Технологія виробництва інтерферону
Природа та механізм дії інтерферону. Фармакокінетичні характеристики рекомбінантного немодифікованого (стандартного) інтерферону. Огляд найпоширеніших технологій виробництва інтерферону, їх аналіз та порівняння, зіставлення рівнів продуктивності методів.
Рубрика | Биология и естествознание |
Вид | курсовая работа |
Язык | украинский |
Дата добавления | 19.05.2016 |
Размер файла | 1,9 M |
Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже
Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.
Размещено на http://www.allbest.ru/
НАЦІОНАЛЬНИЙ АВІАЦІЙНИЙ УНІВЕРСИТЕТ
ІНСТИТУТ ЗАОЧНОГО ТА ДИСТАНЦІЙНОГО НАВЧАННЯ
КАФЕДРА БІОТЕХНОЛОГІЇ
КУРСОВА РОБОТА
з дисципліни «Технологія імунобілогічних препаратів»
на тему: «Технологія виробництва інтерферону»
Виконала: студентка групи БР-401з
Батуєва І.І.
6.051401 «Біотехнологія»
Київ - 2016
ВСТУП
Інтерферон є одним із сучасних засобів терапії та профілактики вірусних захворювань. Процес отримання інтерферону є не тільки дуже важливим для медицини, а й технологічно складним. Найголовнішою характеристикою отриманого препарату, крім йому властивих, є якість. Лікарські препарати повинні бути не тільки ефективні у використанні, але також і безпечні для людини, тому процес виробництва інтерферону повинен бути організований з чітким дотриманням технології..
Об'єктом дослідження даної роботи є інтерферон - біологічно активний білок, який відносять до класу цитокінів. Інтерферон продукується клітинами організму у відповідь на вірусну хворобу. Він забезпечує противірусний захист організму, володіє протизапальною, імуномоделюючою, протипухлинною, радіопротективною та антиміотичною дією. Предметом дослідження є технології виробництва інтерферонів.
Метою є огляд найпоширеніших технологій виробництва інтерферону, їх аналіз та порівняння, зіставлення рівнів продуктивності методів, їх трудомісткість.
1. Природа інтерферону
інтерферон фармакокінетичний рекомбінантний немодифікований
Інтерферони - група низькомолекулярних білків, які володіють рядом спільних біологічних властивостей, головною з яких є здатність при контакті з клітинами викликати в них стійкість до вірусних інфекцій. Їх молекулярна маса становить 22*103 - 94*103 дальтон. Інтерферон був відкритий А.Айзексом і Ж. Ліндеманом в 1957 році в клітинах курча, яке було заражене грипом.
Інтерферони хребетних і, також, людини розділяють на три групи: ?-, або лейкоцитарні, ?-, або фібробластні, та ?- , або імунні (продукуються Т-лімфоцитами). Найбільш сильним є ?-інтерферон. Ці групи інтерферонів розрізняють за структурою молекул, низкою біологічних властивостей і типом клітин, які його продукують в організмі.
Деякі характеристики інтерферонів людини наведено в таблиці 1.1.
Таблиця 1.1. Деякі характеристики інтерферонів людини
Тип інтерферона |
Характеристика |
|||||||||
Клітинипродуценти |
Індуктор |
Число генів інтер-фе-рона |
Локалізація в хромосомах |
Наявність нітронів в генах |
Стабіль-ість при рН2 |
Число амінокислот |
Мол. маса, кДа |
|||
В первинній молекулі |
В кінцевій молекулі |
|||||||||
? |
Лейкоцити переферичної крові |
Вірусна дволанцюгова РНК |
14 |
9 |
- |
Так |
166 |
143 |
17 |
|
? |
Фібробласти |
____ |
2 (або 5) |
9, 2, 5 |
- |
Так |
166 |
145 |
17 |
|
? |
Лімфоцити |
Мітогени та антигени |
1 |
12 |
+ |
Ні |
166 |
146 |
17 |
Інтерферони ? і ? є глікопротеїнами, а інтерферон ? - протеїном.
Інтерферони - клітинні білки, і тому вони є видоспецифічними, тобто кожному виду тварин властивий свій інтерферон. Але в свою чергу, інтерферони не є вірусоспецифічними. Є винятки такої специфічності: інтерферон людини захищає клітини великої рогатої худоби краще, ніж коров'ячий інтерферон [1, 2, 3].
Слід зазначити, що у кожного виду тварин є декілька ?-інтерферонів (зокрема, у людини знайдено 14 різних генів ?-інтерферонів), один або кілька ?-інтерферонів і завжди один ?-інтерферон. На рис.1.1 наявна послідовність гену ?-інтерферона людини і виведена відповідна структура білка, який містить 166 амінокислотних залишків. З послідовності нуклеотидів можна побачити, що на початковому етапі синтезується попередник інтерферону, який містить сигнальний пептид з 23 залишків амінокислот. Сигнальний пептид відщеплюється в результаті процесингу при секреції білку. Аналогічно ?- і ?-інтерферони синтезуються у вигляді попередників.
?- і ?-Інтерферони є типовими глобулярними білками (вміст ?-спіральних структур 40-75%). В ?-інтерферонах було знайдено два дисульфідні зв'язки [4].
Встановлено, що індукторами інтерферонів можуть бути: інактивовані температурою або ультрафіолетом віруси грипу, рео-, рота- та інші віруси; деякі поліаніонні речовини (бактеріальні ендотоксини, полікарбонові кислоти, кополімери пірану); синтетичні дволанцюгові полірибонуклеотиди. Відомо, що дволанцюгова РНК стимулює утворення інтерферону [3].
Гени, що кодують IFN-? та IFN-? локалізовані на 9-й хромосомі каріотипу людини, ген IFN-? -- на 12-й хромосомі [5].
Рис. 1.1 Послідовність амінокислот в ?-інтерфероні людини та нуклеотидів, що кодують білок
2. Механізм дії інтерферону
Інтерферони викликають стан несприйнятливості до широкого спектра вірусних інфекцій, що індукується у всіх клітинах, які мають рецептори до інтерферонів. Вони індукують як локальні, так і системні противірусні реакції в інших клітинах. Крім того, інтерферони володіють ще двома важливими властивостями: пригнічують поліферацію клітин (і, таким чином, потенційно є протипухлинним засобом) і модулюють імунну систему.
Інтерферони синтезуються і секретуються одними клітинами і проявляють свій ефект, діючи на інші клітини. В цьому відношенні вони подібні до гормонів [4].
Інтерферони становлять першу «лінію оборони» проти вірусів, яка діє ще до того, як імунні механізми виявляються повністю задіяні. Інтерферони не мають специфічності відносно вірусів і пригнічують репродукцію різних вірусів, чутливість яких неоднакова. Противірусна активність інтерферонів реалізується через гальмування попадання вірусної частинки в клітину, інгібування синтезу мРНК і трансляції вірусних білків, також через блокування процесів складання вірусної частинки і її виходу з інфікованої клітини. Вважається, що гальмування синтезу вірусних білків - це основний механізм противірусної дії інтерферонів.
У результаті зв'язування молекул інтерферонів зі специфічними інтерфероновими рецепторами на поверхні клітин відбувається активація групи генів, локалізованих у людини в 21-й хромосомі. Цей процес супроводжується формуванням понад 20 нових внутрішньоклітинних білків, що сприяють виникненню резистентності до вірусів і яких немає в клітинах, що не піддались впливу інтерферонів [6].
Серед цих ферментів можна виділити 2',5'-олігоаденілатсинтетази та протеїнкінази. Обидва ферменти проявляють свою активність у присутності дволанцюгових РНК, а саме такі РНК є продуктами реплікації багатьох вірусів або вони наявні у віріонах. Перший фермент синтезує 2',5'-олігоаденілати (з АТФ), які активують клітинну рибонуклеазу-1. Другий фермент фосфорилює фактор ініціації трансляції IF-2. Інтерферон також активує фосфодиестеразу, що розщеплює частину тРНК і, таким чином, попереджає подовження пептидних ланцюгів. Кінцевим результатом цих процесів є інгібування біосинтезу білка і розмноження вірусів в інфікованій клітині, а потім - її лізис. Механізм дії інтерферону показано на рис.2.1.
Рис. 2.1 Механізм дії інтерферону
Деякі віруси здатні протистояти дії інтерферонів, блокуючи синтез або гальмуючи активність індукованих інтерфероном білків. Таким чином, під впливом інтерферонів у клітині синтезується два ферменти, один із яких гальмує синтез вірусних білків, інший - розщеплює створені вірусні РНК. У результаті цього нові вірусні частинки або взагалі не формуються, або їх кількість зменшується в багато десятків або сотень разів.
Ефективність дії інтерферонів залежить під природи й функціонального стану систем, які модифікуються ними: від наявності (або відсутності) рецепторів до інтерферону на поверхні клітини, від рівня продукування внутрішньоклітинних молекул-посередників, які реалізують індукований інтерфероном каскад реакцій; оптимізація терапевтичних схем, зокрема підбір дози, шляхи введення, тривалість інтерферонотерапії та її об'єднання з іншими лікувальними діями (лікарськими препаратами) [6].
3. Виробництво інтерферону
3.1 Виробництво лейкоцитарного інтерферону
За цією технологією можна отримати 1мкг інтерферону з 1л донорської крові, що становить одну дозу [10].
Цей метод добування інтерферону є першим із запропонованих. Він базується на використанні донорської крові, і був запропонований К.Кантеллом в 1977 році. При цьому лейкоцити інкубуються разом із вірусом (наприклад, вірус Сендай або вірус хвороби Ньюкасла), а в якості компонента поживного середовища слугує сироватка крові людини або бика (іноді - казеїн молока). Далі суміш очищують за допомогою хроматографічних методів і отримують достатньо концентрований препарат інтерферону [4].
В якості клітин-продуцентів інтерферону використовують лейкоцити людини, виділені з донорської крові, лейкоцитарної або еритроцитної маси. Для індукції інтерферону використовується вірус хвороби Ньюкасла, штам «Н», у вигляді неочищеної алантоїсної рідини із вірусом [11].
Для отримання великих кількостей ІФН використовують шестиденні одношарові культури клітин курячого ембріона або культивовані лейкоцити крові людини, заражені певним видом вірусу. Іншими словами, для отримання ІФН створюють певну систему вірус-клітина [12].
Весь технологічний процес проводять в колбах, матрацах або бутелях. Регламентом не передбачено очищення інтерферону від баластних білків. Як показує практика роботи підприємств і товариств із великим об'ємом випуску препарату, діючий Регламент більш прийнятний при виготовленні інтерферону в малих кількостях.
Підприємства, які перероблюють за день від 30 до 100 л донорської крові та таку ж кількість суспензії лейкоцитів на інших етапах технологічного процесу, першими виявили недоліки отримання інтерферону в матрацах, колбах або бутелях. Цими недоліками є дуже велика трудомісткість, багатостадійність технології, великий об'єм ручної праці, відсутність можливості автоматизації окремих технологічних процесів.
При веденні в матрацах або бутелях стадії праймингу, індукції та біосинтезу інтерферону, враховуючи відсутність автоматичного контролю та підтримання температурних параметрів суспензії, призводить до отримання інтерферону з різною противірусною активністю, що в свою чергу відбивається на собівартості та рентабельності препарату.
Іншим недоліком даної технології є відсутність стадії очищення інтерферону від чужорідних антигенів (тобто, вірусного індуктора, білків алантоїсної рідини, включаючи овальбумін). Присутність чужорідних антигенів в інтерфероні для ректального використання може викликати сенсибілізацію організму до цих антигенів, особливо до овальбуміну.
Після відкриття в 80-х роках лімфотропних вірусів, в тому числі вірусу імунодефіциту людини (ВІЛ), що викликає синдром набутого імунодефіциту людини (СНІД) та можливе зараження людей через кров або препарат, виготовлений з такої крові, гостро поставило питання про введення стадії очистки і додаткових методів інактивації можливих вірусів-контамінантів в нативному ЧЛІ для назального використання.
Існуючі методи очистки інтерферону є достатньо трудомісткими і мало придатні для очистки великих об'ємів інтерферону. Так, наприклад, в технології виготовлення препарату інтерферону для ін'єкцій використовують багатоетапну процедуру осаджування білків роданідом калію з фракціонуванням в етанолі, контролюючи при цьому рН. Метод при 1000-кратній концентрації ЧЛІ дозволяє в 100 разів його очищувати з 60% виходом кінцевого продукту.
Інший відомий метод очистки інтерферону від домішок - використання імуносорбції. Інтерферон специфічно адсорбували з суміші білків на імуносорбенті, з іммобілізованими антиінтерфероновими імуноглобулінами, із подальшим елююванням. Був описаний метод очистки інтерферону шляхом його осаджування сульфатом амонію із подальшим розчиненням осаду в 2-8 М сечовині і далі гель-фільтрацією на колонці з гелем Акрилекс II-60.
Інші дослідники осаджували інтерферон трихлороцтвою кислотою і проводили хроматографію розчиненого осаду на колонці з Сефадексом G-100.
Однак, усі вказані методи дозволяють отримувати високочисті препарати інтерферону з достатньо високим виходом за противірусною активністю, але із втратами інших біологічно активних білків, які продукуються лейкоцитами на стадії біосинтезу інтерферону.
Іншим недоліком є те, що достатньо важко в промисловому масштабі проводити роботи з хроматографічним обладнанням при великому об'ємі виробництва інтерферону.
Слід також зазначити, що традиційні шляхи очищення від контамінуючих домішок, включаючи алантоїсні білки, які видаляють на стадії готового препарату, є достатньо трудомісткими, технічно складними, тривалими та недоречні для виробництва у великому масштабі [11] .
Даним способом виробляють такі препарати: Інтерферон, Інтерлок. Їх призначають для лікування вірусних захворювань, лейкозу, злоякісної меланоми, раку нирок, карциноїдного синдрому (Інтерферон), вірусних захворювань очей, гепатитів (Інтерлок).
Інтерферон-? виготовляють шляхом суперпродукції фібробластів людини стимулятором у присутності інгібіторів обмінних процесів. Препарат має противірусну, імуномодулюючу дію та протипухлинну активність. Призначається при виявленні хронічних вірусних інфекцій в офтальмології, гінекології та урології, дерматології, гематології, онкології.
При тривалому прийомі інтерферону в організмі виробляються антитіла до інтерферону, що робить його нездатним до боротьби з вірусами. Причина цих явищ криється в наявності альбуміну в препаратах на основі інтерферону.
Альбумін отримують з крові, тому існує ризик (хоч і мінімальний) зараження гепатитом та іншими хворобами, що передаються через кров [12].
3.2 Виробництво рекомбінантного інтерферону
Радикальним рішенням стало вирішення проблеми добування інтерферону використовуючи методи генної інженерії. Зокрема, гени інтерферону вдалося еспресувати в різних клітинах, наприклад, в клітинах бактерій, дріжджів та ссавців [4].
В наш час інтерферон отримують переважно з використанням генно-інженерних штамів Escherichia coli, з 1л культури кишкової палички отримують близько тисячі доз продукту [10].
3.2.1 Технологія виготовлення рекомбінантного ?-2 інтерферону
Субстанція інтерферону ?-2 виготовляється переважно шляхом біосинтезу штаму Escherichia coli, у який вбудовано ген інтерферону людини. Вектором для проходження трансформації бактеріального геному є бактеріофаг. Іноземні аналоги, як і більшість інших генно-інженерних продуктів, виготовляють за технологією, де ампліфікатором цільового гена слугують плазміди. Плазмідозалежні технології є високопродуктивними, проте мають істотний недолік: цільовий продукт утворює в клітині нерозчинні у воді кристалоподібні форми - «тільця включення».
Процес виготовлення й очищення інтерферону в плазмідній технології складається з таких стадій: формування клітинної біомаси, її дезінтеграція; розчинення «тілець включення» шляхом денатурації білкових структур за допомогою сечовини або гуанідинхлориду; ренатурація денатурованих молекул інтерферону; очищення [6].
До інтерферону ?-2 людини відносять два алельні варіанти: інтерферон ?-2b та інтерферон ?-2а, які відрізняються в області коду однією нуклеотидною заміною в позиції 137 (2a: A, 2b: G), що призводить до амінокислотної заміни (2a: Lys, 2b: Arg) [13].
Рекомбінантна плазміда рТТКм містить вставку повнорозмірного гена лейкоцитарного інтерферону ?-2b людини і ген Kan (аміноглікозид фосфотранстфераза). Синтез цільового гена регулюється триптофановим промотором. Плазміда рЕТ24 виготовлена на основі експресуючого вектора рЕТ24а ("Novagen"), транскрипція структурного гена в якому регулюється промотором lac-оперона. Рекомбінантна плазміда рЕТ24, містить ген Кan і послідовність, що кодує Т7 термінатор транскрипції.
Компетентні клітини за стандартною методикою отримують з використання CaCl2. Клітини, трансформовані відповідно рекомбінантними плазмідами рТТКм і рЕТ24, висівають газоном на чашки Петрі з агаризованим середовищем LB, яке містить необхідні антибіотики в кінцевій концентрації. Ізольовані клони-трансформанти використовують для отримання інокулята, який вирощують при температурі 30°С протягом 16-18 годин.
Штам-продуцент E.coli BLR-IFN/pET24 вирощують на поживних середовищах LB (0,5% дріжджового екстракту, Мerck, 1,5% триптонної води, Мerck, 0,5% г NaCl, Merck), TB (10% дріжджовий екстракт, Мerck, 10% пептон, Мerck, 5мМ гліцерин, Мerck, 72 мМ К2НРО4, Мerck, 17 мМ КН2РО4, Мerck) №3 (10% дріжджового екстракту, Мerck, 10% гідролізат казеїну, Мerck, 5мМ гліцерин, 1 мМ MgSO4, 90 мкМ CaCl2), амінопептид (Самсон-Мед, Росія). Синтез гена рекомбінантного ІФН ?-2b індукують різними концентраціями ізопропіл-?-D-тіогалактопіранозіду (ІПТГ) від 0,1мм до 1 мМ. Посівний матеріал у співвідношенні 1:50 вносять в свіже живильне середовище LB з відповідними антибіотиками. Ріст бактерій контролюють шляхом вимірювання оптичної щільності клітин на спектрофотометрі. В якості хімічного індуктору механізму біосинтезу рекомбінантного білка в культуральне середовище додають індуктор - ізопропіл-?-D-тіогалактопіранозід (ІПТГ) до кінцевої концентрації 1 мМ.
Ферментацію проводять при температурі 37°С. Час накопичення біомаси та цільового білка складає близько 4 годин в умовах інтенсивної аерації при перемішуванні (220 об/хв). Вивчають динаміку зростання бактеріальної культури методом вимірювання оптичної щільності відібраних аліквот протягом усього культивування через кожну годину. По закінченню процесу ферментації клітинну біомасу збирають центрифугуванням при 11000 об/хв протягом 15 хвилин.
Лізис клітин-продуцентів проводять обробкою лізоцимом і ДНК-азою у присутності іонів Mg2+. Тільця включення збирають центрифугуванням при 11000 об/хв протягом 25 хвилин.
Схеми очищення тілець включення рекомбінантного ІФН ?-2b з різних продуцентів BLIFN/pTТКм і BLR-IFN/pET24 мають відмінності. Тільця включення ?2b-IFN / рТТКм оброблюють серією відмивочних розчинів, що мають у своєму складі: детергенти (тритон Х-100, твін-20), сечовину і ізопропанол. Розчинення тілець включення проводять в розчині: 6 М гуанідин, 10 мМ дитіотреітолу, 20 мМ Тріс-НСl, рН-8,0. Для тілець включення р?2b-IFN/рЕТ24а була розроблена схема очищення відмивочними розчинами, що містять: детергент (дезоксихолат натрію), ЕДТА. Розчин для розчинення тілець включення містить 8 М сечовину, 20 мМ Тріс-НСl, рН-8,0, 10 мМ ДТТ, 1 мМ ЕДТА. Рефолдинг проводили в буфері наступного складу: 20 мМ Тріс-НСl, рН-8,0, 70 мМ NaCl, 0,1% Тритон Х-100, 0,1% твін-20, 5 мМ ДТТ.
Ренатурацію проводять на магнітній мішалці протягом 16-ти годин при температурі +40°С. Концентрований розчин тілець включення р?2b-IFN/рТТКм розводять в 50 разів буфером наступного складу: 20 мМ Тріс-НСl, рН-8,0, 70 мМ NaCl, 0,1% Тритон Х-100, 0,1% твін-20. Розчин центрифугують. В якості робочої фракції використовують надосадок. Для рефолдингу розчин р?2b-IFN/pET24 розбавляють в 50 разів в буфері наступного складу: 20 мМ Тріс-НСl, рН-8,0, 70 мМ NaCl, 0,1% Тритон Х-100, 0,1% твін-20, 5 мМ ДТТ.
Хроматографічну очистку ІФН зазвичай здійснюють в три стадії. Отриманий ренатурований ІФН на першому етапі піддають очищенню за допомогою сорбенту СМ - Тoyopearl-650M. На другій стадії хроматографічної очистки розчин ІФН наносять на сорбент ДЕАЕ - Тoyopearl-650M. Очистку мономерної форми ІФН від залишків полімерних форм ІФН проводять гель-фільтрацією на смолі типу TSK-гель «Тоyopearl» HW-55.
Антивірусну активність очищеного рекомбінантного ІФН ?-2b оцінюють за пригніченням цитопатичної дії (ЦПД) тест-вірусу - вірусу везикулярного стоматиту (ВВС, штам Індіана, Депозитарій Інституту мікробіології і вірусології ім. Д.К. Заболотного НАН України).
У 96-лункові планшети зі сформованим моношаром клітин L929 вносять послідовно два рази розведені зразки і зразки міжнародного стандарту ІФН людини. Через 24 години клітини інфікували ВВС в дозі 100 ТЦД50, залишаючи лунки для контролю вірусу (необроблені клітини, інфіковані ВВС) і для контролю клітин (необроблені клітини, неінфіковані ВВС). Планшети культивують при 37°С протягом 24 год в насиченій Н2О атмосфері з постійним рівнем СО2 (5%). Отримані результати беруть до уваги тільки за умови, якщо в контрольних лунках цитодеструктивних змін не було, а в контролі вірусу спостерігають повну деструкцію клітин.
Облік кількості живих клітин проводять після їх забарвлення кристалічним фіолетовим. Для цього з лунок видаляють надосадову рідину, а до клітин на 15 хв вносять 0,2% розчин барвника Crystal Violet в 2% етанолі. Барвник видаляють, а пофарбований моношар клітин промивали водою.
Титром ІФН вважають значення, зворотне максимальному розведенню зразка, що забезпечує захист 50% клітин від ЦПД вірусу. Титр ІФН виражали в log2(розведення)-1, кількісно біологічну активність визначають, порівнюючи активність досліджуваного розчину і міжнародного стандарту ІФН.
Використовують такі бактеріальні штами Escherichia coli: BL21 (DE3) B F- dcm ompT hsdS (rB- mB-) gal ? (DE3), і Escherichia coli BL21(DE3) CodonPlus-RIL (F- ompT hsdS (rB-mB-) dcm gal ? (DE3) endA Hte [argU ileY leuW Camr], Origami B та ін [14, 15].
З використанням плазмідної технології також ампліфікують ген інтерферону в клітинах дріжджів Saccharomyces cerevisiae. Ген ІФН ?-2b людини ампліфікують в реакції ПЛР з використанням праймерів N466 (ataccatggaaaagagatgtgatctgcctcaaacccacagcctaggtagccgt) та N467 (atctcgagtcattcttacttcttaaggattgcaagttt). Матрицею слугує ДНК плазми. Отриманий в результаті ампліфікації фрагмент ДНК розміром 510 послідовностей піддають елююванню з агарного гелю, оброблюють рестриктазами NcoI та XhoI і клонують в лабораторній плазміді. В результаті отримують нову робочу плазміду, яку розщеплюють по сайтах NcoI та XhoI. Найбільший з отриманих фрагментів ДНК, що несе векторну частину плазміди і послідовність, що кодує пре-про область ?-фактора дріжджів, злиту с послідовністю, яка кодує промоторну ділянку гена GAL1 дріжджів, яку називають фрагмент-1. Потім, використовуючи для ПЛР праймери N449 (5'-atatagatctccagtcaacactacaa) і стандартний зворотній pUC-праймер, який називають N169 (5'-gagcggataacaatttcacacagg), ампліфікують фрагмент ДНК плазміди, що містить послідовність про-ділянки ?-фактора дріжджів та злитий з ним ген інтерферону. Ампліфікований фрагмент ДНК розщеплюють за унікальними кінцевими сайтами BglII та XhoI і називають фрагментом-2. Потім, в результаті випалювання один на одного двох синтетичних олігонуклеотидів N573 (5'-gatccgaattccaa) отримують синтетичний адаптер, що називають фрагментом-3. В результаті спільного лігування трьох отриманих фрагментів ДНК отримують плазміду pUC18x-GAL1pFF-IFN2b. Також можна отримати ген лідерного поліпептиду, що мітить потрійну про-ділянку ?-фактора дріжджів S. cerevisiae.
Джерелом гену інтерферону ?-2a людини слугує плазміда pUC18x-GAL1ppI-IFN2a, яка побудована аналогічно до pUC18x-GAL1pFFF-IFN2b, тільки замість праймера N466 використовують N617 (agcctaggtagccgtcggtaccttgatgctcctggcacagatgcgtaagatctctctttt). Ампліфікований фрагмент ДНК розміром 480 послідовностей піддають елююванню з агаризованого гелю, оброблюють рестриктазами XmaJI та XhoI і клонують в плазміді pUC18x-GAL1ppI-IFN2b, яка розщеплена за тими ж ділянками. В ході побудови у складі векторів експресії pPDX3-F-2b, pPDX3-FF-2b або pPDX-FFF-2b ген інтерферону ?-2b людини заміщують на ген інтерферона ?-2a людини. Для цього зі складу вектора pPDX3-F-2b, pPDX3-FF-2b або pPDX-FFF-2b вищеплюють унікальний NcoI/XhoI фрагмент ДНК, який включає ген інтерферону ?-2b людини, а векторний залишок лігують з NcoI/XhoI фрагментом ДНК плазміди pUC18x-GAL1ppI-IFN2a, що кодує ген інтерферону ?-2a людини. В результаті отримують вектори експресії pPDX3-F-2a або pPDX3-FF-2a або pPDX3-FFF-2a, відповідно.
Отримані вектори експресії несуть у своєму складі ген зрілого інтерферону ?-2a людини, який злитий із послідовностями лідерних поліпептидів, що містить у своєму складі одинарну, подвоєну чи потроєну про-ділянки ?-фактору дріжджів, відповідно.
Для аналізу рівня секреції інтерферону ?-2a людини клітини отриманих штамів SCR-F-2b, SCR-2b-FF, SCR-2b-FFF, SCR-2a-F, SCR-2a-FF та SCR-2a-FFF культивують на середовищі YPD наступного складу (в мас.%): пептон-2, дріжджовий екстракт-1, глюкоза-2, агар-2, вода-інше, протягом 44 годин при 28°С на роторній качалці зі швидкістю 250 об./хв. Накопичення інтерферону в культуральній рідині аналізують, використовуючи метод електрофорезу в ПААГ і метод аналітичної оберненофазної хроматографії.
Результати аналізу (рис.3.2.1.1) показують, що штами SCR-2b-FF і SCR-2a-FF, секреція інтерферону ?-2 в яких направляється новими лідерними поліпептидами, що містять у своєму складі подвоєну про-ділянку ?-фактора дріжджів, а також штами SCR-2b-FFF і SCR-2a-FFF, секреція інтерферону ?-2 в яких направляється новими лідерними поліпептидами, що несуть у своєму складі потроєну про-ділянку ?-фактора дріжджів, перевершують за продуктивністю штами SCR-2b-F і SCR-2a-F, що являються аналогами штамів-прототипів, секреція інтерферону ?-2 в яких направляється стандартною пре-про ділянкою ?-фактора дріжджів, в 1.3 та 1.2 рази відповідно.
Рис.3.2.1.1 Результати аналізу рівня секреції інтерферону ?-2 людини
У процесі ренатурації молекул інтерферону може спостерігається утворення некоректних внутрішньо- та міжмолекулярних зв'язків. Це спричинює часткове утворення неправильних мономерних форм рекомбінантного інтерферону, конформація яких відрізняється від такої у природному інтерферону, а також виникнення його олігомерних структур, яких не має у природному інтерфероні [6].
N-кінцевим амінокислотним залишком природного ІФН-?2 є цистеїн, який зв'язаний дисульфідним зв'язком із 98 цистеїном білка. Також у певної частини молекул рекомбінантних ІФН-?2, що виділяють з клітин Escherichia coli, на N-кінці залишається додатковий залишок метіоніну (формілметіоніну), що робить рекомбінантних ІФН-?2 модифікованим білком.
Надлишковий N-кінцевий метіонін може впливати на стабільність та імуногенність білків, а також в більшості випадків призводить до втрати їх біологічної активності. У зв'язку з тим, що з 2005 року Європейська Фармакопея обмежила виробництво та використання на території європейських країн препаратів, що містять модифікований ІФН-?2, проблема видалення N-кінцевого зі складу ІФН-?2 бактеріального походження набула великого значення.
До різновидів ферментативних способів видалення N-кінцевого метіоніну зі складу рекомбінантних білків відносять:
Видалення метіоніну з використанням метіонін амінопептидази;
Способи, засновані на біосинтезі подовженого білка, між N-кінцевим метіоніном та зрілою частиною якого введена коротка послідовність сайту впізнавання якої-небудь протеїнази. Наступна протеїназна обробка подовженого білка призводить до видалення введеної послідовності разом з N-кінцевим метіоніном.
Основний метод оснований на біосинтезі в клітинах E. coli попередника безметіонінового ІФН-?2, що містить у своєму складі послідовність зрілого інтерферону, злитого з послідовністю дріжджового білка SUMO (Small Ubiquitine-like protein Modifier), який відносять до родини убіквітин-подібних білків (УПБ).
Будують ген, що кодує гібридний білок SUMO-2b - попередник безметіонінового ІФН ?-2b, складовою частиною якого є послідовність безметіонінового інтерферону ?-2b людини, злита з послідовністю білка SUMO дріжджів Saccharomyces cerevisiae.
Штам бактерій E. coli для біосинтезу виготовляють з Escherichia coli BL21 (DE3). Штами культивують у відповідному поживному середовищі, що включає джерела Карбону, Нітрогену та мінеральні солі, що зазвичай використовують для вирощування клітин E. coli при температурі від 24 до 37°С. При досягненні ранньої логарифмічної стадії фази росту культури в середовище культивування вносять індуктор ІПТГ в концентрації від 0,1 до 2 мМ або лактозу в концентрації від 0,5 до 3%. Через 0,5-10 годин росту клітини штамів-продуцентів накопичують цільовий білок SUMO-2b у вигляді нерозчинних тілець включення в кількості від 5 до 30% від сумарного білка клітин. Нерозчинні тільця включення виділяють та очищують, а гібридний білок SUMO-2b піддають розчиненню.
Після біосинтезу білка SUMO-2b, проводять ферментативне вищеплення цільового білку шляхом обробки протеїназою з родини ULP в умовах, що сприяють формуванню в інтерфероні правильно замкнутих дисульфідних зв'язків.
Очищений безметіоніновий інтерферон ?-2b людини має наступні характеристики: чистота не нижче 96%, послідовність перших п'яти N-кінцевих амінокислот ідентична послідовності нативного безметіонінового ІФН-?2 людини, специфічна активність складає 2,0?108 МЕ/мг [16].
Фармакокінетичні характеристики рекомбінантного немодифікованого (стандартного) ІФН не дозволяє підтримувати постійним його рівень у плазмі, що частково пояснює недостатньо високий терапевтичний ефект.
Більшість відомих модифікацій направлено на збільшення фізичних розмірів (гідродинамічного об'єму) або заряду (від'ємного) молекул лікувальних білків, яке втілюють з метою уповільнення процесу їх фільтрації з плазми крові через пори ниркових канальців.
Хімічна модифікація ІФН за допомогою поліетиленгліколей (ПЕГ) дозволила отримати молекули ПЕГ-ІФН, для яких характерний довший час перебування в плазмі крові і покращений фармакокінетичний профіль.
Для отримання пролонгованих похідних ІФН також використовують наступні способи його біомодифікації:
генетична гібридизація ІФН з довгоживучими білками крові людини, наприклад, альбумін сироватки або фрагмент імуноглобуліну, або фрагмент антитіла, що забезпечує нековалентне зв'язування з альбуміном сироватки крові людини безпосередньо в кровообігу (Albainterferon-alfa-2b);
генетична гібридизація ІФН зі штучними поліпептидами, в яких наявні сайти N-глікозилування і переважають повтори із залишків гліцину, аспарагінової кислоти і глютамінової кислоти [18];
генетична гібридизація ІФН з поліаніонним поліпептидом із залишків глютамінової кислоти (84 і 173 залишку) в клітинах E. coli. Білок не секретується і потребує довгої та трудомісткої очистки як від інших внутрішньоклітинних білків, так і від клітинних ендотоксинів [19-21];
генетична гібридизація ІФН з С-кінцевим пептидом (СТР) ?-субодиниці хоріонічного гонадотропіну людини, що містить 28 амінокислотних залишків, які формують чотири сайти О-глікозилування. Одна чи кілька копій СТР, які приєднуються до С-кінця молекули, суттєво подовжують тривалість життя терапевтичних білків в плазмі крові. Використання СТР-технології обмежено необхідністю отримувати модифіковані білки виключно в клітинах тварин, що забезпечує коректне О-глікозилювання [22-28];
генетична зміна природної послідовності ІФН з метою конструювання сайтів N-глікозилювання. Модифікований таким чином ІФН, що продукується в культурі клітин СНО, містить чотири або п'ять N-вуглеводневих ланцюгів і володіє в 25 разів збільшеним часом життя в кровообігу. Для нього характерне збільшення протипухлинної активності, але зниження специфічної противірусної активності in vitro [29].
генетична гібридизація (кон'югація) ІФН з високорозчинними, хімічно та імунологічно інертними неструктурованими поліпептидами (НП), що здатні в фізіологічних умовах імітувати поведінку молекул ПЕГ. Такі НП у водних розчинах при фізіологічно сольових, температурних та буферних умовах стійкі до фолдингу (формування третинної структури), агрегації, неспецифічної адсорбції і підтримують стабільне положення типу «клубок». До таких НП відносять: XTEN-поліпептиди (вміщують випадкові чергування 6 амінокислотних залишків аланіну, глютамінової кислоти, гліцину, проліну, серину і треоніну), PAS-поліпептиди (вміщують залишки проліну, аланіну і серину), HAP, або ОЯ8-поліпептиди (мають багато залишків гліцину).
Для отримання гібридного ІФН використовують штами E. coli або Saccharomyces cerevisiae ВКПМ Y-3927 і Saccharomyces cerevisiae ВКПМ Y-3928.
Для посіву в ферментері отримують посівну культуру шляхом культивування штама-продуцента цільового гібридного білку в середовищі наступного складу, в мас.%: пептон 1-3, дріжджовий екстракт 0,5-3, глюкоза 1-3, вода-залишок, рН середовища-природній на протязі 16-40 годин при температурі 22-32°С на орбітальній качалці 100-350 об./хв.
Посівною культурою засівають ферментер (0,5-1000 л), який містить ферментаційне середовище наступного складу, в мас.%: пептон 1-3, дріжджовий екстракт 0,5-3, глюкоза або сахароза1-4, вода-залишок, рН середовища-природній. Кількість посівної культури, яку вносять в ферментер, становить 3-15% від об'єму ферментаційного середовища.
Ферментацію проводять при 22-32°С, аерації 0,5-1000 л/хв і швидкості перемішування культури 100-1500 об./хв. Через 16-30 год після посіву в ферментер процес проводять без підживлення або починають підживлювати 30-60% розчином глюкози або сахарози зі швидкістю 2-10 г/л/год і утримують рН в діапазоні 5,0-7,2. Загальна тривалість ферментації складає 38-68 год.
Продукція цільового гібридного білку в таких умовах складає не менше 0,12 г/л [17].
Очистка проводиться так само, як і для не гібридного ІФН ?-2b:
1. Культуральну рідину, що містить цільовий білок, відділяють від біомаси дріжджів за допомогою центрифугування при 8500g на протязі 10 хвилин;
2. Отриманий центрифугат культуральної рідини очищують від клітинних обломків за допомогою мікрофільтрації на мембранному касетному модулі з поліпропілену із номінальним відсіканням 0,2 мкм і номінальною площею фільтрації 0,1 м2 ;
3. Захват ІФН із отриманого мікрофільтрату проводять, використовуючи катіонобмінну хроматографію на носії SP-Sepharose Fast Flow (GE Healthcare). Для цього триманий фільтрат підкислюють оцтовою кислотою до значення рН 4,4-4,5. Підкислений фільтрат пропускають через колонку з SP-Сефарозой, збалансований 40 мМ буферним розчином ацетату амонію, рН 4,5, що містить 0,05% Tween 80 (буфер А). Після проходження фільтрату через колонку і наступної промивки колонки розчином 0,12 M NaCl в буфері А, ІФН піддають елююванню розчином 0,4 M NaCl в буфері А;
4. Проводять тонку очистку ІФН з отриманого елюату з використанням препаративної оберненофазної високоефективної рідинної хроматографії.
Характеристики ефективності етапів виділення і очистки інтерферону ?-2b з культуральної рідини наведено в таблиці 3.2.1.1 [30].
Характеристики ефективності етапів виділення і очистки гібридного ?-2b з культуральної рідини наведено в таблиці 3.2.1.2 [17].
Таблиця 3.2.1.1. Результати етапів очистки ІФН ?-2b з культуральної рідини штама-продуцента Saccharomyces cerevisiae ВКПМ Y-3493 [30]
Етап |
Опис етапу |
Метод очистки |
Ефективність етапу (%) |
Вихід ІФН ?-2b (%) |
|
0 |
Культуральна рідина |
- |
- |
- |
|
1 |
Відділення біомаси |
Центрифугування |
100 |
100 |
|
2 |
Очистка від обломків клітин |
Мікрофільтрація |
82 |
82 |
|
3 |
Захват |
Катіонобмінна хроматографія на SP-сефарозі |
91 |
75 |
|
4 |
Тонка очистка |
Хроматографія в оберненій фазі С 18 |
74 |
55 |
|
5 |
Концентрування |
Катіонобмінна хроматографія на CM-сефарозі |
90 |
50 |
Таблиця 3.2.1.2 Результати етапів очистки гібридного ІФН ?-2b з культуральної рідини штама-продуцента Saccharomyces cerevisiae ВКПМ Y-3493
Етап |
Опис етапу |
Метод очистки |
Ефективність етапу (%) |
Вихід GFNa-80(%) |
|
0 |
Культуральна рідина |
- |
- |
100 |
|
1 |
Відділення біомаси |
Центрифугування |
90 |
90 |
|
2 |
Захват |
Катіонобмінна хроматографія на SP-сефарозі |
80 |
72 |
|
3 |
Тонка очистка |
Хроматографія в оберненій фазі С 18 |
75 |
54 |
|
4 |
Концентрування |
Катіонобмінна хроматографія на CM-сефарозі |
76 |
41 |
В результаті отримують не менше 0,05г цільового гібридного білку з 1 л культуральної рідини.
Принципова технологічна схема виготовлення рекомбінантного інтерферону наведена в Додатку А [17].
На відміну від плазмідної технології добування інтерферону ґрунтується на використанні як ампліфікатора цільового гену (гену інтерферону) бактеріофагу, у геном якого генно-інженерним методом вбудований ген інтерферону. Бактеріофаг (вірус бактерій), уражаючи бактеріальну клітину, розмножується в ній, копіюючи багаторазово свою ДНК, і вбудований в неї ген інтерферону, синтезує свої білки, у тому числі й інтерферон. На певній стадії розвитку бактеріофаг лізує бактеріальну клітину. Інтерферон виходить у культуральну рідину, причому у водорозчинному стані, не утворюючи нерозчинних форм. Синтез організований таким чином, що інтерферон нагромаджується поза клітиною, у культуральному середовищі, тому не утворює «тілець включення», як це відбувається за плазмідною технологією добування інтерферону. Нагромадження інтерферону в культуральній рідині дозволяє очищати його за спрощеною схемою: не відбувається формування біомаси, її дезінтеграція, денатурація білків для розчинення «тілець включення» та ренатурація молекул інтерферону. Відсутність стадії концентрування клітин (формування біомаси), а, отже, й клітинних бімсів, дозволяє добувати високоочищений препарат інтерферону менш складним методом, ніж той, який використовують для очищення аналогів [6].
Очищення проводять іонообмінною хроматографією. Чистоту білка контролюють методом електрофорезу в панакриламідному гелі, що та відповідає рекомендаціям ВООЗ: в очищеному препараті міститься не менш як 95 % білка інтерферону [6].
Рекомбінантні інтерферони ?-2 використовують для терапії вірусних та пухлинних захворювань, включаючи лікування твердих пухлин, таких як рак сечового міхура, рак нирки, ВІЛ-індукована саркома Капоши та ін. Інтерферон має також знеболювальну дію. Також дані інтерферони є основними терапевтичними засобами, які використовують для лікування хронічних форм гепатитів B та C [13, 16].
Відомі такі фармацевтичні препарати, що містять в якості діючої речовини ?-2 інтерферон: «Роферон» (Hoffman-La Roche AG, Швейцарія), «Інтрон-А» (Schering-Plough, США), «Реальдирон» (Biotechna, Литва), «Реаферон» («Вектор-Медика», Росія), «Інтераль» (НДІ ОЧБ, Росія). Препарати «Реаферон», «Інтераль» і «Інтрон-А» містять в якості стабілізатора альбумін людини, що вимагає додаткової перевірки лікарських форм на відсутність вірусів гепатиту В, С та ВІЛ. Препарат «Інтрон-А» додатково містить в якості стабілізуючого агенту гліцин [31].
3.2.2 Технологія виготовлення рекомбінантного ?-1 інтерферону
Для виготовлення рекомбінантного ?-1 інтерферону використовують штам дріжджів Pichia pastoris KM71 [31].
Для отримання штаму дріжджів Pichia pastoris - продуцента ?-1 інтерферону людини, клітини дріжджів штаму PS99 трансформують плазмідою pHIN.
Клітини дріжджів вирощують в 100 мл середовища YEPD при 30°С до набуття культурою оптичної густини, відповідній 2-4 од. поглинання при довжині хвилі 600 нм. Клітини двічі промивають стерильною водою, після чого суспендують в 0,3 мл 100мМ розчину ацетату літію та інкубують при 30°С на протязі 30 хв. До 50 мкл отриманої суспензії клітин додають 0,1-1 мкг плазмідної ДНК, 50 мкг ДНК сперми лосося, спершу денатурованої нагріванням (10 хв при 100°С) і 0,3 мл розчину 100 мМ ацетату літію, що містить 40% ПЕГ 4000. Далі пробу інкубують 30 хв при 30°С і 20 хв при 42°С, занурюють на 15 с в крижану баню і центрифугують 10 с при 10000 об./хв. Клітини суспендують в 1 мл стерильної води та висівають на тверде середовище SC. Клони трансформантів виростають через 2-3 доби. Вирощені клони пересівають на чашки із середовищем SC, що містить 2% глюкозу, окремими колоніями, потім відбивають на середовище ММ (1,34% Yeast Nitrogen Base (“Difco”, USA), 0,5% метанолу, 2% агару (“Difco”, USA) для відбору трансформантів, не зростаючих на середовищі з метанолом, що свідчить про інтеграцію чужорідного гену в локус АОХІ (фенотип Met-) [32].
По закінченню процесу культивування видаляють клітини дріжджів за допомогою центрифугування при 6-7 тис. об./хв на протязі 15 хвилин, при +4°С. Всі наступні дії здійснюють при температурі +4°С. Надосадову рідину пропускають через нітроцелюлозний фільтр з діаметром пор 0,45 мкм (Millpore Inc.).
Отриманий таким чином фільтрат концентрують на ультрафільтраційній установці УПЛ-0,6 із використанням мембрани АР-0,2-15ПА (НПК «Біотест»), яка відсікає сполуки із молекулярною масою менше 15 кДа, на цій стадії відбувається видалення низькомолекулярних компонентів середовища і зменшення вихідного об'єму до 100-200 мл.
Далі проводять сольове осадження цільового білку, доводячи насичення сульфату амонію до 60%. Осад цільового білку збирають центрифугуванням при 12-14 тис. об./хв на протязі 20 хвиин. Отриманий осад розчиняють в 50 мМ амоній-ацетатному буфері (рН 5,5), що містить 2 мМ ЕДТА, 0,05% Твін-20, і наносять на колонку, яка містить 1000 мл Сефакрилу HR 100, збалансованого таким самим буфером. Перші 350 мл відкидали, фракції, що містять цільовий білок, об'єднують.
Отриманий таким чином елюат титрують 10% аміаком до рН 7,0 і наносять на колонку, що містить 50 мл ДЕАЕ-целюлозу, збалансовану 50 мМ амоній-ацетатним буфером (рН 7,0), який містить 2 мМ ЕДТА, 0,05% Твін-20. Відмивають колонку послідовно 100 мл збалансовуючим буфером і 100 мл збалансовуючим буфером, який містить 0,1 М хлориду натрію. Елюювання проводять градієнтом концентрації хлористого натрію від 0,1 М до 1,0 М в 50 мМ амоній-ацетатному буфері (рН 5,5), який містить 2 мМ ЕДТА, 0,05% Твін-20.
Електрофорез в редукуючих умовах показує, що молекулярна маса отриманого білку становить приблизно 20 кДа. За даною схемою очистки можна отримати препарат інтерферону ?-1b, з вмістом домішок не більше 5%. Питома активність становить 0,3-1,0?108 МЕ/мг. Активність препарату змінюється в залежності від терапевтичної форми та композиції (табл. 3.2.2.1) Середній вихід з 1л культури становить 7-9 мг [31].
Таблиця 3.2.2.1. Вплив складу препарату на активність ?-1b інтерферону [31]
pH |
ЕДТА, мг/мл |
Твін-20, мг/мл |
Вихідна активність препарату, МЕ/мл |
Активність препарату через 6 міс. зберігання при +4°С, МЕ/мл |
Збереження активності, % |
|
Рідка форма |
||||||
5,5 |
0,5 |
0,5 |
(11,0±0,8)?106 |
(9,5±0,6)?106 |
86,3 |
|
5,5 |
0,5 |
2,5 |
(10,8±0,8)?106 |
(9,1±0,8)?106 |
84,2 |
|
5,5 |
0,5 |
5,0 |
(10,6±0,8)?106 |
(8,9±0,7)?106 |
84,0 |
|
5,5 |
0,8 |
0,5 |
(11,1±0,8)?106 |
(10,7±0,8)?106 |
96,4 |
|
5,5 |
0,8 |
2,5 |
(10,4±0,8)?106 |
(9,9±0,8)?106 |
95,1 |
|
5,5 |
0,8 |
5,0 |
(10,8±0,8)?106 |
(10,3±0,8)?106 |
95,2 |
|
5,5 |
1,5 |
0,5 |
(11,3±0,8)?106 |
(10,7±0,7)?106 |
95,1 |
|
5,5 |
1,5 |
2,5 |
(10,6±0,8)?106 |
(10,0±0,8)?106 |
94,0 |
|
5,5 |
1,5 |
5,0 |
(10,5±0,8)?106 |
(9,8±0,7)?106 |
93,6 |
|
6,7 |
0,8 |
0,5 |
(11,0±0,8)?106 |
(9,8±0,6)?105 |
89,1 |
|
7,8 |
0,8 |
0,5 |
(10,7±0,8)?106 |
(8,3±0,6)?105 |
77,5 |
|
Суха ліофілізована форма |
||||||
5,5 |
0,8 |
0,5 |
(9,8±0,9)?106 |
(9,3±0,7)?106 |
95,1 |
|
6,7 |
0,8 |
0,5 |
(10,3±0,6)?106 |
(8,6±0,8)?106 |
83,6 |
|
7,8 |
0,8 |
0,5 |
(9,9±0,6)?106 |
(7,7±0,9)?106 |
77,8 |
3.2.3 Технологія виробництва рекомбінантного ?-1 інтерферону
Інтерферон ? людини або фібробластний інтерферон секретується, в основному, фібробластами і є глікопротеїном із молекулярною масою 20 кДа. Його структура позначається як ІФН- ?-1а. Пептидна частина ІФН- ?-1а представлена 166 амінокислотними залишками. Молекула містить вільну сульфгідрильну групу цистеїну в положенні Cys16 і один внутрішньомолекулярний дисульфідний зв'язок в положенні Cys30-Cys140.
Рекомбінантний інтерферон ?, який отримують в бактеріальній системі, являє собою неглікозильований білок, що має заміну цистеїну в положенні 16 на серин (рис.3.2.3.1). Така заміна позбавляє проблеми утворення димерів за рахунок неправильного замикання дисульфідних зв'язків. Така структура фібробластного інтерферону має назву ІФН-?-1b.
Рис. 3.2.3.1 Послідовність амінокислот в ІФН-?-1b
Створення штама-продуцента людського інтерферону ?-1b дозволило отримувати біологічно активний білок в кількості, необхідній як для проведення різноманітних структурно-функціональних досліджень, так і для використання в медичній практиці [33].
Рекомбінантний ІФН-?-1b людини отримують в нерозчинній формі у вигляді тілець включення. У порівнянні з розчинною формою, експресія білку у вигляді тілець включення має ряд переваг - нерозчинні агрегати білку не проявляють токсичної дії, практично не атакуються протеазами, та з високим виходом виділяються центрифугуванням [34].
До 150 г тілець включення рекомбінантного ІФН-?-1b людини приливають 1000 мл розчину, який містить 0,3 % трифтороцтвої кислоти (ТФО). Після цього тільця включення гомогенізують в блендері із швидкістю 800 об./хв на протязі 1 хвилини, переносять в стакан з магнітною мішалкою і залишають перемішуватися протягом 1 години при температурі 4°С. Далі отриману суспензію центрифугують при 4°С протягом 40 хвилин на швидкості 10000 об./хв. Отриманий осад переносять в блендер, заливають 1,0 л розчину 1-пропанол:вода (1:1) з додаванням 0,3% ТФО, гомогенізують зі швидкістю 800 об./хв протягом 1 хвилини, охолоджують розчин при -20°С протягом 20-30 хвилин і ставлять перемішуватися при 4°С на 1-2 години.
Отриманий екстракт центрифугують при 4°С протягом 40 хвилин на швидкості 10000 об./хв. Потім отриманий супернатант фільтрують через скловолокно і розбавляють розчином, що містить 0,3 % ТФО до концентрації 1-пропанола 20 %.
На наступному етапі екстракт білку наносять на обернено-фазову колонку DAU-100 (розмір колонки 10?10 см) (YMC Co., LTD, Japan), наповнену сорбентом GEL-Butyl C4 (YMC Co., LTD, Japan) і збалансовану розчином, який містить 0,1 % ТФО і 20 % 1-пропанол. Навантаження на сорбент може досягати 40 мл сумарного білку на 1 мл носія. Після нанесення розчину білку, колонку промивають початковим розчином ТФО і 1-пропанолу до отримання на спектрофотометрі значень, що дорівнюють значенням базової лінії при довжині хвилі 280 нм. Сорбовані білки піддають елююванню в градієнті концентрації 1-пропанолу (від 20 % до 50 %) при довжині хвилі 280 нм. Фракції, що містять цільовий білок за результатами аналізу на обернено-фазній колонці, об'єднують. З об'єднаної фракції, зібраної з обернено-фазної колонки, осаджують білок додаванням рівного об'єму буферного розчину, який містить 50 мМ Na2HPO4, і доведенням рН отриманого розчину до 6,0.
Потім суспензію білку центрифугують з використанням центрифуги за 4°С протягом 30 хвилин на швидкості 14000 об./хв. Отриманий осад розмішують в 400 мл такому самому буферному розчині і знов центрифугують за аналогічних умов.
Далі осад наносять на колонку BPG 200/500 (розмір колонки 20?30 см) (JE Healthcare, USA), заповнену гелем Sephadex G-25 Fine (JE Healthcare, USA) та збалансовують розчином 10 мМ NaOH. Елюювання проводять в ізократичному режимі при довжині хвилі 280 нм. Із фракції, зібраної з колонки, осаджують білок шляхом внесення дигідрофосфату натрію до сумарної концентрації реактиву в розчині 50 мМ і доведеням рН розчину до 6,0 і проводять центрифугування суспензії білку з використанням центрифуги при 4°С протягом 30 хвилин за швидкості 14000 об./хв.
Отриманий осад гомогенізують в буферному розчині, який містить 100 мМ NaH2PO4, pH 4,2 і прогрівають до 65°С, додають рівний об'єм заздалегідь нагрітого до 65°С 75% розчину фенола у воді. Проводять інкубацію на протязі 20 хвилин в термошейкері при 65°С. Потім реакційну суміш охолоджують до 10°С, домагаючись повного розшарування фаз, та видаляють водну фазу за допомогою водоструминного насосу.
Отриманий розчин білку в фенолі розводять в 6,5 разів 30 % етиловим спиртом, додають ТФО до 0,1 % і наносять на обернено-фазну колонку DAU-50 (розмір колонки 5?20 см) (YMC Co., LTD, Japan), заповнену сорбентом С18 (YMC Co., LTD, Japan) та збалансовану розчином, який містить 0,1 % ТФО та 20 % 1-пропанолу. Навантаження на сорбент може досягати 40 мг сумарного білку на 1 мл носія. Після нанесення розчину білку, колонку промивають початковим розчином ТФО і 1-пропанолу до показання спектрофотометром значень, рівних значенням базової лінії за довжини хвилі 280 нм. Сорбовані білки піддають елююванню в градієнті концентрації 1-пропанолу (від 20 % до 50 %) за довжини хвилі 280 нм. Фракції, що містять цільовий білок за результатами аналізу на обернено-фазній колонці С18, об'єднують.
Розчин цільового білку наносять на колонку BPG 200/500 (розмір колонки 20?30 см) (JE Healthcare, USA), заповнену гелем Sephadex G-25 Fine (JE Healthcare, USA) та збалансовану розчином 10 мМ NaOH. Елюювання проводять в ізократичному режимі за довжини хвилі 280 нм. В отриманій фракції білку визначають концентрацію за допомогою обернено-фазної хроматографії на колонці С18.
Вихід готового продукту з 1 г цільового білку, отриманого при екстракції на першому етапі з тілець включення, становить 0,3 цільового білку. Чистота білку не менше 98 %. Матеріальний баланс промислового процесу очищення ІФН-?-1b вказаний в табл. 3.2.3.1 [33].
Таблиця 3.2.3.1. Матеріальний баланс основних стадій промислового процесу очистки ІФН-?-1b [33]
Стадії очистки ІФН-?-1b |
Вихід ІФН-?-1b, г |
Вихід ІФН-?-1b, % |
Хроматографічна чистота ІФН-?-1b, % |
Вміст |
||
Білків E. coli нг/мгбілку |
Ендотоксинів Од./мгбілку |
|||||
Екстракція білку з 150 г тілець включення |
5 |
100 |
60-70 |
>100 |
>250 |
|
ВЕРХ на С4, YMC |
4 |
80 |
65-75 |
90-100 |
50-250 |
|
Розчинення білку в 1% лаураті натрію |
4 |
80 |
||||
Ренатурація |
2,8 |
70 |
||||
Очистка білку фенолом |
2,5 |
50 |
70-75 |
20-60 |
2-5 |
|
ВЕРХ на С18, YMC |
1,4 |
28 |
96-98 |
5-10 |
?1 |
Основним терапевтичним ефектом ІФН-?-1b противірусна та імуномоделююча активність, зниження частоти загострення розсіяного склерозу з ремітуючим протіканням на одну третину і зменшення кількості нових ділянок ураження головного мозку. Крім того, знижується частота загострень при вторинно-прогресуючому протіканні розсіяного склерозу і зменшується вираженість атрофії головного мозку. Препарати на основі ІФН- ?-1b відомі під назвами: Екставіа, Бетаферон, Авонекс та ін. [33-34].
ВИСНОВОК
Інтерферони - група низькомолекулярних білків, які володіють рядом спільних біологічних властивостей, головною з яких є здатність при контакті з клітинами викликати в них стійкість до вірусних інфекцій. Інтерферони хребетних і, також, людини розділяють на три групи: ?-, або лейкоцитарні, ?-, або фібробластні, та ?- , або імунні (продукуються Т-лімфоцитами).
Інтерферони викликають стан несприйнятливості до широкого спектра вірусних інфекцій, що індукується у всіх клітинах, які мають рецептори до інтерферонів. Вони індукують як локальні, так і системні противірусні реакції в інших клітинах. Крім того, інтерферони володіють ще двома важливими властивостями: пригнічують поліферацію клітин (і, таким чином, потенційно є протипухлинним засобом) і модулюють імунну систему.
За використання лейкоцитарної технології виготовлення інтерферону, створюють певну систему вірус-клітина крові (лейкоцити або фібробласти). При цьому лейкоцити інкубуються разом із вірусом (наприклад, вірус Сендай або вірус хвороби Ньюкасла), а в якості компонента поживного середовища слугує сироватка крові людини або бика (іноді - казеїн молока). Далі суміш очищують за допомогою хроматографічних методів і отримують достатньо концентрований препарат інтерферон. За цією технологією можна отримати 1мкг інтерферону з 1л донорської крові, що становить одну дозу. Недоліком даної технології є проблема очищення інтерферону від чужорідних антигенів (тобто, вірусного індуктора, білків алантоїсної рідини, включаючи овальбумін).
Подобные документы
Обґрунтування вибору методу та місця впровадження біотехнологічного виробництва. Характеристика біологічного агенту, сировини та допоміжних речовин. Механізм біотехнологічного процесу виробництва бета-каротину. Стандартизація та контроль якості продукції.
дипломная работа [1,6 M], добавлен 19.06.2013Вивчення середовища для виробництва білкових концентратів із водоростей, бактерій, рослин, дріжджів та грибів. Огляд ферментаторів для стерильного культивування мікроорганізмів. Аналіз флотації, сепарування, випарювання й сушіння для одержання протеїнів.
дипломная работа [126,7 K], добавлен 07.05.2011Характеристика ґрунту як середовища проживання мікроорганізмів. Дослідження методів визначення складу мікроорганізмів. Аналіз їх ролі у формуванні ґрунтів та їх родючості. Біологічний кругообіг в ґрунті. Механізм дії мінеральних добрив на мікрофлору.
реферат [96,7 K], добавлен 18.12.2014Огляд термінаторних технологій, які використовують трансгенез з метою пригнічення фертильності на генетичному рівні. Розкрито молекулярно-генетичні основи технології, що обмежують використання на рівні ознаки. Опис технології створення гібридних сортів.
статья [608,3 K], добавлен 21.09.2017Використання методів біотехнології для підвищення продуктивності сільськогосподарських культур. Розширення і покращення ефективності біологічної фіксації атмосферного азоту. Застосування мікроклонального розмноження. Створення трансгенних рослин.
курсовая работа [49,7 K], добавлен 23.07.2011Механізми дії регуляторів росту рослин, їх роль в підвищенні продуктивності сільськогосподарських культур. Вплив біологічно-активних речовин на площу фотосинтетичної поверхні гречки, синтез хлорофілів в її листках, формування його чистої продуктивності.
реферат [19,0 K], добавлен 10.04.2011Історичні дані та походження гладіолусів, їх ботанічні та біологічні особливості, сортові ознаки. Огляд різних технологій вирощування гладіолусів в умовах ННВК СНАУ, специфіка їх використання в озелененні. Особливості агротехніки вирощування лілій.
дипломная работа [844,7 K], добавлен 02.05.2016Поняття і рівні регуляції експресії генів. Їх склад і будова, механізм формування і трансформування. Транскрипційний рівень регуляції. Приклад індукції і репресії. Регуляція експресії генів прокаріот, будова оперону. Огляд цього процесу у еукаріот.
презентация [1,7 M], добавлен 28.12.2013Основні особливості створення нового селекційного матеріалу, причини використання маркерних ознак в селекції при створенні нових популяцій. Сутність терміну "Marker-Assisted Selection". Аналіз генетичних маркерів м’ясної продуктивності свиней та корів.
курсовая работа [401,4 K], добавлен 27.08.2012Проблеми сучасного сільськогосподарського виробництва в контексті змін клімату. Біологічні властивості гледичії, її використання в полезахисних розведеннях. Метод відбору селекційно-цінних плюсових дерев. Дослідження росту сіянців гледичії безколючкової.
курсовая работа [123,2 K], добавлен 12.02.2016