят в среднюю треть шеи, выше яремного желоба, за лопаткой и в области подгрудка; мелкому рогатому скоту - во внутреннюю поверхность бедра и в средней трети шеи; свиньям - в часть шеи, прилегающую к основанию уха, во внутреннюю поверхность бедра и в коленную складку; собакам и кошкам - во внутреннюю поверхность бедра, боковая поверхность грудной клетки.

При выполнении подкожных инъекций шприц фиксируют в правой руке, большим и средним пальцами левой руки на коже делают складку, а указательным в этой складке создают углубление. В образовавшееся углубление под углом 45-50° вводят иглу, при этом срез иглы направлен наружу. Иглу лучше вкалывать коротким резким движением на глубину не более % длины. Если иглу вкалывать на большую глубину, то при поломке ее обломавшаяся часть останется под кожей и извлечь ее можно только через разрез кожи. Если шприц нужно несколько раз наполнять лекарственным раствором, тогда иглу не извлекают из кожи, а отсоединяют от шприца.

При извлечении иглы кожу вокруг нее прижимают двумя пальцами левой руки и извлекают. Место инъекции обрабатывают дезинфицирующим раствором и массажируют. Если необходимо подкожно ввести большое количество лекарственной жидкости, тогда ее вводят в несколько мест. В одно место подкожно можно вводить до 30 мл жидкости, в зависимости от вида животного.

Иногда при подкожной инъекции масляных растворов образуются затвердения, тогда для их устранения необходимо согревать место инъекции при помощи грелок, инфракрасных лампилисогревающих компрессов.

Внутримышечные инъекции. Для внутримышечных инъекций можно использовать шприцы емкостью от 1 до 20 мл и инъекционные иглы. При проведении внутримышечных инъекций животное фиксируют в стоячем положении. Внутримышечно кроме медленно всасывающихся водных и масляных растворов можно вводить и взвеси лекарственных веществ, так как в мышцах много кровеносных сосудов, и сокращения мышц способствуют более быстрому рассасыванию инъецируемых жидкостей. Внутримышечно нельзя вводить резко гипо- или гипертонические жидкости, так как это может вызвать некроз тканей. Для проведения таких инъекций выбирают крупные группы мышц, избегая места расположения крупных нервов, крупных кровеносных сосудов, сухожильных влагалищ, суставов и костей. Обычно местом инъекции является группа ягодичных мышц, плечевая часть грудной мышцы, трехглавая мышца плеча, внутренняя поверхность бедра и верхняя средняя часть шеи, а у свиней еще и область шеи у основания ушной раковины.

Укол иглы производят перпендикулярно поверхности кожи на глубину 2 - 3 см, но не более 3/4 длины иглы и, надавливая на поршень шприца, инъецируют жидкость. При выполнении этой процедуры возможно попадание острия иглы в кровеносный сосуд, что может привести к летальному исходу. Для проверки правильности внутримышечного введения нужно поршень шприца несколько извлечь. Появление крови в шприце свидетельствует о нахождении иглы в кровеносном сосуде, что обязывает изменить направление иглы.

При извлечении иглы кожу вокруг нее прижимают двумя пальцами левой руки и затем извлекают.

Внутривенные инъекции. Для внутривенных инъекций можно использовать шприцы емкостью от 1 до 20 мл, аппарат Конькова, Боброва, цилиндр от шприца Жане, системы для переливаний жидкостей и инъекционные иглы.

Положительной стороной внутривенных введений является быстрое действие вводимых лекарственных веществ на организм, что позволяет применять данный способ введения в реанимационной и регидротационной терапии. Внутривенно можно вводить водные растворы, в т. ч. которые при внутримышечном и подкожном введении могут вызывать развитие некрозов тканей, отеков или абсцессов. Недостатком внутривенного введения лекарств енных веществ является то, что оно трудно выполнимо у строптивых и мелких животных, а также при судорогах и при падении кровяного давления.

Для внутривенных введений можно использовать стерильные изотонические или гипертонические водные растворы. Гипотонические растворы при внутривенном введении вызывают гемолиз эритроцитов.

При проведении внутривенных инъекций животное фиксируют в стоячем или в лежачем боковом положении.

Внутривенные инъекции лошадям, крупному и мелкому рогатому скоту удобно проводить в яремную вену на границе средней и верхней трети шеи.

При перемещении точки введения к голове возможно повреждение сонной артерии или введение растворов вместо яремной вены в сонную артерию.

Чтобы уточнить место расположения яремной вены, ее пережимают рукой или резиновым жгутом несколько ниже предполагаемого места прокола. Вена наполняется кровью и рельефно выступает, что облегчает введение. У хорошо упитанных животных даже хорошо наполненная кровью вена заметна плохо. В таких случаях, пережимая вену несколько раз, удается проследить движение кровяной волны. Кроме того, приподняв голову животного и слегка изогнув его шею в противоположную сторону можно создать такое положение, при котором яремная вена становится более заметной. Установив точную топографию яремной вены, иглу вкалывают через кожу в вену и направляют против тока крови. При проколе кожи иглу направляют под углом 40-45°С к ее поверхности (рис. 31), при этом скос иглы направлен наружу. Положение иглы, перпендикулярное коже, часто приводит к прокалыванию обеих стенок вены. Пункцию яремной вены можно проводить одномоментным и двухмоментным способом. При одномоментном способе иглу вводят толчком, стремясь проколоть и кожу и стенку вены. При двухмоментном способе первоначально прокалывают кожу, а затем прокалывают стенку вены. Если игла попадает в просвет вены, тогда из иглы кровь вытекает ровной струей, соответствующей ее внутреннему диаметру. Если же игла перфорировали обе стенки вены, тогда она только наполняется кровью. В этом случае, быстро оттянув иглу несколько назад, получают нормальную струю крови. Если этого не произошла, то возможно, что в просвете иглы успел образоваться тромб или игла забита кусочком кожи. Поэтому ее извлекают и заменяют другой. Получив нормальную струю вытекающей крови, иглу несколько продвигают в просвет сосуда и фиксируют в таком положении рукой. Затем, при использовании приборов с прозрачными трубками, струей лекарственного раствора удаляют из трубок воздух и подсоединяют к игле. При использовании резиновых трубок воздух из них удаляют струей крови. Для этого к игле подсоединяют прибор, опускают его ниже точки укола и ждут до тех пор, пока в него не начнет поступать кровь (рис. 33, 34). Даже небольшое количество воздуха, попавшее в кровеносное русло, вызывает воздушную эмболию и может привести к летальному исходу. После удаления воздуха из инфузионнай системы ее поднимают выше точки укола и прекращают пережимать вену. Скорость введения можно регулировать путем поднимания или опускания сосуда с вводимой жидкостью, а также при помощи специальных зажимов.

При внутривенном введении веществ, сильно раздражающих подкожную клетчатку, раствор набирают одной иглой, а пункцию вены делают другой. Во время введения в вену игла может выскользнуть из вены, и раствор попадает в подкожную клетчатку, образуя быстро увеличивающуюся припухлость. В таком случае, необходимо немедленно отсоединить инфузионный аппарат и через иглу ввести стерильный изотонический раствор натрия хлорида.

После окончания внутривенной инъекции иглу отделяют от инфузионной системы, промывают током крови, чтобы предотвратить попадание раздражающих веществ под кожу. Для промывания иглы кровью вену пережимают вновь, как это делалось перед введением иглы. Чтобы предотвратить образование гематом, вену пережимают выше места укола, ближе к голове животного, кожу вокруг иглы прижимают пальцами и только после этого извлекают иглу.

При использовании для внутривенных инъекций шприцев малой емкости иглу вкалывают в вену в соединенном со шприцом состоянии. Затем оттягивают поршень, в шприце появляется кровь, что указывает на правильное местонахождение иглы, и только после этого медленно производят инъекцию.

У крупного рогатого скота внутривенные инъекции можно проводить также в молочную вену.

У свиней внутривенные введения лекарственных растворов производят в большую ушную вену. Основание уха сдавливают резиновым жгутом или вену пережимают пальцем. Иглу направляют в сторону основания уха.

У собак и кошек удобно внутривенные инъекции производить в вену са- фена и в подкожную вену предплечья . Для этого лучше использовать инъекционные шприцы или системы для переливания крови, что дает возможность проводить медленные внутривенные вливания.

Внутрибрюшинные инъекции. Для внутрибрюшинных инъекций можно использовать шприцы емкостью от 1 до 20 мл, аппарат Конькова, Боброва, цилиндр от шприца Жане, системы для переливаний жидкостей и инъекционные иглы.

Положительной стороной внутрибрюшинных введений является быстрое действие вводимых лекарственных веществ на организм, что позволяет применять данный способ введения в реанимационной и регидратационной терапии. Внутрибрюшинно можно вводить водные растворы; которые не обладают раздражающим действием.

У крупного и мелкого рогатого скота внутрибрюшинные введения выполняют, фиксируя животных в стоячем положении. Инъекции проводят с правой стороны. У телят до 3-5 дня жизни внутрибрюшинные инъекции можно проводить как с правой стороны, так и с левой стороны. Место укола иглы находится на середине линии, соединяющей латеральный бугор подвздошной кости с последним ребром, ниже поперечных отростков поясничных позвонков на 6-8 смв зависимости от возраста животного. Место инъекции тщательно выстригают и обрабатывают 5%-ным спиртовым раствором йода. Кожу на этом месте несколько смещают. Иглу с хорошо подогнанным мандреном вводят в толщу кожи, направляя ее сверху вниз, несколько вращая, спереди назад по направлению на колено задней противоположной конечности. При перфорации брюшины слышен специфический хруст, Затем иглу продвигают на 0,5-1 см, вынимают мандрен, а иглу соединяют с инфузионным аппаратом, заполненным теплым раствором. При выполнении внутрибрюшинных инъекций поросятам их фиксируют за тазовые конечности головой вниз. При таком положении кишечник несколько смещается краниально. Место укола иглы находится между последними парами сосков на расстоянии 1 - 1,5 см от белой линии с левой или правой стороны. Иглу вкалывают под острым углом к телу животного.

Ягнятам внутрибрюшинно лекарственные растворы вводят, фиксируя их в стоячем положении. Иглу вкалывают в середине правой голодной ямки, сверху вниз и спереди назад в направлении голени противоположной конечности.

Удобно выполнять внутрибрюшинные инъекции при фиксации ягнят за тазовые конечности и вкалывая иглу с отступом в 2 см от белой линии несколько ниже пахового кольца или перед первым соском.

При выполнении внутрибрюшинных инъекций щенкам собак, пушных зверей и кошкам, их фиксируют несколько растянув туловище, держат головой вниз. Иглу вводят между пахом и белой линией несколько ниже первого соска.

Внутрикостные инъекции. Внутрикостные инъекции показаны при травмировании крупных вен, интоксикациях и при падении кровяного давления, когда нет возможности сделать внутривенную инъекцию. Красный костный мозг имеет богатую сеть капилляров венозной системы, поэтому введенные вещества быстро всасываются и попадают в кровеносное русло, что позволяет считать внутрикостные введения разновидностью внутривенных. Внутрикостно инъецируют те же растворы, что и внутривенно, за исключением сильно раздражающих. Для внутрикостных введений используют специальные иглы или инъекционные иглы с хорошо подогнанным мандреном.

Внутрикостные инъекции наиболее удобно и безопасно проводить в маклок, но можно делать и в грудную кость. При ведении в маклок точкой укола является треугольный выступ маклока с пальцевидным вдавливанием в центре. Перед уколом иглы кожу на этом месте немного смещают в сторону. Иглу с мандреном вкалывают в центр пальцевидного вдавливания треугольного вы ступа маклока в направлении назад, вниз и немного внутрь на глубину 1 - 1,5 см до ощущения хруста прокалываемых трабекул и так называемого "провала". После введения иглы мандрен извлекают из иглы, присоединяют шприц, иглу оттягивают на 2 - 3 мм и вводят раствор с некоторым усилием.

Внутритрахеалъное введение. Внутритрахеально растворы лекарств енных веществ можно вводить с помощью зондов или иглы. Крупных животных при внутритрахеальном введении фиксируют в стоячем положении, а мелких в лежачем боковом положении. При этом голова и шея животного должна находиться выше туловища. В зависимости от величины животного подбирают зонд соответствующего размера или шприц для внутригортанных инъекций. Можно использовать зонды малого диаметра.

Перед введением зонд дезинфицируют и смазывают стерильным вазелином. Крупным животным зонд вводят через носовую, а мелким - через ротовую полость до глотки и в промежутках между глотательными движениями продвигают его дальше. При правильном введении зонда в трахею у животного появляется кашель, который вскоре прекращается. Чтобы убедиться, что зонд находится в трахее, левой рукой обхватывают начальную часть трахеи и производят отрывистые движения влево и вправо, при этом ясно слышны удары зонда о стенки трахеи. Кроме того, при правильном введении зонда в трахею из зонда синхронно акту выдоха выходит струя воздуха. Затем к свободному концу зонда присоединяют воронку или шприц Жане и вводят лекарственное вещество. При попадании первых порций вводимой жидкости в бронхи может отмечаться сильный кашель. В таком случае введение прекращают и голову животного опускают вниз.

Для внутритрахеальных инъекций можно использовать обычные инъекционные иглы или специальные иглы для внутритрахеальных инъекций, имеющие боковое отверстие. Место укола - это средняя часть шеи или область трахеи ближе к грудной полости. При этом сдвигается кожа в сторону на предполагаемом месте укола и вводится стерильная игла между колец трахеи, при этом ощущается специфический хруст. Затем присоединяют шприц и вводят небольшое количество стерильного 0,5%-го раствора новокаина, что способствует ослаблению кашлевого рефлекса. Затем только приступают к введению нужного лекарственного вещества. При фиксации животного в лежачем положении жидкость можно вводить в левое или правое легкое.

При проведении внутритрахеальных инъекций необходимо учитывать то, что лекарственный раствор стекает из слизистой оболочки трахеи в глубьле- жащие отделы респираторного аппарата. При трахеитах, трахеобронхитах он может смывать экссудат и заносить его в легкие, что будет способствовать распространению патологического процесса. При внутритрахеальном введении больших количеств жидкостей может развиться аспирационная пневмония.

Аэрозолетерапия

Аэрозоли (греч. aer - воздух + лат. solutio - раствор) - дисперсная, двухфазная система, состоящая из газовой среды, в которой взвешены мельчайшие частицы жидкостей или твердых веществ вещества.

Аэрозоли чрезвычайно широко распространены в природе (туман, облака, пыль, дым). Аэрозольной системой является и воздух, которым дышат все люди, животные и растения. Огромное значение в распространении заболеваний человека и животных имеют биологические аэрозоли. Последние представляют собой аэродинамическую систему, в которой твердая (пылевая) или жидкая (капельные аэрозоли) дисперсная фаза содержит биологический активный субстрат в виде микроорганизмов (бактерий, риккетсий, вирусов, патогенных грибов или их токсинов). Биологические аэрозоли возникают в результате испарения жидких, высыхания и подъема с пылью сухих экскрементов от больных животных и человека, а также при выделении больными воздушно- капельным путем возбудителей некоторых инфекционных заболеваний.

В организм животных биологические аэрозоли попадают, главным образом, респираторным путем. Их патогенный эффект находится в прямой зависимости от характера возбудителя и величины ингалированной дозы биоагента, которая в свою очередь определяется концентрацией живых микробов во вдыхаемом воздухе (биологическая концентрация), продолжительности ингаляции и объема легочной вентиляции зараженного животного. Концентрация биоагента, а следовательно и доза, прежде всего определяются степенью биологической устойчивости аэрозоля.

В зависимости от величины взвешенных частиц различают высокодисперсные аэрозоли с величиной частиц до 5 мкм, среднедисперсные (5-25 мкм), низкодисперсные (до 50 мкм), мелкокапельные (100 мкм), крупнокапельные (250-450 мкм). Размер частиц определяет их способность проникать и задерживаться в дыхательных путях.

Следует отметить, что пыль и дым, имеющие определенное этиологическое значение для органов дыхания, имеют диаметр дисперсных частиц соответственно более 10 мкм и в пределах от 0,001 до 0,1 мкм, что не затрудняет их проникновение в органы дыхания. Вместе с тем следует отметить, что чем выше степень дисперсности аэрозолей, тем выше их удельная поверхность, химическая и физико-химическая активность.

Вещества, вводимые в виде аэрозолей, оказывают на организм местное, рефлекторное и резорбтивное действие. В органах дыхания мельчайшие частицы вещества распределены на огромной поверхности и поэтому скорость всасывания во много раз выше, чем в желудочно-кишечном тракте, мышцах и т.д.. Интенсивность всасывания увеличивается от носовой полости к легким и достигает максимума в альвеолах. Кроме того, лекарственные вещества минуют нейтрализующее действие печени. Часть введенного лекарственного вещества депонируется лимфатической системой легкого. Высокая дисперсность аэрозолей значительно увеличивает общую площадь частиц, а следовательно, и площадь соприкосновения со слизистой оболочкой дыхательных путей, способствуя тем самым повышению активности распыленных медикаментов. Однако механизм действия лекарственных веществ не ограничивается только фармакологическим эффектом и включает в себя также влияние тепла и паров аэрозолей и их электрический заряд. Отрицательный электрический заряд последних стимулирует функции мерцательного эпителия дыхательных путей, оказывает десенсибилизирующее действие при применении некоторых антибиотиков.

Оборудование и аппараты для аэрозолетерапии. Аппараты для введения аэрозолей лекарственных веществ через дыхательные пути называются аэрозольными ингаляторами. Их разделяют на ингаляторы закрытого типа (индивидуальные) и отрытого (камерные) типа. При использовании индивидуальных ингаляторов аэрозоль подается непосредственно из аппарата в дыхательные пути. В индивидуальных ингаляторах используются пневматические и ультразвуковые генераторы аэрозоля. В ветеринарной практике из индивидуальных ингаляторов используются АИ-1, ПАИ-1, ПАИ-2, последние два имеют термоэлементы подогрева аэрозоля. Камерные ингаляторы создают аэрозольное облако и животные, находящиеся в камерах, вдыхают аэрозоль лекарственных веществ. В камерных ингаляторах используют пневматические, ультразвуковые и дисковые генераторы аэрозолей. Наибольшее распространение находят аэрозольные ингаляторы с пневматическими генераторами аэрозоля. В качестве распыляющего газа обычно используют воздух, подаваемый от компрессора или кислород из баллона. В ветеринарной практике в настоящее время эксплуатируются такие генераторы камерного типа, как ТАН, САГ-1, САГ-2, ВАУ-1, ДАГ-1, ДАГ-2, ДАГ-10. В условиях хозяйств РБ наибольшее распространение получили САГ (струйные аэрозольные генераторы) (рис. 42). Их производительность распыления жидкости достигает 80 мл/мин, размер распыляемых частиц 7 мкм и объемная концентрация до 37,4%. Непосредственно в камере подвешиваются САГи на высоту 1- 1,5 м. Камеру объемом до 50 м обеспечивает один САГ-1.

При использовании пневматических генераторов аэрозолей необходимы компрессоры, создающие давление воздуха в 3-4 атмосферы и расход воздуха до 100 л/мин., а также шланг высокого давления. Можно использовать различные компрессоры, в том числе и имеющиеся на автомобилях ДУК Наиболее удобен компрессор типа СО-7Б.

Под аэрозольную камеру может быть переоборудован любой отсек животноводческого помещения. Если камера строится специально, то целесообразно делать ее размером 5мх 5мх 2м (длина х ширина х высота), т. е. объемом 50 м . Для герметизации камер при аэрозольных обработках удобно использовать полиэтиленовую пленку. При проведении групповых обработок вместимость камеры устанавливают из расчета для поросят 0,3-0,8 м на одно животное, а для телят - 1-1,5 м (средние данные). Однако более рационально расчет объема воздуха камеры производить с учетом возраста животного

Иногда, при отсутствии аппаратов для получения аэрозолей, используют безаппаратные способы получения аэрозолей йодистого алюминия, хлор- скипидара и однохлористого йода. Аэрозоль йодистого алюминия применяют из расчета 0,3 г кристаллического йода, 0,13 г хлористого аммония, 0,09 г алюминиевой пудры на 1 м3 помещения. Препараты смешивают и добавляют несколько капель воды.

Для получения аэрозоля хлор-скипидара на 1 м 3 помещения расходуют 2 г хлорной извести с содержанием не менее 25% активного хлора и 0,2мл скипидара, а для получения аэрозоля однохлористого йода на такой объем расходуют 0,5 мл однохлористого йода, в который опускают алюминиевую проволоку из расчета 10:1 в весовом соотношении.

Техника проведения аэрозольных обработок. Аэрозольный генератор заполняют раствором препарата, подвешивают в камере на высоте 1 - 1,5 м от пола, САГи по центру камеры, а форсунки от ВАУ-1 в отверстие стенки камеры. Шлангом высокого давления соединяют генератор с компрессором, после этого в камеру помещают животных. После включения компрессора и достижения указанного давления открывают кран, подающий сжатый воздух к аэрозольному генератору. Через несколько минут камера заполняется туманом аэрозоля, после чего компрессор отключают. Когда туман начинает редеть, снова на несколько минут включают компрессор. В зависимости от времени распыления аэрозолей длительность сеанса аэрозолетерапии продолжается от 30 до 90 минут. Количество сеансов аэрозольной терапии на курс лечения зависит от характера заболевания и фармакологической активности лекарственного вещества, но в основном оно колеблется в пределах от 5 до 15 сеансов.

Для стабилизации аэрозолей ранее широко использовался глицерин. Позже было установлено, что он оказывает разрушающее действие на легочную ткань, кроме этого он несовместим с сульфаниламидами и глюкозой. Поэтому в настоящее время растворы стабилизируют 10-20%-ным раствором глюкозы, рыбьим жиром, тривитамином, тривитом и др. препаратами. Стабилизаторы добавляют из расчета 10-30% к общему объему жидкости. Концентрация лекарственных препаратов при этом составляет от 0,5 до 10%. Растворы для аэрозолетерапии готовят перед применением. При этом для приготовления растворов антибиотиков чаще всего используют 0,5%-ный раствор новокаина, дистиллированную воду, изотонический раствор натрия хлорида, 15%-ный раствор ди- мексида. Растворимые сульфаниламиды растворяют в дистиллированной воде, физиологическом растворе.

После применения антибиотиков в присутствии животных проводят инактивацию аэрозолей 4%-ным раствором калия перманганата, из расчета 30-50 мл/м или 6%-ным раствором перекиси водорода (70-80 мл/м ). Длительность процедуры от 10 до 15 минут.

Дозирование аэрозолей. Одним из наиболее сложных вопросов аэрозолетерапии является дозировка аэрозолей. При этом следует исходить из разовой, суточной и курсовой дозы лекарств в обычной форме. При назначении лекарственных аэрозолей необходимо учитывать производительность распылителя (количество аэрозоля в литрах, образуемого за единицу времени), плотность аэрозоля (содержание распыляемого вещества в литре аэрозоля) и его дисперсность (соотношение частиц аэрозоля по размеру), а также жизненную емкость легких данного больного и потери аэрозоля во время ингаляции (коэффициент адсорбции препарата в респираторных органах).

Дозу адсорбированного в дыхательных путях препарата определяют в ветеринарной практике по формуле (Ю.В.Головизнин):

А = СхДхТхК,

где А - адсорбированная доза препарата в единицах измерения (Е, ЕД, мкг, мг);

С - средняя концентрация аэрозоля препарата в м3 камеры (ЕД/м , мг/м и т.д.); Д - минутный объем дыхания (МОД) животных в литрах на килограмм живой массы; Т - время ингаляции (в минутах); К - коэффициент адсорбции препарата или потери (соответствующий по Ю.В.Головизнину 0,5+0,1).

Минутный объем дыхания зависит от возраста и массы животных. У молодняка в возрасте до 6 месяцев минутный объем дыхания на килограмм массы в среднем составляет у телят 0,273 л/кг, у поросят - 0,371 л/кг, у ягнят - 0,157 л/кг. Вместе с тем для более точного дозирования лекарственных аэрозолей Ю.В.Головизнин рекомендует у телят пользоваться разработанными им данными.

Средняя концентрацияпрепаратав воздухе рассчитывается поформуле*: А

С =ДхТхК

* - обозначения как и в предыдущей формуле. При проведении групповых обработок минутный объем дыхания рассчитывается на всю группу. Например, при обработке 10 телят общей массой 600 кг в возрасте 3 месяца минутный объем дыхания равен 600 х 0,334 = 200,4 литра.

Пример расчета адсорбированной дозы:

У 10 телят с общей массой 600 кг, в возрасте 3 месяца при длительности ингаляции 60 минут, средней концентрации антибиотика в камере 1000 ЕД/м и коэффициенте адсорбции препарата 0,5, адсорбированная доза антибиотика будет следующей:

А = 1000 х 200,4 х 60 х 0,5 = 6012000 ЕД. На одного теленка - 601200 ЕД.

Распыляемую дозу определяют по формуле В.И.Квятковского:

Ах С

Р =

§Х

где А - адсорбированная доза на массу всех животных; С - постоянная величина равная 0,467; Д - показатель минутного объема дыхания на кг массы.

При расчете распыляемой дозы за величину А принимается суммарная доза данного препарата при внутримышечном введении. Если например 10 телят общей массой 500 кг обрабатываются антибиотиками, то распыляемая доза антибиотика будет составлять:

Ах С 2500000 х 0,467

Р = = = 4276556 ЕД,

Д 0,273

где 2,5 млн ЕД - разовая доза для внутримышечного введения 10 телятам из расчета 5 000ЕД на кг массы.

В рекомендациях по применению аэрозольным методом тех или иных лекарственных веществ указывается обычно количество ингалируемого раствора на м3 аэрозольной камеры (средняя концентрация препарата). Она рассчитывается по формуле:

Р

С = -- , V

где Р - распыляемая доза в единицах измерения лекарственного вещества; V - объем камеры в м3.

Р 4270000 ЕД

Например: С =-- = = 427000 ЕД/м3,

V 10 м3

где 4270000 ЕД - распыляемая доза, 10 м - объем камеры.

В качестве этиотропной терапии телят, больных бронхопневмонией, применяют аэрозоли антибиотиков, сульфаниламидных препаратов, химиоте- рапевтических веществ. Из антибиотиков в виде аэрозолей используют бензил- пенициллин, стрептомицин, неомицин, окситетрациклин, морфоциклин, эритромицин, неомицин из расчета 5 - 8 мг/ м аэрозольной камеры. Из сульфаниламидных препаратов аэрозольным путем вводят растворимый норсульфазол, стрептоцид, этазол в дозе 0,5 г/ м .

Из других антибактериальных средств применяют аэрозоли иодтриэтиленгликола в виде 50% раствора 1 мл/ м , скипидар 10% - 5 мл/ м , камфорную сыворотку по Кадыкову - 15 мл/ м .

Из средств заместительной терапии чаще всего применяют витаминные и ферментные препараты. С этой целью вводят аэрозоли тривитамина или тетра- вита 1 раз в 5 дней в дозе 3-5 мл/ м .

Из симптоматических средств в качестве отхаркивающих и усиливающих рассасывание эксудата применяют аэрозоли натрия хлорида 9 г/м , аммония хлорида - 11 г/ м , эфедрина - 0,3 г/ м , атропина - 0,015 г/ м .

Широко применяется профилактика бронхопневмонии аэрозолями лекарственных веществ. Аэрозольную обработку молодняка с профилактической целью рекомендуется проводить по одной из схем:

1) 1 раз в сутки 7-10 дней подряд.

2) 2 дня подряд с 7-8-дневными перерывами в течение 2-х месяцев.

3) 3 дня подряд с 2-дневным перерывом трехкратно.

Из средств аэрозольной профилактики эффективно применение лесного бальзама "А" в чистом виде по 0,5 г/ м в течение 1 - 2 часов; иодтриэти- ленгликоля из расчета 0,15 - 0,30 г йода нам в течение 40 минут; 10%-ный раствор перекиси водорода в дозе 66 мл/ м ; 0,25%-ный раствор этония в дозе 5 мл/ м , 5%-ный раствор хлорамина "Б" в дозе 3 мл/ м , 10%-ный раствор скипидара - 3 мл/ м3.

Показания и противопоказания к проведению аэрозолетерапии. Аэрозо- летерапия показана при заболеваниях верхних дыхательных путей (риниты, ларингиты, трахеиты, бронхиты), легких (пневмонии, гангрена). Кроме того аэрозоли биологических препаратов (вакцины, сыворотки) можно использовать для активной и пассивной иммунизации животных.

Противопоказаниями к применению аэрозолетерапии является повышенная индивидуальная чувствительность животных к ингалируемым препаратам, сердечно-сосудистая недостаточность, истощение, отек легких, переутомление, тепловой и солнечный удар.

При проведении сеансов аэрозолетерапии следует строго придерживаться следующих правил:

- аэрозолетерапию и профилактику нельзя проводить в открытых помещениях, поскольку в этом случае нарушается экологическое равновесие в окружающей среде.

- нельзя использовать мелкодисперсную подстилку (торфокрошку, опилки), т.к. при беспокойстве животных она может попасть в легкие и вызвать ас- пирационную пневмонию.

- после проведения аэрозолетерапии антибактериальными средствами следует проводить инактивацию последних не только в камере, но и на поверхности тела животного.

- при проведении аэрозолетерапии через смотровое окно следует наблюдать за состоянием животного.

Аэроинотерапия

Аэроионотерапия - применение с лечебной целью электрически заряженных газовых молекул воды (гидроаэроионов).

Аэроионизация оказывает непосредственно стимулирующее действие на организм отрицательными ионами кислорода и косвенное через освобождение воздушной среды от пыли и микробов. Нервно-рефлекторное действие аэроионов происходит при попадании их в дыхательные пути, где раздражают легочные рецепторы, они отдают свой заряд в кровь. Кровь с измененными электрическими свойствами трансформирует в клеточных элементах электрические процессы. Отрицательные легкие аэроионы более активны и имеют большое значение в лечении и профилактике заболеваний: повышают сопротивляемость организма, усиливают общую реактивность и местные барьерные функции, активизируют легочный газообмен, повышают иммунобиологическую функцию, продуктивность, стабилизируют гемопоэз, стимулируют нервно-рефлекторное воздействие на организм через органы дыхания.

Для искусственной ионизации воздуха применяют электроэффлювиальные ионизаторы. К ним относятся аппараты АФ-2, АФ-3, АФ-3-1, ионизатор Чижевского. К гидродинамическим ионизаторам, в основе которых лежат явления механического дробления частиц воды, относятся аппараты «Серпухов-1», ГАИ- 4У. Ионизация воздуха возникает при действии постоянного электрического поля высокого напряжения, ультрафиолетового излучения.

В естественных условиях аэроионы образуются при атмосферных разрядах, ультрафиолетовом облучении и т. д. Сеансы ионизации назначают с малых доз. В условиях животноводческих помещений и птицефабрик наиболее эффективны аэроионизаторы с проволочными и игольчатыми электродами, основанные на газовом разряде.

С профилактической целью чаще используют аэроионизатор Чижевского в виде люстры диаметром 1 м. Электроэффлювиальные и гидродинамические ионизаторы для группового лечения располагают от животного на расстоянии 150-200 см, для индивидуального - на 30-40 см. Процедуры проводят ежедневно или через день. Курс лечения 15-30 сеансов. Повторяют курс лечения через 30 дней. Продолжительность процедуры в зависимости от концентрации ионов 10-20 минут.

Дозировка ионов слагается из двух компонентов: концентрации ионов (тыс/см3) и времени ионизации - экспозиции (ч). Для подсчета аэроионов имеются специальные счетчики. Искусственную аэроионизацию в животноводческих помещениях проводят из расчета количества аэроионов на 1 см3 воздуха. Эти данные обычно отражены в таблице, прилагаемой к аппарату. Лечение проводят с периодическим исследованием крови и мочи.

Показания. Катар верхних дыхательных путей, снижение общей реактивности и резистентности, трофические язвы, функциональные расстройства деятельности сердечно-сосудистой системы, язвенная болезнь желудка и кишечника, стимуляция регенеративных процессов при ранах.

Противопоказания. Истощение, эмфизема и отек легких, деструктивные изменения верхних дыхательных путей, лучевая болезнь.

Инсталляция

Инстилляция - это капельное введение лекарственных веществ. Чаще всего инсталляцию проводят на конъюнктиву для местного действия. Но следует помнить о хорошей всасывающей способности слизистой оболочки глаза и о возможности вызвать выраженное резорбтивное действие, которое в некоторых случаях может быть нежелательным. При некоторых болезнях, наоборот, инсталлируют лекарственное вещество на конъюнктиву в высоких концентрациях для достижения резорбтивного действия. Инстилляцию лекарственных веществ проводят с помощью глазной пипетки или шприца с резиновой трубкой.

Ирригация (орошение)

Ирригацию как один от приемов лечения чаще используют при заболеваниях, связанных с поражением слизистой оболочки ротовой полости. Для орошения лучше использовать такие растворы лекарственных веществ, которые, попав в желудок, не вызывают осложнений. Крупных животных удерживают на коротком поводке или за рога. Беспокойных животных заводят в станок, а мелких ставят на возвышенное место и фиксируют руками. Процедуру можно проводить с применением зевников и без них.

Ирригацию удобно проводить из резиновой спринцовки с удлиненным твердым наконечником или из обычной спринцовки, удлиненной резиновой трубкой. Можно также использовать кружку Эсмарха или аппарат Малахова. Наконечник спринцовки вводят в ротовую полость через беззубый край и направляют струю жидкости в сторону противоположной щеки.

Под влиянием струи жидкости у животного появляются жевательные движения, что способствует распределению лекарственного раствора по всей ротовой полости. Направление струи жидкости можно изменить в любую сторону, но нельзя направлять в сторону гортани.

Во время проведения ирригации ротовой полости голову животного наклоняют вниз, что в значительной степени препятствует затеканию жидкости в дыхательную систему.

Новоканиовые блокады

При назначении новокаиновых блокад необходимо учитывать высказанные А. В. Вишневским положения об эффектах после новокаиновой блокады при воспалительных процессах. Эти положения остаются ведущими и до настоящего времени:


Подобные документы

  • Техника безопасности и личная гигиена при работе с животными, биопрепаратами и дезинфицирующими средствами. Характеристика основных групп токсикогенных грибов. Анализ этиологических факторов развития микотоксинов и их влияние на качество кормов.

    курсовая работа [83,9 K], добавлен 03.09.2019

  • Краткая характеристика хозяйства. Ветеринарная аптека и ее оснащение. Способы введения лекарств в организм животного, техника их введения с различными целями. Правила обращения с животными и способы фиксации. Микроскопические исследования методом посевов.

    отчет по практике [709,6 K], добавлен 03.10.2012

  • Ветеринария как наука о болезнях животных, диагностике, лечении и профилактике. Предмет изучения общей и частной ветеринарии. Виды болезней, методы их диагностики. Основные показатели у лошади в состоянии покоя. Пути введения лекарственных веществ.

    презентация [2,3 M], добавлен 11.05.2015

  • Общие меры безопасности при обслуживании животных. Меры безопасности при эксплуатации электрических изгородей. Меры безопасности при обслуживании быков-производителей, хряков, при уходе за лошадьми, при транспортировании сельскохозживотных.

    реферат [8,8 K], добавлен 25.11.2006

  • Санитарно-гигиеническая обстановка условий труда работников животноводства. Условия техники безопасности при обслуживании животных. Основные требования личной гигиены для работников животноводства. Личная гигиена на заводах по переработке трупов животных.

    реферат [29,7 K], добавлен 22.01.2012

  • Подготовка работы в операционной, личная гигиена специалиста при проведении хирургической операции. Принципы подготовки животного. Требования к инструментарию и шовному материалу. Анестезия и техника выполнения манипуляций. Послеоперационное содержание.

    курсовая работа [29,3 K], добавлен 24.04.2014

  • Физико-географическая и экономическая характеристика Благовещенского района. Карта-схема Благовещенского охотничьего хозяйства. Биологические особенности кабана, динамика его численности. Технологические приемы и техника безопасности при охоте на кабана.

    курсовая работа [9,6 M], добавлен 25.05.2010

  • Техника закладки почвенного разреза и описание почвенного разреза. Лесорастительные условия исследуемой территории. Определение запасов основных элементов минерального питания растений. Кадастровая оценка земель, организация труда и техника безопасности.

    курсовая работа [61,8 K], добавлен 14.01.2016

  • Основная клиническая документация, используемая при работе ветеринарным врачом. Методы исследования животных. Подготовка и проведение хирургических операций. Способы введения лекарственных веществ. Санитарно-гигиенические условия содержания скота.

    отчет по практике [1,9 M], добавлен 14.10.2013

  • Техника фиксации животных. Введение лекарственных веществ. Предубойный клинический и ветеринарно-санитарный осмотр туш. Взятие проб крови на лейкоз и бруцеллез. Вакцинация телят и глубокостельных коров против сальмонеллеза, пастереллеза, хламидиоза.

    отчет по практике [20,3 K], добавлен 16.05.2014

Работы в архивах красиво оформлены согласно требованиям ВУЗов и содержат рисунки, диаграммы, формулы и т.д.
PPT, PPTX и PDF-файлы представлены только в архивах.
Рекомендуем скачать работу.