Особенности инактивации перекрывающихся генов lawc и Trf2 в соматических и репродуктивных тканях Drosophila melanogaster

Изучение регуляции экспрессии генов как одна из актуальных проблем современной генетики. Строение генома Drosophila melanogaster. Характеристика перекрывающихся генов leg-arista-wing complex и TBP-related factor 2. Подбор рациональной системы экспрессии.

Рубрика Биология и естествознание
Вид дипломная работа
Язык русский
Дата добавления 02.02.2018
Размер файла 2,0 M

Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже

Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.

94

Размещено на http://www.allbest.ru/

Особенности инактивации перекрывающихся генов lawc и Trf2 в соматических и репродуктивных тканях Drosophila melanogaster

Содержание

  • Введение
  • Глава I. Обзор литературы
  • 1.1 Характеристика перекрывающихся генов leg-arista-wing complex и TBP-related factor 2
  • 1.2 Характеристика гена leg-arista-wing complex
  • 1.3 Фактор базовой транскрипции Trf2
  • 1.4 Функциональные особенности lawc/trf2 в репродуктивной системе самок дрозофилы
  • 1.5 Основные аспекты развития половой системы самок
  • 1.6 Формирование половой системы самок в эмбриогенезе
  • 1.7 Развитие половой системы самок личинок и предкуколок
  • 1.7.1 Половая система взрослых самок дрозофилы
  • 1.7.2 Транспорт цитоплазмы питающих клеток в ооцит
  • 1.7.3 Эволюционная консервативность оогенеза
  • 1.8 Система Gal4/UAS у дрозофилы
  • 1.8.1 Компоненты системы Gal4/UAS
  • 1.9 Управление системой
  • 1.9.1 Зависимость активности белка GAL4 от температуры
  • 1.9.2 Выявление направленной экспрессии гена-респондера
  • 1.9.3 Выбор подходящего драйвера с репортером
  • 1.9.4 Подбор рациональной системы экспрессии
  • 1.10 Использование системы Gal4/UAS
  • 1.10.1 Модификации вектора pGAWB
  • 1.10.2 Экспрессия в материнских клетках полового пути
  • 1.10.3 Направленное выключение или "нокдаун" генов
  • Глава II. Экспериментальная часть
  • 2.1 Материалы и методы
  • 2.1.1 Объект исследования
  • 2.1.2 Мутации D. melanogaster, используемые в работе
  • 2.1.3 Линии D. melanogaster, используемые в работе
  • 2.1.4 Методы содержания дрозофилы и манипулирования с ней 2.4.1 Отбор девственных самок
  • 2.1.5 Температурные условия разведения
  • 2.1.6 Определение стерильности самок
  • 2.2 Генетические методы
  • 2.2.1 Хромосомное картирование
  • 2.2.2 Выведение линии, гомозиготной по трансгенной конструкции
  • 2.2.3 Тотальное подавление экспрессии прямых и обратных транскриптов
  • 2.2.4 Тканеспецифическое подавление экспрессии прямых и обратных транскриптов
  • 2.2.5 Метод микроскопирования
  • 2.2.6 Иммунофлуоресцентое окрашивание яичников дрозофил
  • Глава III. Результаты и обсуждение
  • 3.1 Получение трангенных линий с инактивирующими конскрукциями
  • 3.2 Подавление прямых и обратных транскриптов lawc/Trf2 во всех органах и тканях
  • 3.3 Подавление прямых и обратных транскриптов lawc/Trf2 в глазо - антенных имагинальных дисках
  • Заключение
  • Выводы
  • Список литературы

Введение

Актуальность проблемы. Изучение регуляции экспрессии генов является одной из актуальных проблем современной генетики. В настоящее время показано, что большая часть генома эукариотических организмов способна транскрибироваться в двух направлениях (смысловом и антисмысловом), значит некоторые гены эукариот перекрываются. Так, у Drosophila melanogaster перекрывается 26.2 % кодирующих белки генов. Такое строение генома приводит к появлению общих для разных генов регуляторных зон и возникновению перекрывающихся РНК, как кодирующих, так и некодирующих белки. В результате, перекрывающиеся регуляторные элементы, и, главным образом, перекрывающиеся транскрипты представляют собой дополнительный уровень (способ) регуляции экспрессии генов, наряду с транскрипционными факторами, метилированием ДНК и ацетилированием гистонов. Тем не менее, эволюционная и биологическая значимость такого явления остается не ясной. Множество найденных перекрытий образуется между генами, транскрибируемыми с противоположных цепей одного и того же локуса. Достаточно часто в перекрытие вовлекается не кодирующий белок транскрипт. Появляются данные, что эти антисмысловые транскрипты принимают участие во множестве клеточных процессов, таких как геномный импринтинг, инактивация Х-хромосомы, альтернативный сплайсинг, сайленсинг генов и метилирование, трансляция. Наличие перекрывающихся транскриптов и их регуляторная роль показаны для ряда генов у разных организмов, среди которых гены, вовлеч?нные в онкогенез и развитие других патологий. Существуют разные модели механизмов регуляции смысловой мРНК антисмысловым транскриптом. Одной из них является модель транскрипционной интерференции (ТИ) (или транскрипционного столкновения). Согласно модели транскрипционной интерференции, процесс транскрипции одного гена подавляет транскрипцию перекрывающегося с ним гена. Большинство исследований перекрывающихся генов и антисмысловой транскрипции проводится in vitro или in silico и необходимы в подтверждении результатов in vivo. Ранее в лаборатории регуляции морфогенеза (ИБР РАН) был открыт транс-регуляторный локус leg-arista - wing complex/TBP-related factor 2 (lawc/Trf2) у Drosophila melanogaster, мутации которого нарушают правильную экспрессию многих нейрогенов и транскрипционных факторов, контролирующих развитие организма. По данным GenBank локус lawc/Trf2 содержит два перекрывающихся гена, предположительно имеющих общую 5'-регуляторную зону. Транскрипты, синтезирующиеся с данного локуса, представляют собой систему разнонаправленных мРНК и представляют собой удобную модельную систему для исследования особенностей регуляции перекрывающихся генов in vivo. С этой целью в лаборатории Регуляции морфогенеза ИБР РАН были созданы генетические конструкции, активация которых в геноме дрозофилы должна избирательно подавлять экспрессию либо прямых Trf2-, либо обратных lawc-транскриптов. Тканеспецифицескую активацию таких конструкций легко проводить в генетической системе UAS/GAL4.

Цель данной работы - изучить особенности инактивации перекрывающихся генов lawc и Trf2 в соматических и репродуктивных тканях у Drosophila melanogaster.

Задачи:

1. С помощью репортерной линии UAS-GFP провести анализ активности GAL4-конструкций в драйверных линиях.

2. Найти трансформантов с конструкцией, подавляющей экспрессиию прямых транскриптов Trf2 и обратных транскриптов lawc. Провести хромосомное картирование трансгенных конструкций.

3. Сравнить фенотипический эффект тканеспецифического подавления прямых и обратных транскриптов комплекса lawc/Trf2 в соматических тканях D. melanogaster.

Размещено на Allbest.ru

4. Сравнить фенотипический эффект тканеспецифического подавления прямых и обратных транскриптов комплекса lawc/Trf2 в соматических и герминативных тканях репродуктивной системы D. melanogaster.

Глава I. Обзор литературы

1.1 Характеристика перекрывающихся генов leg-arista-wing complex и TBP-related factor 2

В лаборатории Т.И. Герасимовой (ИОГен РАН) была найдена и открыта рецессивная гомеозисная мутация Drosophila melanogaster, названная leg - arista-wing complexp1 (lawcp1) (Симонова и др., 1992). По данным GenBank район локализации мутации содержит два гена: CG32711, который назван впоследствии leg-arista-wing complex, и TBP-related factor 2 (Trf2) (рис.1).

Рисунок 1. Карта района lawc (CG32711) /Trf2 по данным 2009 г.

Схема генов отображена голубым цветом. Район локализации мутации lawcp1 обозначен красным цветом. Ниже представлены разнонаправленные транскрипты (области, окрашенные ж?лтым - экзоны, тонкие линии - интроны). Видно, что транскрипты генов не перекрываются. Внизу серым цветом указаны экзоны, кодирующие белок.

До последнего времени границы локализации генов lawc и Trf2 не были до конца установлены. Трудности возникали из-за отсутствия достаточного набора удобных мутаций в 5'-области генов. Открытие инcерционной мутации lawcp1, локализованной в 15 т.п. н. от открытой рамки считывания

Trf2, сыграло важную роль в установлении границ этого гена, в частности, района начала его транскрипции (5'область). С другой стороны, изолирование полноразмерной кДНК транскриптов lawc также позволило уточнить карту этого гена. В итоге оказалось, что гены lawc и Trf2 транскрибируются в разных направлениях и перекрываются экзонами (рис.2).

Рисунок 2. Современная карта района локализации генов lawc и Trf2 и районы локализации конструкций (синие полоски).

Далее мы опишем гены комплекса lawc/Trf2 и их продукты отдельно.

1.2 Характеристика гена leg-arista-wing complex

Мутация lawcp1 была получена в системе продленной неcтабильноcти на фоне Р-М гибридного диcгенеза и вызвана инсерцией двойной копии Р - элемента. Это говорит о том, что в каждом потомстве на протяжении нескольких десятков поколений мутация lawcp1 с высокой частотой (примерно 30%) ревертировала к дикому типу.

В настоящее время аллель lawcp1 стабилен. Возможно, это объясняется

удалением из линии активных копий Р-элемента, бывших причиной нестабильности генома. Мутация lawcp1, принятая нами за основу при описании и фиксировании фенотипических нарушений, обладает широким плейотропным эффектом, указывающим на транc-регуляторную функцию исследуемого локуса, и проявляетcя наличием у мутантных оcобей:

1) гомеозиcной транcформации диcтальных cегментов ариcты в cоответcтвующие элементы тарзуcа;

2) нарушения cегментации ног;

3) обрезанных, раccтавленных крыльев;

4) дополнительных щетинок.

При слабой экспрессивности изменения ограничиваются лишь дополнительными щетинками. Выживаемость мутантных особей составляла 10 - 20%. Многие из них погибали на стадии выхода имаго из куколки в связи с прирастанием искривленной ноги к пупарию. На протяжении нескольких лет культивирования внешнее проявление признаков сгладилось, в частности, крайне редко стали наблюдаться трансформации аристы и аномалии развития ног. Однако, линия сохраняет все ранее описанные молекулярно - генетические признаки, две тандемно расположенные копии неполноразмерного Р-элемента с функциональными концевыми повторами (Петрук и др., 1998, Симонова, 2000, Модестова, 2005) остаются в прежней

локализации. Методом рекомбинационного анализа было установлено, что район локализации исходного аллеля lawcр1 расположен между генами cut (1-20.0) и ocelliless (1-23.1) в районе 1-23.0 единиц карты Х-хромосомы.

Прилежащий к сайту встраивания копий Р-элемента район был клонирован и секвенирован. Показано, что этот участок транскрибируется, но не транслируется (Петрук и др., 1998; Симонова, 2000) и лежит примерно на расстоянии 15 т.п. н. выше открытой рамки считывании гена Trf2 (Kopytova et al., 2006) и около 400 п. н. выше гена CG32711 (lawc; wiser) (Brandt and Corces, 2008; Mela et al., 2009). Ген lawc имеет три экзона и кодирует три транскрипта размером 1070 н. (isoform A), 1330 н. (isofrom B) и 2723 н. (isofrom C) (Mela, 2009). На данный момент установлено, что гену lawc характерны короткие сплайс-варианты транскриптов, активно экспрессирующиеся на эмбриональной и куколочной стадиях развития дрозофилы (Черезов, автореферат диссертация 2014, 22 стр.). Был найден новый экзон в составе гена lawc и показано, что некоторые его транскрипты имеют альтернативные сайты старта транскрипции и являются полоспецифическими.

В состав ряда транскриптов входит относительно небольшая (73 а. к.) открытая рамка считывания. Ей соответствуют две изоформы с молекулярным весом 8кДа и 9кДа соответственно (Mela et al., 2009). Белок Lawc локализуется в междисках политенных хромосом. Показано, что Lawc локализуется с субъединицей Pol IIo РНК-полимеразы II и привлекается в транскрибируемые локусы после того, как началась элонгация, осуществляемая Pol IIo (Brandt and Corces, 2008). Методом дигибридного дрожжевого скрининга показано, что Lawc взаимодействует с белком dREGgamma, который является компонентом ядерной протеасомы (Brandt and Corces, 2008) и белком Dsx2 (Giot et al., 2003), в свою очередь участвующий в детерминации пола, регуляции полового поведения, развитии нервной системы и росте имагинальных дисков (Villella and Hall, 1996; Yamamoto et al., 1998; Keisman et al., 2001). В генетических экспериментах показано взаимодействие lawc с геном Pros26, белковый продукт которого является компонентом 20S каталитического ядра протеасомы (Brandt and Corces, 2008). Предполагается, что белок Lawc необходим для правильной транскрипции РНК-полимеразой II (Brandt and Corces, 2008).

1.3 Фактор базовой транскрипции Trf2

Основным и универсальным фактором базовой транскрипции является белок ТВР (TATA-box Binding Protein), который связывается с ТАТА последовательностью, входящей в состав большинства промоторов (Sauer and Tjian, 1997). Ранее у человека и дрозофилы были обнаружены ещ? 2 гена, продукты которых имеют структурное сходство ДНК-связывающего домена и, полагают, выполняют схожую функцию, проявляя при этом некоторую тканевую специфичность (центральная нервная и репродуктивная системы). Это гены TBP related factor 1 и 2 (Trf1 и Trf2). (Rabenstein et al., 1999).

Ген Trf2 кодирует альтернативный TBP фактор базовой транскрипции Trf2. Поскольку Trf2 был выделен из различных организмов (человека, мыши, дрозофилы, крысы и нематоды), этот фактор будет иметь несколько названий: TBP related factor (Trf2), TBP-like protein (TLP), TBP-like factor (TLF). Первичная структура этого белка варьирует у различных видов, но все они содержат консервативный домен, состоящий из двух повторов, который является общим для белков - представителей семейства TBP-подобных факторов. У Trf2 дрозофилы этот домен имеет 39% идентичных аминокислот с доменом ТВР. Но, несмотря на то, что ДНК-связывающий домен у всего семейства TBP-подобных факторов высококонсервативен (около 50% идентичности), детальное сравнение последовательностей ТВР и Trf2 показало, что ключевые аминокислоты, необходимые для взаимодействия ТВР с ТАТА-боксом, у Trf2 заменены на другие (Hochheimer and Tijan, 2003). Эти данные подтверждаются и тем фактом, что рекомбинантный Trf2 не связывает канонический ТАТА-бокс. Хотя у Trf2 дрозофилы основной домен гомологии с ТВР только на 39% идентичен, основания, ответственные за связывание с общими транскрипционными факторами TFIIA и TFIIB, гомологичны на 60% и 75% соответственно. Таким образом, возможно, Trf2 может взаимодействовать с компонентами преинициаторного комплекса и участвовать в инициации транскрипции РНК-полимеразой II.

В отличие от TBP, Trf2 входит в состав высокомолекулярного комплекса (500 кДа) и следовательно, может быть ассоциирован с набором белков, которые отличаются от ТВР - и Trf1-ассоциированных факторов. Были идентифицированы Trf2-содержащие комплексы дрозофилы, в состав которых входят компоненты хроматин-ремодулирующего комплекса NURF (nucleosome remodelling factor), белка DREF (DNA replication-related element (DRE) - binding factor), а также другие белки, которые могут взаимодействовать с хроматином (Hochheimer еt al., 2002). Биохимический анализ TRF2-содержащего комплекса выявил Trf2-специфичные промоторы. Оказалось, что DREF, взаимодействующий с промоторным проксимальным элементом ДНК-DRE и вовлеченный в регуляцию клеточного цикла и клеточную пролиферацию генов, связывается с Trf2.

Исследования in vitro показали, что DREF-содержащий Trf2-комплекс принимает участие в распознавании промотора гена PCNA (proliferating cell nuclear antigen). Ген PCNA содержит два тандемно расположенных повтора, которые разделены участком размером 63 пн., анализ экспрессии генов показал несколько дополнительных генов-мишений Trf2, которые вовлечены в репликацию ДНК и клеточную пролиферацию, и содержат элемент DRE (Hochheimer еt al., 2002). Компьютерный анализ промоторных элементов в геноме дрозофилы определил DRE-элемент как один из консервативных промоторных участков. Более того, по имеющимся данным гены, содержащие DRE, вовлечены в контроль развития глаз, в частности, в переход от пролиферации к клеточной дифференцировке. Поэтому вероятно, что Trf2 может функционировать как промотор - селективный фактор, который отвечает за регулируемую транскрипцию определенного набора генов у дрозофилы.

Предполагают, что ген Trf2 участвует в развитии дрозофилы.

У позвоночных животных (от рыб до человека) в отличие от дрозофилы и низших эукариот присутствует еще один белок семейства ТВР - подобных факторов - это белок TRF3/TBP2. Было показано, что в отличие от TRF2 у позвоночных TRF3 экспрессируется узкоспецифично: в ооцитах и на ранней эмбриональной стадии (Gazdag et al., 2007).

Долгое время, границы локализации гена Trf2 у дрозофилы не были до конца установлены. Такие трудности были обусловлены отсутствием достаточного набора удобных мутаций в области гена Trf2. Открытие инcерционной мутации lawcp1, локализованной в 15 т.п. н. от открытой рамки считывания Trf2, сыграло важную роль в установлении границ этого гена, в частности, района начала его транскрипции (5'область). В результате выяснилось, что кроме изначально описанного Trf2 полипептида (75 кДа) (Rabenstein et al., 1999), ген Trf2 кодирует более длинный белок размером 175кДа, который содержит дополнительные 1065 N-концевых аминокислоты (рис.3). Было показано, что обе формы белка Trf2 имеют одинаковые сайты связывания на политенных хромосомах и одинаковый паттерн экспрессии, поэтому авторы сделали вывод об их схожей функции (Kopytova et al., 2006).

Рисунок 3. Молекулярная структура гена Trf2 и его белкового продукта. А. Молекулярная структура гена Trf2 и его транскрипта. Кодирующая область выделена черными прямоугольниками, некодирующая область - белыми. Б. Структура белка Trf2. Обозначены: домен гомологии с TBP, два мотива coiled-coil и сигналы ядерной локализации белка (NLS) (по: Kopytova et al., 2006).

На данный момент известно, что ген Trf2 имеет десять экзонов, кодирующих открытую рамку считывания, которая начинается с четвертого экзона (рис.3А). В 5' - концевой области гена содержатся два больших интрона: 7.6 т.п. н. и 4.7 т.п. н. (Kopytova et al., 2006).

Белок размером 175 кДа содержит два структурных мотива coiled-coil (рис.3Б), которые отсутствуют в описанном ранее белке. Coiled-coil мотив найден в различных белках, в частности, в транскрипционных факторах. Этот мотив представляет собой гептадный повтор аминокислот, уложенных в б - спираль так, что гидрофобные остатки выстраиваются на одной стороне спирали, формируя участок, который может принимать участие как в димеризации белка, так и в белок-белковых взаимодействиях (Kohn et al., 1997).

1.4 Функциональные особенности lawc/trf2 в репродуктивной системе самок дрозофилы

Некоторые lawc-мутации вызывают стерильность самок, другие аллели приводят к раннему старению организма. На данный момент старение связывают с нарушением самовоспроизведения стволовых клеток в репродуктивной системе. Гаметогенез у дрозофилы исследован достаточно хорошо. Но при этом генетический контроль изучен недостаточно. Неизвестно, каким образом происходит выбор ооцита среди шестнадцати клеток цисты, хотя ясно, что за его спецификацию отвечает недавно открытая цитоплазматическая структура, появляющаяся в стволовых клетках полового пути, названная фьюсомой. Поэтому изучение генетической регуляции процессов идентификации ооцита и поддержания его статуса, а также самовоспроизведения стволовых герминативных клеток и старения предполагает исследование стерильных и слабофертильных мутантов у хорошо изученных модельных организмов.

Обнаружено влияние уровня экспрессии lawc/trf2 на организацию актина в эпителиальных клетках яичника. Показано, что стерильность lawc - мутантов вызвана нарушением механизма образования дифференцировки герминативных и соматических фолликулярных клеток. Также, у мутантов с сокращенной продолжительностью жизни отсутствует самовоспроизведение герминативных стволовых клеток.

Полученные данные являются основой для дальнейшего изучения функции гена lawc/trf2, а также помогут решить ряд спорных вопросов, касающихся взаимосвязей сигнальных путей в оогенезе у дрозофилы. Учитывая, что у позвоночных, в том числе у млекопитающих и человека, присутствуют гомологичные гены, то можно предположить, что полученные данные будут иметь универсальное значение.

1.5 Основные аспекты развития половой системы самок

Образование функциональных гамет становится важным событием для всех многоклеточных организмов, размножающихся половым путем. Оогенез Drosophila melanogaster представляет собой сложный процесс скоординированного развития половых и соматических клеток, результататом которого является формирование зрелого яйца. В образование и созревание яйца вовлечено большое количество генов, которые контролируютразличныеэтапыегоразвития.

1.6 Формирование половой системы самок в эмбриогенезе

У самок D. melanogaster формирование половой системы начинается ещ? на самых ранних этапах эмбриогенеза. Во время первых синцитиальных дроблений, ядра постепенно перемещаются к периферии. К 9-му дроблению, что соответствует третьей стадии эмбриогенеза, 8-10 ядер достигают области зародышевой (полярной) плазмы на заднем полюсе эмбриона. Зародышевая плазма содержит особые, специфические органеллы - полярные гранулы, электронно-плотные тельца, состоящие из РНК и белков. Полярные гранулы характерны только для зародышевой плазмы и половых клеток. Они необходимы для хранения и регуляции трансляции мРНК генов, определяющих дальнейшее развитие клеток зародышевого пути (Mahowald А. P. 2001.). К 10-му дроблению несколько ядер в области половой плазмы обособляются, приобретают клеточную оболочку и становятся предшественниками половых клеток (ППК, в английской литературе - Primordial Germ Cells (PGC)). Транскрипция в ППК останавливается вплоть до 8-9-й стадии эмбриогенеза. ППК прекращают делиться синхронно как с синцитиальными ядрами, так и друг с другом. Во время того, как ядра синцития синхронно проходят 11-13 циклов дробления, ППК делятся несинхронно 0-2 раза, образуя около 40 крупных клеток на заднем полюсе эмбриона (Williamson A., Lehmann R. 1996). К 13-й стадии эмбриогенеза несформированные гонады, состоящие примерно из 200 соматических и 10-15 ППК каждая, располагаются по обе стороны от вентральной борозды (ventral furrow). На этой стадии ППК окружаются соматическими клетками, этим и завершается формирование зачаточных гонад. В результате к концу эмбриогенеза у самок в 5-м брюшном сегменте образуются две округлые зачаточные гонады, состоящие из соматических и половых клеток.

1.7 Развитие половой системы самок личинок и предкуколок

На стадии личинки в гонаде самок дрозофилы выделяют мелкие соматические клетки, которые располагаются на ее переднем и заднем полюсах (Brower D. L., Smith R. J., Wilcox M. 1981.), а также крупные половые клетки, которые локализуются в среднем районе гонады (Lasko P. F., Ashburner M. 1990.). У личинок третьего возраста соматические клетки переднего полюса разделяются на 16-20 групп, каждая из которых состоит из 8-9 дископодобных клеток. Из таких клеток в дальнейшем формируются тер - минальные филаменты, которые будут располагаться на конце каждой овариолы (Godt D., Laski F. A., 1995, Spradling A. C. 1993.).

Яйцеводы, придаточные железы (accessory glands), матка, влагалище и наружные половые органы взрослой мухи происходят из клеток генитального (полового) имагинального диска и объединяются с остальными клетками яичника только у куколок на третий день их развития (Estrada В. Casares, Sanchez-Herrero E. 2003.) Таким образом, яичники дрозофилы формируются из трех различных типов клеток: половых клеток, соматических клеток мезодермальиого происхождения и эпителиальных клеток, берущих начало из генитального имагинального диска (Chen E. H., Baker B. S. 1997.).

1.7.1 Половая система взрослых самок дрозофилы

Яичник взрослой мухи состоит из 16-20 овариол, каждая овариола представляет собой полую структуру, внутри которой последовательно располагаются растущие яйцевые камеры. Каждая овариола имеет отверстие в латеральный яйцевод, два латеральных яйцевода объединяются в один общий яйцевод, который, затем, переходит в матку, а далее во влагалище (рис.4). И яйцеводы, и матка хорошо иннервированы и имеют мощную кольцевую мускулатуру, необходимую для продвижения по ним яйца (Bhat K. M., Farkas G., Karch F., 1996.). Сам процесс оплодотворения происходит непосредственно в матке самки. После него сразу же происходит процесс запасания спермы. Для этого используются две сперматеки и непарный семяприемник (рис.4). Семяприемник аккумулирует около 80-90% запасающейся спермы (Braun R. E., Behringer R. R., Peschon J. J., 1989.).

В каждой овариоле зрелого яичника выделяют три района: терминальный филамент, гермарий и вителларий (рис.4). А также в гермарии дрозофилы, выделяют четыре функциональных района: 1, 2А.2В и 3 (Bruckner K., Perez L., Clausen H., Cohen S, 2000.). В передней части гермария располагаются 8-9 клеток терминального филамента. К клеткам терминального филамента присоединяются 2-3 соматические клетки, называемые кэп - клетками (cap cells) (Burnett W. V., 1997.), в непосредственной близости от которых располагаются стволовые клетки, которые дают начало всем половым клеткам яичников, а также соматические клетки, образующие оболочку гермария (рис.3) (Carpenter A. T. 1979.). В первом районе гермария, кроме вышеперечисленных клеток, располагаются также цистобласты - первичные половые клетки, претерпевающие митотические деления, и ранние цисты, состоящие из двух, четырех и восьми половых клеток. Клетки терминального филамента, кэп-клетки и клетки оболочки гермария образуют "нишу", обеспечивающую стимуляцию, развитие и поддержание статуса стволовых клеток (Carpenter A. T., 1981.). В клетках терминального филамента и кэп-клетках активно экспрессируются гены piwi, Yb, decapenta - plegic (dpp), wingless (wg) и hedgehog (hh). При отсутствии продуктов генов piwi и Yb происходит нарушение дифференцировки стволовых клеток (Carpenter A. T., 1994.). Мутации гена dpp или гена saxophone, кодирующего его рецептор, приводят к значительному снижению числа стволовых клеток и замедлению процесса их деления (Chen E. H., Baker B. S., 1997.). Продукты генов wg и hh необходимы для поддержания статуса соматических стволовых клеток, расположенных на границе районов 2А/2В гермария. У мутантов, которые не могут воспринимать Hh - и Wg-сигналы, нарушается пролиферация соматических стволовых клеток (Chung Y. T., Keller E. B., 1990.).

Важным событием, происходящим в первом районе гермария, является деление стволовой клетки, в результате которого образуются цистобласт и новая стволовая клетка, которая занимает место "материнской" стволовой клетки (Coffman C. R., 2003.). Электронно-микроскопические исследования дали понять, что деления стволовых клеток и цистобластов являются строго ориентированными (Cooley L., Verheyen E., Ayers K. 1992.).

Основную роль в ориентации оси веретена деления таких клеток играет фьюсома - это специализированная органелла мембранного происхождения, которая находится только в половых клетках (Cox D. N., Chao A., Baker J., 1998.). В стволовых клетках и цистобластах фьюсома располагается в области контакта стволовой клетки и кэп-клеток, она имеет сферическую форму, состоит из множества мелких везикул и называется спектросомой.

Рис.4. Общий вид репродуктивной системы половозрелой самки D. melanogaster.

При делении стволовой клетки спектросома ориентирует веретено деления, заякоривая один из его полюсов. В дальнейшем, в анафазе - телофазе, спектросома вытягивается вдоль оси веретена, попадая во время цитокинеза в обе дочерние клетки. Клетка, имеющая большее количество материала спекртосомы, остается стволовой, а клетка, получившая меньшее, - цистобластом (Cox D. N., Chao A., Lin H. 2000.). При делениях цистобласта структура спектросомы модифицируется, с данного момента она называется фьюсомой. Цистобласт претерпевает определенное число делений, характеризующее каждый вид. У D. теlanogaster цистобласт делится строго четыре раза, в результате образуется 16-клеточная циста. В норме нарушение числа деле цистобласта случается крайне редко.

У D. melanogaster деления цистобласта сопровождаются неполным цитокинезом, в результате образуется синцитий, который состомт из клеток, называемых цистоцитами. Эти клетки контактируют между собой цитоплазматическими мостами, называемыми также кольцевыми каналами (ring canals). Цистоциты, претерпевающие митозы, делятся синхронно, при этом следует отметить, что эти митотические деления не сопровождаются удвоением клеточного объема. Только после прохождения всех четырех митотических делений все члены шестнадцатиклеточной цисты у дрозофилы синхронно вступают в S-фазу. Каждое деление клеток цисты сопровождается ростом и разветвлением фьюсомы (Cox D. N., Chao A., Baker J., 1998.). Фьюсома проходит через кольцевые каналы в делящейся цисте, образуя разветвленную структуру, связывающую между собой все клетки цисты. Нарушение экспрессии генов, кодирующих специфические белки, приводит к аномалиям в формировании цисты и отсутствию ооцитов. Цистоциты с разным количеством кольцевых каналов содержат разное количество фьюсомного материала. Наибольшее количество фьюсомного материала содержится в самой "основной" клетке, обладающей четырьмя каналами, тогда как более "молодые" клетки содержат меньшее количество фьюсомы. Фьюсома участвует в организации и структурировании сети микротрубочек в развивающейся цисте. Физическая и функциональная взаимосвязь фьюсомы и микротрубочек подтверждается данными о том, что у мутантов hu-li tai shao, характеризующихся отсутствием фьюсомы, нарушается также организация и поляризация сети микротрубочек (Duchek P., Somogyi KM Jekely G., 2001.).

Во втором районе гермария, который делится на две части - 2А и 2В, циста содержит уже 16 клеток, каждая из которых характеризуется определенным числом кольцевых каналов. Две клетки синцития содержат четыре и две клетки - три канала, четыре клетки - два канала, тогда как оставшиеся восемь содержат только по одному каналу (Dumont J. N., 1972.).

Несмотря нато, что цистоциты имеютразное количествокольцевых каналов, на первых этапах развития цисты они выглядят достаточно одинаково, однако при этом прохождении через второй район гермария начинают выявляться первые морфологические признаки будущего ооцита. Ооцитом становится одна из двух клеток с четырьмя кольцевыми каналами, содержащая наибольшее количество фьюсомного материала. В районе 2А гермария к центру фьюсомы направляются минус-концы микротрубочек, формируя центр, организующий микротрубочки. У цисты, проходящей через район 2В, плюс - концы микротрубочек проходят через кольцевые каналы и попадают в каждую из 15 питающих клеток (рис.5) (Duncan J. E., Warrior R, 2002).

В 2А-районе гермария в клетках цисты, обладающих тремя и четырьмя кольцевыми каналами, формируется синаптонемальный комплекс (СК), что свидетельствует о том, что они приступают к мейотическому делению. Когда же циста попадает в район 2В, только клетки с четырьмя каналами находятся в состоянии профазы I мейоза, остальные клетки (с тремя каналами) теряют СК и становятся питающими клетками. В дальнейшем СК сохраняется только в одной клетке с четырьмя каналами, которая станет ооцитом (Field C. M., Alberts B. M., 1995.). ДНК ооцита подвергается конденсации, в результате чего формируется кариосома, мейоз приостанавливается по данным Спрадлинга на профазе I, а по уточненным данным Карпентера - на четвертой стадии профазы I - диплотене (Foe V. E. 1989.). Продолжение мейотического деления происходит только на поздних стадиях оогенеза - на 10-й стадии развития яйцевой камеры. На границе 2А и 2В районов гермария происходит окружение сформированной цисты фолликулярными клетками, которые образуются из двух стволовых клеток-предшественниц соматических клеток. Фолликулярные клетки не только окружают каждую сформировавшуюся цисту, но и разделяют их между собой (Forbes A. J., Lin H., Ingham P. W., 1996.). Следует отметить, что на сегодняшний момент неизвестны специфические маркеры для стволовых соматических клеток гонад и их сложно определить морфологически. Поэтому у разных авторов данные о первоначальном числе фолликулярных клеток, которые окружают сформированную цисту на границе 2А/2В-районов, несколько различаются. По мнению Карпентера (Forbes A. J., Lin H., Ingham P. W., 1996.), а также Марголиса и Спрадлинга это число составляет 16, тогда как Кинг насчитал около 80 фолликулярных клеток, первоначально участвующих в этом процессе.

Цисты, находящиеся в 2В-районе, уже полностью разделены между собой фолликулярными клетками, они плоские по форме и располагаются по всей ширине гермария. В этом районе фолликулярные клетки делятся на три типа две пары полярных клеток, располагающихся на разных полюсах фолликула; от 4 до 6 интерфолликулярных клеток, которые разделяют фолликулы между собой; и эпителиальные фолликулярные клетки, окружающие цисту. Клетки первых двух типов прекращают делиться уже в этом районе гермария. тогда как эпителиальные фолликулярные клетки продолжают активное деление вплоть до 6-й стадии развития яйцевой камеры (Forbes A. J., Spradling A. C., Ingham P. W., Lin H., 1996.). Полярные клетки необходимы для определения переднезадней и дорcально - вентральной осей ооцита, способствуя реорганизации его цитоскелета после 6-й стадии развития яйцевой камеры.

Полярные клетки отличаются от других фолликулярных клеток более круглой формой и специфической экспрессией определенных генов. В них активно экспрессируется ген fringe (Gilbert L.I., latrou K. and Gill S. S. 2005.). Установлено, что мутации по генам fringe и Notch приводят к отсутствию полярных клеток и к формированию сложных фолликулов, в которых несколько цист окружены единым фолликулярным эпителием. (Gilbert L.I., latrou K. and Gill S. S. 2005.). В яичниках мутантных самок интерфолликулярные клетки, разделяющие между собой соседние яйцевые камеры, отсутствуют, в результате формируются сложные фолликулы, подобные таковым у мутантов Notch и Delta. Двойные гетерозиготные комбинации между генами Notch, Delta, daughter-less и toucan приводят к нарушению разделения яйцевых камер, что свидетельствует о том, что продукты всех этих генов участвуют в одних и тех же сигнальных путях (Gondos B., 1969.).

В третьем, последнем, районе гермария располагается только одна циста круглой формы, ооцит локализуется в ее задней части. Это один из первых признаков формирования переднее - задней оси в камере. Как возникает эта полярность, остается неясным, однако показано, что мутации генов dicephalic, spindle C и encore нарушают полярность камеры (Gonzalez-Reyes A., Elliott H., 1997.). В отдельных яйцевых камерах этих мутантов ооцит лежит в центре камеры, а 15 питающих клеток располагаются с двух сторон, спереди и сзади.

Пройдя третий район гермария, сформированный фолликул покидает гермарий и попадает в вителларий. Дальнейшее развитие яйцевой камеры обычно разделяют по морфологическим критериям на 14 стадий (рис.5) (Grammont M., Irvine K. D. 2001.) или на 20 стадий по данным Маргаритиса. В дальнейшем в обзоре будет использована общепринятая классификация по Кингу. По мнению Кинга, яйцевая камера, покидающая гермарий, находится на первой стадии развития, однако существует и другое мнение - что это событие происходит, когда камера находится уже на второй стадии (Grammont M., Irvine K. D. 2002.). Яйцо, находящееся на 14-й стадии, уже готово к оплодотворению.

Развитие цистобласта в 16-клеточную цисту занимает 3 дня, за 7 дней цистобласт развивается до яйцевой камеры 1-й стадии (Grammont M., Irvine K.D. 2002.). Дальнейшее развитие значительно ускоряется, и формирование зрелого яйца занимает 3 дня. В норме каждая овариола продуцирует до двух зрелых яйцеклеток в день, а в сумме одна самка способна ежедневно откладывать до 80 яиц.

Рис.5. Схематическое изображение овариолы (с модификациями). На переднем конце овариолы располагается гермарий с терминальным филаментом. Серым указан ооцит. (Ст. - стадия).

1.7.2 Транспорт цитоплазмы питающих клеток в ооцит

Поскольку для дрозофилы характерен внутриментарный тип питания яйцеклетки, существенную роль в развитии ооцита играет направленный транспорт веществ из питающих клеток в ооцит, который наблюдается в течение большей части развития яйцевой камеры. Как было описано ранее, только одна из 16 клеток цисты приступает к мейотическому делению и становится ооцитом, остальные 15 растут и дифференцируются в питающие клетки. ДНК этих клеток подвергается нескольким циклам эндорепликации, в результате степень полиплоидии достигает 2048С в ближайших к ооциту клетках. Во время полиплоидизации ядер питающих клеток (трофоцитов) в их геноме происходит дифференциальная потеря сателлитной ДНК и увеличение рибосомной ДНК. На протяжении первых 2-3 суток развития яйцевой камеры транспорт в ооцит идет очень медленно и селективно. На 10В-стадии начинается быстрый транспорт, когда большая часть содержимого питающих клеток перекачивается в ооцит в течение 30 минут. Этот процесс в англоязычной литературе называется dumping (от dump - выброс). После окончания быстрого транспорта в питающих клетках остаются только ядра, немного актиновых филаментов и минимальное количество цитоплазмы (Baricheva E. M., Katokhin A. V., 1997).

1.7.3 Эволюционная консервативность оогенеза

Процесс оогенеза различается у разных видов, но есть черты, характерных для эволюционно отдаленных видов. Например, гаметогенез у многих видов характеризуется формированием цист, т.е. группы клеток, образующихся из одной половой клетки - предшественницы. У всех видов цисты характеризуются наличием кольцевых каналов и синхронными митотическими делениями. У некоторых видов, у которых мейоз происходит в течение всей взрослой жизни (самки высших насекомых и самцы большинства видов), цисты выявляются в основном у взрослых особей. У самок позвоночных, а также самцов и самок низших насекомых мейоз происходит преимущественно до взрослой стадии, в яичниках взрослых самок этих видов цисты отсутствуют, но существует ряд данных, свидетельствующих о том, что они формируются в зачаточных гонадах. У многих видов цисты формируются, однако исчезают вскоре после вхождения в мейоз. Блоки половых клеток внутри несозревших яичников мыши и лягушки морфологически сильно похожи на хорошо изученные цисты в яичниках самок высших насекомых и семенниках самцов позвоночных, у которых цисты выявляются во взрослом состоянии, однако число клеток в цисте различается у разных видов. Так, в яичниках дрозофилы клетка - предшественница делится четыре раза, в яичниках мыши число делений часто кратно 2. в то же время у цыпленка и млекопитающих число клеток в цисте не фиксировано. Формирование цист в ходе гаметогенеза - явление распространенное, поскольку, скорее всего, циста несет основную функциональную нагрузку (Margolis J., Spradling A. 1995.). У самок существование цисты дает возможность одной клетке специализироваться в качестве ооцита и получать от других клеток цисты необходимые для своего развития компоненты.

При формировании цисты сильно изменяется клеточный цикл, что, в свою очередь, может оказывать влияние на начало мейоза; во-вторых, формирование цитоплазматических мостов между цистоцитами обеспечивает контроль числа делений гониальной клетки; в-третьих, формирование цисты может активировать синтез и реорганизацию органелл (McCaffrey R., St Johnston D., 2006.).

Другой общей чертой гаметогенеза у разных видов является формирование фолликулов, которые необходимы для роста и развития половых клеток. Фолликул представляет собой структуру из половых и фолликулярных клеток. При отсутствии фолликулярных клеток нарушается формирование зрелого яйца, что говорит о необходимости фолликулярных структур в процессе оогенеза. В момент формирования фолликула уже вступившие в мейоз половые клетки, которые затем станут ооцитами, приостанавливаются на стадии диплотены профазы мейоза I на период от нескольких дней до многих лет в зависимости от вида. Фолликулы обеспечивают активный рост ооцита, способствуя запасанию питательных веществ, необходимых для развития будущего эмбриона. У дрозофилы фолликул представляет собой цисту из 16 половых клеток (15 питающих трофицитов и одного ооцита), которые одновременно окружаются одним слоем фолликулярных клеток.

Следовательно яичники состоят из небольшого количества типов клеток, поведение и структура которых на разных стадиях оогенеза контролируются множеством генов. Однако до сих пор многие детали остаются недостаточно ясными, хотя на эту тему публикуется огромное количество работ. Drosophila melanogaster является удобной моделью для выявления, как новых генов, так и новых функций уже изученных генов, контролирующих процесс оогенеза. Полученные на дрозофиле данные могут быть экстраполированы на другие объекты.

Основным методом в работе было использование двухкомпонентной системы Gal4/UAS, следующая глава будет посвящена описанию этой системы.

1.8 Система Gal4/UAS у дрозофилы

1.8.1 Компоненты системы Gal4/UAS

Gal4 кодирует белок, состоящий из 881 аминокислоты. Впервые он был идентифицирован в клетках дрожжей Saccharomyces cerevisiae как регулятор генов (например, GAL10 и GAL1), индуцируемых галактозой (Laughon et al., 1984; Laughon, Gesteland, 1984). Белок этот был выделен и тщательно изучен. Было показано, что GAL4 обладает способностью связываться с определенными последовательностями ДНК и таким образом активировать транскрипцию (Ptashne, 1988). В клетках дрожжей GAL4 регулирует транскрипцию разнонаправлено транскрибируемых генов GAL10 и GAL1, напрямую связываясь с четырьмя родственными сайтами, размером 17 пар оснований, которые находятся между этими локусами (Giniger et al., 1985). Эти сайты образуют элемент, названный Upstream Activating Sequences (UAS), который аналогичен энхансерам многоклеточных эукариот. Этот элемент важен для активации транскрипции генов, регулируемых белком GAL4. ДНК-связывающая активность GAL4 определяется первыми 74 аминокислотными остатками (а. о.), а его участки, выполняющие функции активации транскрипции, расположены в двух регионах - это 148-196 а. о. и 768-881 а. о. (Ma, Ptashne, 1987b). После этой работы Фишер с коллегами (1988) продемонстрировали, что у дрозофилы экспрессия Gal4 способна стимулировать транскрипцию гена-репортера под контролем UAS. GAL4 может функционировать не только у дрозофилы, но также и в других системах, активизируя транскрипцию с помощью элемента UAS (Fischer et al., 1988; Kakidani, Ptashne, 1988). Важно, что экспрессия Gal4 в клетках дрозофилы, как оказалось, не имеет никаких явно вредных фенотипических эффектов. Эти выводы позволили развивать систему Gal4/UAS применительно к регуляции направленной экспрессии генов.

Направленная экспрессия гена в определенное время или конкретном месте (временная или тканеспецифическая) является одним из наиболее мощных методов для установления функции гена in vivo. В 1993 Брэнд и Перримон опубликовали статью о двустороннем подходе для направленной экспрессии гена in vivo (Brand, Perrimon, 1993). В этой системе экспрессия исследуемого гена, называемого респондером, находится под контролем элемента UAS, состоящего из пяти последовательных GAL4-связывающих сайтов (рис.6).

Экспрессия гена-респондера возможна только после того, как белок GAL4 свяжется с UAS. Поскольку транскрипция респондера требует присутствия GAL4, то при отсутствии GAL4 в линиях данный ген поддерживается в транскрипционно молчащем состоянии. Чтобы активизировать транскрипцию респондера, линии, несущие этот ген, скрещиваются с линиями, экспрессирующими Gal4, которые называются драйверами.

Таким образом, у потомства паттерн экспрессии гена-респондера будет соответствовать паттерну экспрессии Gal4-драйвера. Этот двусторонний подход, в котором два компонента системы, респондер и драйвер, поддерживаются как отдельные материнские линии, имеет многочисленные преимущества. Во-первых, молчание респондерного гена в материнской линии означает, что трансгенные линии могут синтезироваться для генов, продукция которых ядовита, смертельна, или уменьшает жизнеспособность.

Рисунок 6. Двухкомпонентная система Gal4/UAS в дрозофиле.

Когда самка, несущая в геноме респондер под контролем UAS (UAS-GFP), скрещивается с самцом, несущим драйвер GAL4, потомство содержит оба элемента системы. Присутствие GAL4 в чередующихся паттернах сегментов в изображенных эмбрионах запускает экспрессию респондера под промотором UAS в соответствующих паттернах.

Например, подобные линии в настоящий момент существуют для таких генов, как ricin а (кодирует ядовитый продукт), reaper (при определенных условиях может запускать программируемую смерть клетки - апоптоз), для онкогенов, таких, например, как brafact, чья экспрессия приводит к снижению жизнеспособности (Brand, Perrimon, 1994; Aplin, Kaufman, 1997). Когда же в эти клетки (организмы) вводится драйвер для GAL4 и сам ген GAL4, то молчание респондерных генов прекращается и в клетках начинает вырабатываться их продукция - таким образом, вызывая гибель клеток, повышая смертность организма или снижая его жизнеспособность. Это позволяет использовать данную систему как мощный инструмент в изучении эффекта гибели специфических клеток в интересующих процессах также хорошо, как и функцию генов ядов, смертельных или опухолеродных генов.

Дополнительным преимуществом системы является возможность с ее помощью целенаправленно вызывать тканеспецифическую и временную экспрессию любого гена, комбинируя ее с различными драйверами Gal4. Зависимость гена-респондера от драйвера Gal4 привела Брэнда и Перримона к разумной мысли воспользоваться огромным разнообразием геномных регулярных последовательностей и силой сообщества генетиков - дрозофилистов, чтобы синтезировать конструкции, называемые "ловушка энхансеров" на основе GAL4 (pGawB). Такие конструкции способны вызывать и усиливать экспрессию гена Gal4, а следовательно и гена респондера в различных тканях, в том числе и тех, в которых в норме данный ген не экспрессируется. Это привело к созданию поразительного количества специфических драйверов Gal4 для направленной экспрессии генов почти во всех основных тканях. Однако работа по организации, сообщению, и внесению таких линий в музейные международные центры линий дрозофилы оказалась нелегкой. Пока работа по конструированию и сообщению информации о драйверах ведется лишь усилиями нескольких индивидуальных лабораторий, и для многих драйверов Gal4 детальная информация относительно точного профиля экспрессии отсутствует (Gerlitz et al., 2002). В настоящий момент публично доступен только ограниченный ряд драйверов GAL4 через музеи коллекций линий дрозофилы, например, через американский центр в Блумингтоне on-line на http://flystocks. bio. indiana.edu/gal4. htm. На этом сайте расположена база банных, где предоставлена информация о 4615 трансгенных линиях, имеющих конструкции типа "ловушек энхансеров", созданных на основе GAL4.


Подобные документы

  • Основные закономерности наследования генов, отвечающих за цвет глаз мух. Доказательство доминантности гена, определяющего окраску глаз у дикой линии мух с Х-хромосомой. Характеристика о особенности разведения мухи дрозофиллы (Drosophila melanogaster).

    практическая работа [529,2 K], добавлен 16.02.2010

  • Дифференциальная экспрессия генов и ее значение в жизнедеятельности организмов. Особенности регуляции активности генов у эукариот и их характеристики. Индуцибельные и репрессибельные опероны. Уровни и механизмы регуляции экспрессии генов у прокариот.

    лекция [2,8 M], добавлен 31.10.2016

  • Стійкість до голодування, здатність вижити в екстремальних умовах нестачі корму як характеристика пристосованості. Активність алкогольдегідрогенази у плодової мушки Drosophila melanogaster. Матеріали та методи, результати досліджень та їх обговорення.

    курсовая работа [63,0 K], добавлен 25.09.2009

  • Хромосомна теорія спадковості. Кросинговер та конверсія генів. Хромосомні типи визначення статі. Експериментальне дослідження особливостей успадкування мутацій "white" та "cut" (відповідно "білі очі" та "зрізані крила") у Drosophila melanogaster.

    дипломная работа [1,3 M], добавлен 30.11.2014

  • Механизмы регуляции экспрессии генов у прокариот и эукариот. Регуляция содержания РНК в процессе биосинтеза. Согласованная регуляция экспрессии прокариотических родственных генов. Репрессия триптофанового оперона. Суммарный эффект аттенуации и репрессии.

    лекция [24,2 K], добавлен 21.07.2009

  • Основные положения и этапы процесса экспрессии генов. Перенос информации о нуклеотидной последовательности ДНК на уровень РНК. Процессинг РНК у прокариот. Генетический код, его назначение и порядок формирования. Общие особенности процесса трансляции.

    курсовая работа [54,6 K], добавлен 27.07.2009

  • Сущность биотестирования и предъявляемые к его методам требования. Место биотестирования на молекулярно-генетическом уровне. Характеристика Drosophila melanogaster как модельного биологического объекта. Питательные среды для поддержания линий дрозофил.

    дипломная работа [498,4 K], добавлен 07.10.2016

  • Явление и значение атрофии гонад как признака гибридного дисгенеза. Экспериментальное установление изменчивости экспрессивности признака cubitus interruptus Dominant Drosophila melanogaster при индукции синдрома дисгенеза. Тест на атрофию гонад.

    курсовая работа [3,2 M], добавлен 01.11.2014

  • Инсерционный мутагенез как метод прямой и обратной генетики. Типы инсерционных мутагенов и их особенности. Использование инсерционного мутагенеза для инактивации генов на основе явления РНК-интерференции. Выделение генов, маркированных инсерцией.

    контрольная работа [1,3 M], добавлен 25.03.2016

  • Определение линии самца вида Drosophila melanogaster, которого "выберет" самка для скрещивания. Созревание яиц и продолжительность жизни мухи. Гаплоидный набор хромосом и число генов, которые определяют хорошо различимые признаки мухи дрозофилы.

    отчет по практике [18,6 K], добавлен 08.06.2011

Работы в архивах красиво оформлены согласно требованиям ВУЗов и содержат рисунки, диаграммы, формулы и т.д.
PPT, PPTX и PDF-файлы представлены только в архивах.
Рекомендуем скачать работу.