Углеводы и методы их определения

Определение сахара в сухих винах с использованием колоночной хроматографии. Химические свойства моносахаридов и полисахаридов. Фотоколориметрическое определение общего сахара в кондитерских изделиях. Определение крахмала в зерновом сырье по методу Эверса.

Рубрика Химия
Вид курсовая работа
Язык русский
Дата добавления 29.06.2014
Размер файла 2,6 M

Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже

Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.

Если оптическая активность веществ обусловлена особенностями строения кристаллической решетки, то в этом случае вещества проявляют оптическую активность в твердом состоянии. Если оптическая активность обусловлена особенностями строения молекул, то оптические свойства таких веществ проявляются в растворе. К веществам последней группы относятся такие органические вещества как сахароза, глюкоза, фруктоза, винная кислота, все аминокислоты, за исключением глицина. Поляриметрический метод разработан для количественного определения веществ именно этой группы. Оптическая активность этих веществ связывается с направлением валентных связей атома углерода в пространстве, который, как известно, имеет их четыре.

Было показано, что ни одна структура, в которой атомы лежат в одной плоскости, не может быть оптически активной. Плоская молекула является своим собственным зеркальным изображением, поскольку сама плоскость, а это плоскость симметрии для данной молекулы.

Если четыре связи атома углерода не лежат в одной плоскости, то они должны быть направлены к углам тетраэдра (химия трехмерного пространства или трехмерных структур). Вещество фторхлорбромметан представлено право- и левовращающейся разновидностями, следовательно, его нельзя представить плоской формулой.

Расположение атомов в молекуле не может иметь плоскости симметрии или центра симметрии, а это значит, что существует расположение атомов, соответствующее правой и левой руке - зеркальное изображение первого.

Соответственно существует два вида веществ, вполне одинаковых во всех отношениях, отличающихся только свойственным им направлением вращения плоскости поляризации, причем каждый вид должен быть зеркальным изображением другого. Именно такие вещества (молекулы) являются оптически активными.

Пара из право- и левовращающихся молекул называется энантиомерной парой, а два вещества, которые они образуют, называются энантиомерами.

Для отличия их друг от друга используют символы L(?) (левовращающий) и D(+) (правовращающий).

Каким образом эти вещества (молекулы) проявляют оптическую активность, показано на примере аминокислот. Общая формула аминокислот CHR(NH2)COОН. Это функциональные соединения, в состав которых входят две функциональные группы: карбоксильная и аминогруппа.

Аминогруппа имеет явно выраженный основной характер, а карбоксильная - кислый, так что в водном растворе протон карбоксильной группы переходит к аминогруппе. В результате карбоксильная группа превращается в ион карбоксила, а аминогруппа - в замещенный ион аммония. В соответствии с этим строение аминокислот в водном растворе можно представить следующим образом:

H H O

H - N+ - C - C ? O?

H R

Амино- и карбоксильные группы большинства аминокислот внутренне ионизированны так, что группы аммонийного (+) и карбоксильного (?) ионов образуются в одной и той же молекуле. Таким образом, ионизированная молекула может проявлять свойства диполя.

Рассмотрим природу поляризованного луча света, состоящего из фотонов и, подобно электрону, обладающего свойством спина. Поляризация светового луча связана именно со спином фотона, который, как и у электрона, равен единице. Следовательно, у фотона, как и у электрона, имеются два состояния, в которых он может находиться (+1) и (?1). Другими словами, поляризованный луч представляет диполь; фотоны такого колеблющегося электрического диполя могут испускаться или поглощаться. При прохождении через раствор оптически активных (ионизированных) веществ поляризованного луча происходит его поглощение молекулами вещества, что выражается в правой круговой поляризации света, отвечающей составляющей спина (+1), либо левой круговой поляризации - составляющей спина (?1).

Для определения концентрации оптически активных веществ, в основном углеводов (сахара, глюкозы), используют поляриметры разных марок, предназначенные для измерения угла вращения плоскости поляризации оптически активными прозрачными однородными растворами и жидкостями. Разновидностью поляриметра являются сахариметры и глюкозиметры. Каждый из них снабжен шкалой, показывающей не угол вращения поляризованного света, а массовую долю (%) сахарозы или глюкозы соответственно.

Угол вращения плоскости поляризации определяют по формуле (2.10):

(2.10)

где - удельное вращение, град;

l - длина трубки, дм;

С - концентрация вещества, г/100 см3.

Сущность поляриметрического определения крахмала в зерновом сырье по методу Эверса

Метод основан на гидролизе крахмала при нагревании в слабом растворе соляной кислоты и определении его концентрации по отклонению плоскости поляризации поляризационного луча полученными продуктами гидролиза.

(C6H10O5)n + nH2O > nC6H12O6

Если используется не вода, а другой растворитель или удельное вращение неизвестно, то концентрацию вещества в растворе можно определить по калибровочному графику, используя серию растворов с известными концентрациями.

При определении концентрации сахарозы в таких сложных образцах, как пищевые продукты, которые не имеют аттестованных растворов, ни формулой (2.10), ни градуировочным графиком воспользоваться невозможно.

Таблица 2.5 - Характеристики крахмала различных зерновых культур

Крахмал

Удельное вращение, [?]20D

Коэффициенты

для сахариметра (линейная шкала)

для поляриметра (круговая шкала)

Кукурузный

184,6

1,879

5,416

Пшеничный

182,7

1,898

5,474

Картофельный

194,5

1,775

5,118

Ржаной

184

1,885

5,434

Ячменный

181,5

1,912

5,506

Овсяный

181,3

1,914

5,504

Рисовый

185,9

1,866

5,38

Оборудование

1) Поляриметр СМ - З;

2) Баня водяная;

3) Аналитические весы;

4) Термометр с температурным диапазоном до 100°С;

5) Колбы мерные объемом 100 см3 (2 шт);

6) Стеклянная воронка;

7) Фарфоровая ступка;

8) Пипетки объемом 5 см3 и 25 см3;

9) Фильтровальная бумага.

Применяемые реактивы

1) 1,124 % раствор соляной кислоты. Для приготовления 1,124 % - ного раствора соляной кислоты отмеряют 25,4 см3 соляной кислоты плотностью 1,19 г/см3 в мерную колбу на 1000 см3 и доводят объем раствора до метки дистиллированной водой.

2) 2,5 % раствор аммония молибденовокислого.

3) 4 % раствор фосфорно - вольфрамовой кислоты.

4) Дистиллированная вода.

5) Зерно.

Поляриметр круговой СМ - 3

Поляриметр круговой СМ - 3 представляет собой оптический прибор, предназначенный для измерения угла вращения плоскости поляризации оптически активных прозрачных и однородных растворов (см. рисунок 2.10).

а

б

Рисунок 2.10 ? Общий вид (а) и схема поляриметра (б): 1 - источник света; 2 - светофильтр; 3 - конденсор; 4 - поляризатор (призма Николя); 5 ? кювета; 6 - анализатор (призма Николя); 7 - отчетное устройство (шкала); 8 - окуляр с видом освещенности полей; 10 - окуляр шкалы; 11 - ручка вращения анализатора; 12 ? передняя панель; 13 - задняя панель; 14 - крышка кюветного отделения; 15 - тумблер «Сеть»

Луч света (I) от источника света (1) через светофильтр (2) и конденсор (3) проходит через поляризующую призму Николя (4) и на выходе из нее оказывается плоскополяризованным (II) (см. рисунок 2.11).

Рисунок 2.11 ? Схема кругового поляриметра и изменения поляризации луча при прохождении через него: 1 - неполяризованный свет; II - поляризованный свет; III - вращение плоскости поляризации; IV - приведение плоскости поляризации к оптической оси анализатора

Далее при прохождении через кювету (5) с раствором плоскость поляризации может повернуться при наличии в растворе оптически активного вещества. На схеме новая плоскость поляризации показана наклонной стрелкой под углом о, при этом поля освещенности 9, одинаково окрашенные при нулевом положении поляриметра, окрашиваются различно (как верхний кружок либо как нижний). Это свидетельствует о несовпадении оптической оси поляриметра с плоскостью поляризации. Чтобы выровнять окраску полей в окуляре поляриметра, надо повернуть анализатор (6), связанный с отсчетным устройством (7), на такой угол, на какой поляризованный луч был отклонен раствором энантиомера. Когда это будет достигнуто (IV), поля в окуляре (8) поляриметра снова будут окрашены одинаково. Отсчет по шкале (7) укажет угол вращения плоскости поляризации, который пропорционален длине кюветы 1 и концентрации раствора энантиомера.

В поляриметре СМ ? З применен принцип уравнивания яркостей разделенного на две части поля зрения. Разделение достигается путем введения в оптическую систему прибора хроматической фазовой пластинки. Яркости полей сравнения уравнивают вблизи полного затемнения поля зрения.

На рисунке 2.12 показан вид двойного поля зрения в зависимости от положения анализатора.

Вращением анализатора добиваются равенства яркостей обоих полей сравнения в чувствительном положении (см. рисунок 2.12, б). При этом не должно быть заметно резкого выделения стороны хроматической фазовой пластинки. При незначительном повороте анализатора вправо или влево от чувствительного положения происходит отклонение его оптической оси от плоскости колебаний поляризованного луча света, и тогда картинка меняется.

а б в

Рисунок 2.12 ? Вид поля зрения в зависимости от положения анализатора при заполненной водой кювете: а - левое вращение; б - нулевая точка; в - правое вращение

При повороте анализатора влево (см. рисунок 2.12, а) заметно потемнение левой части кружка, при повороте анализатора вправо (см. рисунок 2.12, в) - потемнение правой части кружка.

Если для получения однородно освещенного поля зрения приходится повернуть анализатор вправо, т.е. по часовой стрелке, то исследуемое вещество было правовращающимся. При повороте анализатора против часовой стрелки получаем левое вращение, а вещество было левовращающимся.

Выполнение работы

1) Отвешивают навеску измельченного исследуемого образца 5 г (с точностью до 0,01 г) и количественно переносят в сухую мерную колбу на 100 см3. Туда же приливают 25 см3 1,124% - ного раствора соляной кислоты. Перемешиванием добиваются полного смачивания вещества и разрушения комочков. Следующими 25 см3 той же кислоты смывают с горлышка и со стенок колбы прилипшие частицы. Смесь помещают на 15 мин на кипящую водяную баню. В течение первых трех минут содержимое непрерывно размешивают плавными круговыми движениями колбы. Через 15 мин колбу вынимают, вливают в нее 40 см3 холодной дистиллированной воды, взбалтывают и охлаждают до 200С.

2) Затем к раствору для осветления и осаждения белков прибавляют 6 см3 2,5% - ного раствора молибденовокислого аммония или от 0,5 до 5 см3 4% - ной фосфорно - вольфрамовой кислоты, после чего содержимое мерной колбы доводят до метки дистиллированной водой, взбалтывают и фильтруют через складчатый фильтр в сухую колбу. Первую порцию фильтрата (5 - 8 см3) отбрасывают. Прозрачный фильтрат поляризуют при 200С.

3) Проверка поляриметра на правильность его показаний (определение нулевого положения прибора). Так как при нулевой точке прибора нуль нониуса не всегда совпадает с нулем шкалы лимба, то, начиная работать, всегда следует установить положение истинной нулевой точки. Определение нулевого отсчета производят с кюветой, наполненной дистиллированной водой.

Включают натриевую лампу поляриметра тумблером (15) на задней панели прибора и прогревают его в течение 20 минут. Достают кювету, открывают крышку (14) кюветного отделения прибора. Отвинтив гайку, убирают втулку, резиновую прокладку, покровное стекло и все детали кладут на фильтровальную бумагу.

Кювету приводят в вертикальное положение утолщенной частью вверх. Эта утолщенность на стеклянной трубке необходима для сбора пузырьков воздуха. Заполняют кювету до верха дистиллированной водой. Заполнение водой производят до тех пор, пока на конце трубки не появится выпуклый мениск. Пузыри воздуха, если они присутствуют, удаляют, слегка постукивая по кювете указательным пальцем.

Появившийся мениск смещают в сторону при надвигании на него покровного стекла. Затем на покровное стекло кладут резиновую прокладку, прижимают втулкой, вставив ее в паз, и затягивают гайкой. Кювету вытирают фильтровальной бумагой. Она не должна подтекать.

Кювету с водой вставляют в кюветное отделение поляриметра утолщенной частью по направлению к передней панели до соответствующего упора (16) (см. рисунок 2.13). Кювета должна находиться в середине кюветного отделения.

Рисунок 2.13 ? Положение кюветы в кюветном отделении: 5 - кювета; 8 -окуляр с видом освещенности полей; 11 - ручка вращения анализатора; 12 - передняя панель поляриметра; 13 - задняя панель; 14 - крышка кюветного отделения; 16 - упор

Вращая ручку (11) прибора, совмещают нули лимба и нониуса. Затем, продолжая вращать ручку плавно и медленно, добиваются равенства яркости полей сравнения в чувствительном положении (см. рисунок 2.12, б) и производят нулевой отсчет. Если нули лимба и нониуса не совпадают в чувствительном положении, то следует найти по шкале нониуса штрих, который совпадает со штрихом шкалы лимба. Затем подсчитывают число делений от нуля нониуса до штриха нониуса, совпадающего со штрихом лимба, и умножают полученное число делений на 0,02°. Это число и есть поправка на нуль прибора.

Нулевой отсчет ?° записывают в таблицу 2.5, а кювету освобождают от воды. На трубке кюветы нанесена ее фактическая длина l между торцами, которую вносят в таблицу 2.6.

Таблица 2.6 - Результаты эксперимента

Температура раствора, °С

Угол вращения плоскости поляризации, °

?° (H2Oдист)

Длина кюветы, мм

?1?

?2?

?3?

?ср?

Влажность анализируемого вещества, %

Теперь прибор настроен на нуль, и на нем можно проводить Измерение углов вращения плоскости поляризации.

4) Определение угла вращения плоскости поляризации фильтратом. Кювету ополаскивают фильтратом, затем трижды заполняют ее фильтратом и каждый раз помещают в камеру поляриметра для измерения угла вращения плоскости поляризации. Находят среднее арифметическое значение трех измерений. Из полученного среднего значения угла поворота плоскости поляризатора вычитают поправку на нуль, учитывая знак поправки.

5) Обработка результатов эксперимента. Содержание крахмала рассчитывают по формуле (2.11):

(2.11)

где ? - содержание крахмала к массе муки, %;

- величина отклонения плоскости поляризации поляризованного луча продуктами гидролиза крахмала, выраженная в градусах линейной шкалы сахариметра;

m - масса образца, г;

l - длина трубки, г;

0,3468 - коэффициент пересчета линейной шкалы сахариметра на круговую шкалу поляриметра (т.е. 10 линейной шкалы поляриметра);

182,7 - среднее удельное вращение продуктов гидролиза пшеничного крахмала, получаемое по данному методу. Эта величина зависит от природы крахмала, условий проведения и глубины гидролиза. Величины среднего удельного вращения для различных объектов установлены экспериментально и приведены в таблице отдельно для каждого метода определения крахмала и для метода Эверса;

- количество крахмала, соответствующее повороту плоскости поляризации на 10 круговой шкалы поляриметра, г.

6) При навеске исследуемого продукта 5 г и длине трубки 2 дм формула принимает вид:

(2.12)

где К - коэффициент, имеющий разное значение для различных культур зерна (см. таблицу 2.5).

Если используется поляриметрическая трубка длиной 100 мм, то формула приобретает вид:

(2.13)

При пересчете содержания крахмала на сухое вещество используют следующую формулу 2.14:

(2.14)

где W - влажность анализируемого материала, %.

Обработка результатов эксперимента

1) В ходе измерений были получены следующие данные

Таблица 2.7 - Результаты эксперимента

Температура раствора, °С

26

Угол вращения плоскости поляризации, °

?° (H2Oдист)

0,08

Длина кюветы, мм

99,95

?1?

?2?

?3?

?ср?

7,76

7,74

7,76

7,75

Влажность анализируемого материала, %

1,4

2) Расчет содержания крахмала

Навеска измельченного зерна m = 5,001 г

3) Расчет содержания крахмала на сухое вещество

Анализируемое зерно - пшено «Ярмарка», пищевая ценность 100 г: белки - 12 г; жиры - 3 г; углеводы - 67 г; калорийность - 340 ккал/1423 кДж, масса нетто - 800 г.

2.3 Методика определения сахара в сухих винах с использованием колоночной хроматографии методом рефрактометрии

Общая характеристика метода

Рефрактометрия - оптический метод исследования, основанный на измерении показателя преломления луча света, проходящего через исследуемое вещество.

В основе метода лежит явление рефракции, то есть преломление световых лучей на границе раздела двух различных по своей природе оптических сред.

Рефракция света является следствием его взаимодействия с частицами вещества, через которое проходит свет. Под воздействием электромагнитных колебаний света в атомах вещества возникают вынужденные колебания электронов и ядер. Вследствие этого происходит их смещение относительно друг друга, что приводит к несовпадению «центров тяжести» отрицательного и положительного электричества в атомах и молекулах, то есть атомы, и молекулы вещества поляризуются в электромагнитном поле света.

Преломление света оценивается показателем преломления n, который равен отношению синуса угла падения ? к синусу угла преломления ?:

(2.15)

Показатель преломления зависит от ряда факторов: природы вещества, длины волны падающего света, плотности среды, концентрации раствора и температуры. Существует прямолинейная зависимость между величиной показателя преломления и концентрацией сахара в водном растворе, которая используется при определении концентрации сахара в растворах.

Метод рефрактометрии применяется также для идентификации веществ, определения их чистоты и концентрации в растворе.

Зависимость показателя преломления от плотности вещества выражается формулой:

(2.16)

где n - показатель преломления;

r - удельная рефракция вещества, см3/г;

d - плотность вещества, г/см3.

Функция f(n) выражается соотношением:

(2.17)

Отсюда

(2.18)

Размерность удельной рефракции соответствует удельному объему, то есть r, см3/г.

Умножение удельной рефракции r на молярную массу вещества МВ дает величину молярной рефракции RM:

(2.19)

Подставив значение удельной рефракции r в формулу (2.19), получают уравнение, связывающее молярную рефракцию вещества с его плотностью, молярной массой и поляризуемостью:

(2.20)

где RM - молярная рефракция вещества В см3/моль;

МВ - молярная масса вещества В, г/моль;

n - показатель преломления вещества В;

d - плотность вещества В, г/см3.

Выражение (2.20) носит название формулы Лорентц - Лоренца. Она при меняется в расчетах и достаточно точно отвечает правилу аддитивности молекулярной рефракции. Рассчитанные по этой формуле результаты мало зависят от изменений температуры, давления и агрегатного состояния вещества во время анализа.

Правило аддитивности молекулярной рефракции заключается в следующем: сумма атомных рефракций элементов, входящих в соединение, равна молекулярной рефракции этого соединения.

(2.21)

где ? - коэффициент поляризуемости, см3;

NA - постоянная Авогадро, 6,02204•1023 моль-1.

Коэффициент поляризуемости (?) зависит от объема атомов и молекул вещества и не зависит от температуры. Экспериментально установлено, что ? ? r3, где r - радиус поляризованной молекулы.

Физический смысл молярной рефракции поясняет соотношение:

(2.22)

где NA - число молекул в 1 моль вещества, моль-1;

- объем шара, т.е. объем поляризованной молекулы;

Отсюда следует, что RM - суммарный объем всех поляризованных молекул, содержащихся в 1 моль вещества. Объем поляризованных молекул состоит из объемов атомов и объемов, занимаемых двойными и тройными связями. Объем атомов называют атомной рефракцией Rат, а объем связи - рефракцией связи Rсв. Из сказанного видно, что молярная рефракция - аддитивная величина.

Значения рефракций атомов некоторых элементов и связей представлены в таблице 2.8

Таблица 2.8- Атомные рефракции и рефракции связей по Фогелю

Атомные рефракции

Рефракции связи

Название атома

Rат

Вид связи

Rсв

Углерод

2,591

C - H

1,676

Водород

1,028

C - C

1,296

Кислород

1,610

C - O в ацеталях

1,460

Азот (NH2)

4,438

О - С в спиртах

1,660

С = С

4,17

Сущность определения содержания сахара в сухих винах с использованием колоночной хроматографии методом рефрактометрии

Рефрактометрическое определение содержания сахара в пищевых продуктах основано на существовании прямолинейной зависимости между величиной показателя преломления и концентрацией сахара в растворе.

Оборудование

1. Рефрактометр ИРФ - 454 БМ;

2. Аналитические весы;

3. Мерные колбы объемом 25 см3 (5 шт.);

4. Пипетка глазная;

5. Хроматографическая колонка;

6. Фильтровальная бумага.

Применяемые реактивы

1. Водно - спиртовый раствор. Приготовление ведется с учетом содержания спирта. Например, на этикетке указано «Алк. 9 - 11% об.», следовательно, водно - спиртовый раствор готовится в соотношении 91:9 частей;

2. Дистиллированная вода;

3. Вино.

Рефрактометр ИРФ - 454БМ

Измерение показателя преломления исследуемых веществ проводят на рефрактометре ИРФ - 454БМ, принцип действия которого основан на явлении полного внутреннего отражения при прохождении светом границы раздела двух сред с разными показателями преломления. Все измерения проводят в «белом свете» (дневном или электрическом). Для получения высокой точности показатели преломления исследуемых жидкостей замеряют при определенной температуре и определенной длине волны.

Рисунок 2.14 - Рефрактометр ИРФ - 454БМ: 1 - окуляр; 2 - маховики; 3, 4 - зеркала; 5 - рефрактометрический блок с подвижной (а) и неподвижной (б) призмами; 6 - заслонка; 7 - крючок; 8 - корпус прибора; 9 - место установки термометра

Рисунок 2.15 - Схема призм рефрактометра: 1 - измерительная призма; 2 - исследуемая жидкость; 3 - осветительная призма

Порядок работы рефрактометра ИРФ - 454БМ

Рефрактометр устанавливают так, чтобы свет падал на входное окно осветительной призмы и на зеркало, которым направляют свет во входное окно измерительной призмы. Для этого нужно открыть заслонку 6 и зеркала 3, 4 (см. рисунок 2.14).

Осветительную призму открыть на угол 100°. На чистую полированную поверхность измерительной призмы 1 (см. рисунок 2.15) стеклянной палочкой или пипеткой, не касаясь призмы, нанести 2 - 3 капли жидкости так, чтобы вся поверхность была покрыта пленкой жидкости. Опустить осветительную призму 3 и прижать ее крючком 7. Измерения прозрачных жидкостей проводят в проходящем свете, когда он проходит через открытое окно осветительной призмы.

Лучи света проходят осветительную призму 3, рассеиваясь на выходе матовой гранью А1В1, входят в исследуемую жидкость и падают на полированную грань АВ измерительной призмы 1 (см. рисунок 2.15). Поворотом зеркала 3 (см. рисунок 2.14) ярко освещают призму белым светом. Все поле в окуляре должно быть освещено равномерно.

Наличие темных пятен указывает на недостаточное количество взятой для анализа жидкости. В таком случае призмы раскрывают и добавляют несколько капель исследуемой жидкости и снова плотно сжимают их.

До начала измерений проверьте чистоту осветительной и измерительной призм прибора (смочите их дистиллированной водой и протрите чистой мягкой салфеткой).

Перед измерениями проверяют рефрактометр по дистиллированной воде:

а) на чистую полированную поверхность измерительной призмы осторожно, не касаясь ее поверхности, наносят пипеткой 2 - 3 капли дистиллированной воды и опускают осветительную призму;

б) поворотом зеркала добиваются наилучшей освещенности шкалы. Вращением нижнего маховика, расположенного на правой стороне рефрактометра и смотря в окуляр, границу светотени вводят в поле зрения окуляра 1. Вращением верхнего маховика устраняют цветную окраску границы раздела света и тени и наводят ее на резкость;

в) наблюдая в окуляр, совмещают центр перекрестия с линией светотени с помощью нижнего маховика и измеряют значение показателя преломления воды на шкале, расположенной внизу окуляра.

При 20°С показатель преломления воды nD = 1,3330. Если опыт проводился при другой температуре (измерить температуру воды термометром), то вводится температурная поправка к полученному значению показателя преломления для воды:

?n = 0,0565 • 10-4 + 10-4 • (t0 - 10) (2.23)

где 10-4 - температурный коэффициент показателя преломления дистиллированной воды, 1/град.

n = n?D + ?n (2.24)

Совпадение экспериментально полученного значения n с данными таблицы 2.9 при той же температуре говорит о том, что рефрактометр настроен.

Таблица 2.9 Температурные отклонения показателя преломления воды

t,°C

nD

t,°C

nD

15

1,3335

23

1,3327

16

1,3334

24

1,3326

17

1,3333

25

1,3325

18

1,3332

26

1,3324

19

1,3331

27

1,3323

20

1,3330

28

1,3322

21

1,3329

29

1,3321

22

1,3328

30

1,3320

Выполнение работы

1) Приготовить растворы для построения градуировочного графика

Готовят пять градуировочных растворов сахарозы в мерных колбах емкостью 25 см3, охватывая диапазон ожидаемой концентрации в исследуемом образце (например, на этикетке вина написано: «сахара 30 - 50 г/дм3», следовательно, нужно приготовить растворы сахара концентрации 20; 30; 40; 50; 60 г/дм3). В качестве растворителя используют водно - спиртовый раствор.

Градуировочные растворы готовятся из массы навески сахарозы при приготовлении 25 см3 раствора с концентрацией сахара 20 г/дм3 по соотношению:

20 г - 1000 см3.

m1, г - 25 см3.

Навеску сахарозы количественно переносят через воронку в мерную колбу вместимостью 25 см3. В колбу добавляют водно - спиртовой раствор на ? ее объема и перемешивают содержимое до полного растворения сахарозы. Затем оставшийся объем довести до метки водно - спиртовым раствором и перемешивают. Аналогично рассчитывают и готовят растворы других концентраций.

2) Измерить показатель преломления градуировочных растворов:

а) приподнять осветительную призму и поверхности обеих призм осторожно протереть фильтровальной бумагой;

б) нанести 2 капли раствора на поверхность измерительной призмы и опустить осветительную призму;

в) поворотом верхнего маховика установить границу светлого и темного полей. Она должна быть четкой и не иметь радужной окраски;

г) вращать нижний маховик до совпадения границы темного и светлого участка поля зрения.

д) полученные данные занести в таблицу 2.10;

Таблица 2.10 - Результаты эксперимента

№ коблы

Концентрация сахарозы, г/дм3

Показатель преломления

водно - спиртовой раствор

-

1

2

3

4

5

3) Подготовить исследуемый продукт к анализу. Вино, полученное для анализа предварительно пропускают через хроматографическую колонку, заполненную активированным углем, чтобы отделить красящие органические вещества. Устанавливают скорость капания, равную вытеканию 1 капли через каждые 3 с. Если вино недостаточно осветлилось, операцию повторяют 2 - 3 раза.

4) Измерения показателя преломления очищенного вина ведется аналогично измерению показателя преломления градуировочных растворов.

5) По окончании измерений промыть обе призмы дистиллированной водой и вытереть насухо фильтровальной бумагой.

6) Построить градуировочный график по результатам таблицы 2.10.

7) Используя градуировочный график, определите содержание сахарозы в вине, и сравнить с данными на этикетке бутылки.

Обработка результатов эксперимента

1) Проверяют рефрактометр по дистиллированной воде

Показатель преломления по дистиллированной воде n = 1,3302 при температуре проведения эксперимента Т = 28,8°С

?n = 0,0565 • 10-4 + 1 • 10-4(t - 10) = 0,0565 • 10-4 + 1 • 10-4(28,8 - 10) = 1,89 · 10-3

n = n?D + ?n = 1,3302 + 1,89 · 10-3 = 1,33209 ~ 1,3321

2) Построить градуировочный график по результатам таблицы 2.11

Таблица 2.11- Результаты эксперимента

№ колбы

Концентрация сахарозы, г/дм3

Показатель преломления

водно - спиртовой раствор

?

1,3340

1

25

1,3380

2

30

1,3385

3

35

1,3390

4

40

1,3395

5

45

1,3400

Рисунок 2.16 - График зависимости показателя преломления n от концентрации водно - спиртового раствора сахарозы, г/дм3

3) Используя градуировочный график, определить содержание сахарозы в вине, и сравнить с данными на этикетке бутылки.

Показатель преломления для образца вина n = 1,3390

Уравнение прямолинейной зависимости показателя преломления n от концентрации водно - спиртового раствора сахарозы, г/дм3: n = 1,34426 · 10?4 · C + 1,33425, следовательно:

n = 1,34426 · 10?4 · C + 1,33425

1,3390 = 1,34426 · 10?4 · C + 1,33425

0,00475 = 1,34426 · 10?4 · C

C = 35,3354 ~ 35,33 г/дм3

Анализируемое винное изделие - полусладкое белое столовое вино «Русская Лоза Мускат», алк 10 - 12%, сахар 30 - 40% объем 0,7л

Область применения

1) Круговорот углекислого газа в природе

Углеводы образуются в растениях в процессе фотосинтеза из поглощаемого диоксида углерода атмосферы и воды.

2) Источник пищи

Углеводы служат основным ингредиентом пищи млекопитающих. Общеизвестный их представитель - глюкоза - содержится в растительных соках, плодах, фруктах и особенно в винограде (отсюда ее название - виноградный сахар). Она является обязательным компонентом крови и тканей животных и непосредственным источником энергии для клеточных реакций. Приём пищи увеличивает расход энергии в покое в среднем до 2200 ккал (белки до 30%, углеводы и жиры на 4 - 15%). Эта способность пищи повышать энерготраты называется специфически - динамическим действием пищи.

3) Энергетическая и строительная функция углеводов

Углеводы входят в состав клеток и тканей всех растительных и животных организмов. Они имеют большое значение как источники энергии в метаболических процессах. Для жизнедеятельности организма необходима энергия. Она освобождается в процессе диссимиляции сложных органических соединений: белков, жиров и углеводов, потенциальная энергия которых при этом переходит в кинетические виды энергии, в основном в тепловую, механическую и частично в электрическую.

Расщепление идет путем присоединения кислорода - окисления. При окислении 1 г жира в организме выделяется 9,3 ккал тепла, 1 г углеводов - 4,1 ккал, 1 г белка - 4,1 ккал.

То количество тепла, которое выделяется при окислении в организме 1 г вещества, называется теплотой сгорания.

Часть освободившейся энергии используется для построения новых клеток и тканей, часть потребляется в процессе функционирования органов и тканей - сокращения мышц, проведения нервных импульсов, синтеза ферментов и гормонов и др. Большая часть химической энергии переходит в тепло, которое идет на поддержание постоянной температуры тела.

4) Строительный материал

Целлюлоза является распространенным растительным полисахаридом, входит в состав древесины, скелета стеблей и листьев, оболочки зерновых культур, овощей и фруктов.

5) Кулинарное и кондитерское дело

Химически подтверждают: температура выше 120°С разрушает питательные вещества и запускает реакции, в результате которых образуются элементы, способные навредить организму. Так, готовка на открытом огне вызывает реакцию Майяра: этот французский химик обнаружил, что высокая температура меняет качество аминокислоты в присутствии сахара.

Именно эта реакция придает характерный цвет хлебной корочке, куриной коже, чипсам. Кроме того, благодаря ей появляется аппетитный запах жаренного.

6) Постоянство внутреннего состава крови

Для человека основным источником углеводов является растительная пища. В пище содержатся главным образом сложные углеводы: полисахариды - крахмал, гликоген и дисахариды - молочный, свекловичный, тростниковый и другие сахара. В пищеварительном тракте при их расщеплении образуются простые моносахариды - глюкоза, фруктоза и галактоза, которые всасываются из кишечника в кровь.

В крови углеводы содержатся в виде глюкозы 4,44 - 6,66 ммоль/л, в печени и мышцах - в виде небольших запасов гликогена.

При голодании запасы гликогена уменьшаются, так как гликоген расщепляется до глюкозы и поступает в кровь, поддерживая постоянный уровень сахара в крови. Состояние, когда уровень сахара в крови становится ниже 4,44 ммоль/л, называют гипогликемией, повышение свыше 6,66 ммоль/л - гипергликемией. При гликемии нарушается функциональное состояние нервных клеток, у человека появляются слабость, чувство голода, понижается работоспособность.

Если гипогликемия продолжается длительное время, то человек теряет сознание и может наступить смерть. В случаях, когда человек принимает одномоментно 150 - 200 г легкоусвояемых углеводов (сахар, конфеты), возникает так называемая алиментарная (пищевая) гипергликемия, которая сопровождается глюкозурией - появлением сахара в моче; избыток сахара выводится почками. Всосавшиеся в кишечнике моносахариды с током крови через портальную вену попадают в печень, где часть их превращается в гликоген и откладывается про запас.

Кроме, печени гликоген откладывается в скелетных мышцах. Всего в запасе организма имеется около 350 г гликогена.

7) Применение в медицине для получения антибиотиков

Стрептомицин - антибиотик группы аминогликозидов широкого спектра действия - основание, растворим в воде, термоустойчив. Обладает устойчивостью как в сухом состоянии, так и в растворах (в особенности при рН = 3 - 7 и температуре раствора < 28°С). Обычно выделяют в виде солей: хлоргидрат, сульфат и др.; [?]D26 водного раствора хлоргидрата - 86,1°.

Исторически первый антибиотик группы аминогликозидов и первый, оказавшийся активным против туберкулёза и чумы. Был открыт вторым после пенициллина Зельманом Ваксманом, за что он получил Нобелевскую премию в 1952 году.

стрептомицин

Образуется в процессе жизнедеятельности лучистых грибов Streptomyces globisporus streptomycini или других родственных микроорганизмов.

После введения стрептомицин быстро и полностью всасывается из места инъекции.

Распределяется во всех тканях организма. Связывание с белками плазмы низкое (0 - 10%). Не метаболизируется. T1/2 - 2 - 4 ч. Выводится в неизмененном виде с мочой.

8) Информационная функция

Нуклеиновые кислоты или полинуклеотиды - это сополимеры четырех типов нуклеотидов, представляющих собой сложные эфиры фосфорной кислоты и пентозы (пятичленного циклического сахара), в молекуле которой одна из гидроксильных групп замещена азотистым основанием.

В природе существует два типа нуклеиновых кислот, различающихся входящими в их молекулы пентозами - рибонуклеиновая кислота (РНК), содержащая рибозу, и дезоксирибонуклеиновая кислота (ДНК), содержащая дезоксирибозу.

Дезоксирибонуклеиновая кислота (ДНК) - макромолекула, обеспечивающая хранение, передачу из поколения в поколение и реализацию генетической программы развития и функционирования живых организмов. ДНК содержит информацию о структуре различных видов РНК и белков.

Так же, как ДНК, рибонуклеиновая кислота (РНК) состоит из длинной цепи, в которой каждое звено называется нуклеотидом.

Каждый нуклеотид состоит из азотистого основания, сахара рибозы и фосфатной группы. Последовательность нуклеотидов позволяет РНК кодировать генетическую информацию.

Все клеточные организмы используют РНК для программирования синтеза белков.

Заключение

В ходе курсового проекта была рассмотрена общая характеристика углеводов и их основные химические свойства. А также проанализированы разные пищевые объекты на количественное содержание углеводов. В частности, определено общее количество сахара в кондитерских изделиях фотоколориметрическим методом, количество крахмала в зерновом сырье по методу Эверса, количество сахара в сухих винах с использованием колоночной хроматографии методом рефрактометрии.

При этом были получены следующие данные:

1) фотоколориметрическое определение общего сахара в кондитерских изделиях

Анализируемое кондитерское изделие - карамель леденцовая «анисоментоловая». Оптическая плотность образца А = 0,785, масса m (C12H22O11) = 18,69 мг, массовая доля общего сахара ? = 93,45%.

2) определение крахмала в зерновом сырье по методу Эверса

Анализируемое зерно - пшено «Ярмарка», пищевая ценность 100 г: белки - 12 г; жиры - 3 г; углеводы - 67 г; калорийность - 340 ккал/1423 кДж, масса нетто - 800 г. Содержания крахмала ? = 29,43%, содержание крахмала на сухое вещество ? = 86,06%.

3) определение сахара в сухих винах с использованием колоночной хроматографии методом рефрактометрии

Анализируемое винное изделие - полусладкое белое столовое вино «Русская Лоза Мускат», алк 10 - 12%, сахар 30 - 40% объем 0,7л. Показатель преломления для образца вина n = 1,3390, содержание сахарозы в вине C = 35,33 г/дм3.

Список основных источников

1) Ю. А. Овчинников, Биоорганическая химия, Москва: «Просвещение»1987.

2) В.П. Перельман под редакцией члена корр. АН СССР Б.В. Некрасова, Краткий справочник химика, Москва: Государственное научно ? техническое издательство химической литературы, 1955 - 223 с.

3) Е.А. Воробьева, А.В. Губарь, Е.Б. Сафьянникова, Анатомия и физиология Москва: «Медицина», 1981 - 207 с.

4) ГОСТ 15113.6-77 - Концентраты пищевые. Методы определения сахарозы

5) Шелгаев В.Н., Московский Государственный медико-стоматологический университет имени А.М. Евдокимова, Углеводы курс лекций, Москва: 2013.

Размещено на Allbest.ur


Подобные документы

  • Формула углеводов, их классификация. Основные функции углеводов. Синтез углеводов из формальдегида. Свойства моносахаридов, дисахаридов, полисахаридов. Гидролиз крахмала под действием ферментов, содержащихся в солоде. Спиртовое и молочнокислое брожение.

    презентация [487,0 K], добавлен 20.01.2015

  • Определение и строение глюкозы - моносахарида и шестиатомного сахара. Изомеры. Фруктоза. Физические и химические свойства. Особенности получения - гидролиз крахмала, фотосинтез. Сферы применения. Распространение в природе. Значение глюкозы для человека.

    презентация [6,1 M], добавлен 11.09.2016

  • Применение синтеза моносахаридов по методу Килиани-Фишера для увеличения длины углеродной цепи альдозы на один атом углерода. Деградация альдоз по Руффу - декарбокислирование соли гликоновой кислоты. Мутаротация и химические свойства моносахаридов.

    реферат [121,6 K], добавлен 21.02.2009

  • Методы определения редуцирующих веществ в гидролизатах. Определение легко- и трудногидролизуемых полисахаридов, массовой доли PB в гидролизатах по методу Макэна-Шоорля и эбулиостатическим методом. Анализ гидролизатов методом газожидкостной хроматографии.

    реферат [487,2 K], добавлен 24.09.2009

  • Отработка методики количественного определения редуцирующих сахаров в рабочем растворе. Установление соответствия нормальным содержаниям редуцирующих сахаров в кондитерских изделиях, содержащихся в ГОСТе, формирование их потребительских свойств.

    курсовая работа [401,8 K], добавлен 06.05.2014

  • Сравнение свойств полисахаридов на примере молекул крахмала и целлюлозы. Особенности строения крахмала и целлюлозы. Домашние мини-исследования: определение крахмала в продуктах питания и оценка растворимости целлюлозы в органических растворителях.

    презентация [3,9 M], добавлен 12.01.2012

  • Классификация, физические и химические свойства полисахаридов. Гидролизация крахмала под действием ферментов и кислот. Лекарственные растения и сырье, содержащие полисахариды (гомогликозиды, полиозы, гликаны, голозиды). Применение в медицинской практике.

    реферат [84,2 K], добавлен 23.08.2013

  • Краткая характеристика флавоноидов. Подготовка растительного сырья. Строение, физические и химические свойства природных флавоноидов. Методы их выделения и идентификации. Определение оптимальных условий экстрагирования рутина и кверцетина из сырья.

    дипломная работа [5,7 M], добавлен 03.08.2011

  • Фармакологические свойства и применение в медицине инулина. Оценка доброкачественности сырья. Определение инулина по методу Бертрана, содержания эфирного масла и содержания флавоноидов. Качественное и количественное определение дубильных веществ.

    курсовая работа [91,9 K], добавлен 16.06.2012

  • Общее представление о веществах, объединяемых под названием "сахара", молекулярная интерпретация их химических аналитически значимых свойств. Изучение химических методов определения сахаров, основанных на их способности окисляться в щелочной среде.

    контрольная работа [2,7 M], добавлен 10.06.2010

Работы в архивах красиво оформлены согласно требованиям ВУЗов и содержат рисунки, диаграммы, формулы и т.д.
PPT, PPTX и PDF-файлы представлены только в архивах.
Рекомендуем скачать работу.