Акушерство, гинекология и искусственное осеменение сельскохозяйственных животных

Эффективен также метод Б. А. Баш-Кирова, заключающийся в блокировании наружного семенного нерва, кожно-латерального нерва бедра, подвздошно-пахового нерва и их ветвей путем инъекции в соединительнотканное пространство между большой и малой поясничными мышцами 80--100 мл 0,5%-ного раствора новокаина. При двустороннем заболевании вымени раствор вводят с обеих сторон. Промежностные нервы блокируют по способу И. И. Магды -- инъецируют 20--30 мл 3%-ного раствора новокаина в области седалищной вырезки.

Положительные результаты дает введение 1 %-ного раствора новокаина в брюшную аорту по методу Д. Д. Логвинова.

Хороший эффект получается при введении 100--150 мл 1 %-ного раствора новокаина интравенозно с интервалом 24--48 ч. Животные с серозным маститом выздоравливают в большинстве случаев через 2--3 сут, с катаральным -- через 4--5, с фибринозным-- через 6, с гнойно-катаральным -- через 5 и с геморрагическим -- через 6 сут.

Положительные результаты дают проводниковая анестезия молочной железы по И. И. Магде, блокады по В. В. Мосину, Г. С. Фатееву и др.

Антибиотикотерапия. Нередко течение воспалительного процесса осложняют микробы; они могут быть и непосредственной причиной маститов. В таких случаях целесообразно применять антибиотики. Для выбора более эффективного антибиотика необходимо определить вид патогенной микрофлоры и ее чувствительность к препарату.

При остром течении маститов {серозного, катарального, фибринозного или гнойного) с повышением температуры вводят внутримышечно антибиотики (пенициллин, стрептомицин, бициллин, эритромицин и др.) в дозе 3-- 5 тыс. ЕДна 1 кг массы тела. Рекомендуется также вводить антибиотики комбинированно (пенициллин + стрептомицин, пенициллин + эритромицин. тетрациклин + неомицин и др.).

В начальной стадии поражения молочной железы, когда изменения качества молока можно установить лишь димастином, рекомендуется вводить внутривыменно раствор пенициллина или эритромицина (обладающих малым сроком выведения) в дозах 50-- 100 тыс. ЕД. Эритромицин вначале растворяют в 10 мл этилового спирта, а затем в 90 мл дистиллированной воды. Лечебные препараты вводят после освобождения четверти от секрета и дезинфекции соска в дозах по 50--100 мл подогретыми до 38--40 "С. Раствор выдаивают через 1--2 ч после введения. Вливание проводят 1--2 раза вдень.

Лечение маститов в сухостойный период. Стали достаточно часто применять в последние годы. Дело в том, что многие противомикробные препараты длительное время выводятся с молоком, поэтому их использование у лактирующих коров нецелесообразно. Поэтому были созданы специальные препараты для внутрицистернального введения коровам (мастицид-2, линимент прополиса и др.). Такие препараты, как апрамаст и гелиомаст, вводят однократно в день последней дойки или в первые 3 дня сухостоя, а также при выявлении мастита во время сухостойного периода. Рекомендуется проводить лечение не позднее чем за 30 сут до ожидаемых родов (В. М. Юрков, Л. Д. Демидова).

В первые 30 сут сухостоя секрет из пораженных долей не отличается от такового из здоровых. Для визуальной оценки секрета его исследуют между 30-м и 45-м днями сухостоя. Нормальный секрет вымени у коров в это время серо-молочного, соломенно-желтого или шафранного цвета, однородной от полужидкой до густой консистенции, клейкость хорошо выражена. Объем секрета не превышает 5 мл. При остром катаральном мастите количество секрета увеличивается до 10--20 мл, он становится серым, мутным, водянистым, однородным (без гноя и слизи), менее клейким. При подостром катарально-гнойном мастите у сухостойных коров секрет жидкий, серого цвета, мутный, с наличием гноя и слизи, клейкость отсутствует. В пораженной доле -- очаги уплотнения. С переходом болезни в хроническое течение секрет приобретает кремовый цвет, становится густым, непрозрачным, в нем преобладают гной и слизь, клейкость отсутствует. Количество секрета достигает 30--50 мл (Н. И. Полянцев, Л. Г. Подкуйко).

Методика гинекологического исследования самок (анамнез, наружное и внутреннее исследования)

\

Анамнез должен содержать данные о двух взаимосвязанных периодах. Вначале выясняют условия, в которых находилось животное до заболевания (поведение, аппетит, условия содержания и ухода, эксплуатация), а затем собирают сведения, которые могут способствовать распознаванию заболевания. Анамнестические сведения желательно получить от лица, которое постоянно наблюдает за животным (ветеринар, техник по искусственному осеменению, доярки и др.) и располагает данными, возможно, за продолжительное время.

Собирая анамнез, нужно умело задавать вопросы, так как только на правильно поставленный вопрос можно подучить объективный ответ, который окажет помощь в постановке диагноза. При сборе анамнеза необходимо получить сведения на следующие основные вопросы;

1 Когда заболело животное?

2 Какими наиболее характерными признаками проявляется болезнь?

3Сколько заболело животных и наблюдались ли раньше аналогичные заболевания?

4 Когда были последние роды, как они протекали и какая продолжительность времени от выведения плода до отделения последа?

5. Какая продолжительность течения послеродового периода?

6. Когда наблюдалась первая течка и охота после родов, какое применяйся осеменение (искусственное, естественное)?

Необходимо установить метод осеменения, применяемый в хозяйстве, изучить порядок осеменения и выявить его недостатки. Для этого нужно выяснить: квалификацию и стаж работы техника по искусственному осеменению, оборудованность пункта искусственного осеменения и его санитарное состояние, способ хранения спермы, метод определения ее качества перед осеменением, способ учета осемененных животных.

Анализ полученных анамнестических данных позволяет ориентировочно предположить о возможных причинах гинекологических заболеваний животного. Нередко при изучении причин бесплодия самок делаются выводы о необходимости проведения клинического обследования производителя, исследования качества его спермы, метода ее хранения и пр. Только при комплексном анализе причин можно сделать научно обоснованный вывод и правильно организовать профилактику бесплодия.

Однако следует постоянно помнить, что диагноз и окончательное заключение о причинах бесплодия можно сделать только -после полного клинического исследования животного.

Гинекологическое исследование. При проведении гинекологического исследования необходимо выявить наиболее характерные признаки заболевания половых органов. Кроме того, нужно учитывать, что некоторые симптомы наблюдаются при ряде других заболеваний, поэтому следует применить дополнительные методы исследования, и полученные данные строго дифференцировать. Гинекологическое исследование состоит из наружного и внутреннего.

Наружное исследование. При проведении наружного исследования производят осмотр и пальпацию крупа тазовых связок, брюшных стенок, вульвы. Если имеются выделения экссудата; из аюловой щели, то определяют его характер (цвет, запах, консистенцию и пр.) Данные наружного исследования имеют большое значение в комплексе получаемых сведений для правильной постановки диагноза.

Внутреннее исследование. Внутреннее исследование бесплодного животного состоит из вагинального и ректального. При вагинальном и ректальном исследовании половых органов самки можно обнаружить характерные признаки заболевания и с достаточной точностью дифференцировать патологические процессы. Вместе с тем в клинической практике ветеринарному специалисту нередко приходится для диагностики причин бесплодия применять специальные методы исследования, так как вагинальным и ректальный методами исследования не удается, выявить изменения половых органов.

Список используемой литературы

И.А. Бочаров, А.В. Бесхлебнов. Акушерство, гинекология и искусственное осеменение сельскохозяйственных животных. Ленинград "Колос" 1967

Г.А. Кононов. Ветеринарное акушерство и гинекология. Ленинград "Колос" 1977

Учебник под редакцией В.Я. Никитина и профессора М.Г. Миролюбова. Ветеринарное акушерство, гинекология и биотехника размножения. Москва "Колос" 1999