Изучение генетического разнообразия диплостом (Trematoda: Diplostomidae) – паразитов рыб и птиц

Особенности систематики и биологии трематод рода Diplostomum. Главные проблемы идентификации и таксономии диплостом. Геномная вариабельность рДНК трематод. Анализ филогенетических связей в группе диплостомид на основании последовательностей ITS и cox1.

Рубрика Биология и естествознание
Вид дипломная работа
Язык русский
Дата добавления 31.01.2018
Размер файла 2,0 M

Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже

Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.

Размещено на http://www.allbest.ru/

Изучение генетического разнообразия диплостом (Trematoda: Diplostomidae) - паразитов рыб и птиц

Оглавление

Глава 1. Обзор литературы

1.1 Биология рода Diplostomum

1.1.1 Особенности систематики и биологии трематод рода Diplostomum

1.1.2 Экология трематод рода Diplostomum

1.1.3 Проблемы идентификации и таксономии диплостом

1.2 Геномная вариабельность рДНК трематод

1.3 Геномная вариабельность митохондриальной ДНК трематод

Глава II. Материалы и методы исследования

2.1 Материалы

2.2 Методы

2.3 Статистическая обработка результатов

Глава 3. Результаты и обсуждения

3.1 Получение последовательностей участка баркода cox1 и ITS- кластера

3.2 Видовая идентификация диплостом

3.3 Анализ филогенетических связей в группе диплостомид на основании последовательностей ITS и cox1

Выводы

Список литературы

Приложение

Введение

На сегодняшний день одна из самых актуальных проблем в области молекулярной генетики является эволюционные преобразования высокомолекулярных структур клетки, таких как белки и нуклеиновые кислоты. Активная работа современных ученых в этой отрасли биологии привела к резкому увеличению числа фундаментальных исследований, которые направлены на определение механизмов и этапов молекулярной эволюции, а также на реконструкцию эволюционной истории генов различного таксономического ранга.

В настоящее время молекулярно-генетические исследования являются необходимым дополнением при изучении морфо-экологической дифференциации и филогении любых организмов. С этой точки зрения особый интерес представляют сложные биологические системы, состоящие из двух или нескольких коэволюционирующих организмов, например паразитов и их хозяев. Среди паразитических организмов одну из наиболее многочисленных групп составляют плоские черви - трематоды, или сосальщики (Trematoda), объединяющие более 18000 видов паразитов беспозвоночных и позвоночных животных [34]. Полиморфные ДНК-маркеры пригодны для видовой идентификации червей на всех стадиях сложного жизненного цикла, для изучения путей трансмиссии паразита, особенно при сравнении популяций из географически удаленных и/или разобщенных частей ареала. Существенную роль они играют при сравнении гостальной и тканевой специфичности, а также при изучении взаимодействия в системе паразит-хозяин и установления филогенетических взаимосвязей. Системы паразит-хозяин в высоких широтах являются перспективными модельными системами для выявления ускоренного изменения состояния окружающей среды [7]. Поэтому в последнее время для генетической дифференциации используют ядерные рибосомные маркеры и последовательности митохондриального гена cox1 (генетический «баркодинг»). Относительно недавно эти гены использованы для дифференциации видов и линий рода Diplostomum, обнаруженных в Северной Америке, Китае [9], Центральной и Северной Европе [7, 8, 10]. Однако популяции и изоляты диплостом Восточной Европы до сих пор остаются неизученными. В связи с этим была поставлена и цель данной работы.

Цель работы: Выявить и проанализировать генетическое разнообразие диплостом на территории республики Беларусь.

Для выполнения цели были поставлены следующие задачи:

1. Определить полные первичные последовательности ITS-кластера рДНК и баркодовые последовательности митохондриального гена cox1 изучаемых диплостомид.

2. Провести видовую идентификацию на основании сравнительного анализа полученных нуклеотидных последовательностей с последовательностями, ранее депонированными в GenBank.

3. Оценить видовое разнообразие диплостом на основе ITS-кластера рДНК и баркода cox1 мтДНК на разных стадиях жизненного цикла.

Глава 1. Обзор литературы

1.1 Биология рода Diplostomum

генетический диплостома паразит трематода

1.1.1 Особенности систематики и биологии трематод рода Diplostomum

Род Diplostomum относится к семейству Diplostomatidae (диплостомиды), который входит в класс Trematoda (Дигенетические сосальщики), тип Plathelminthes (Плоские черви).

По накопленным морфологическим данным род Diplostomum насчитывает от 20 до 40 видов, а по последним молекулярным - 35 видов и линий [7, 8, 33, 34, 36] .

Представители данного рода являются облигатными эндопаразитами со сложным триксенным жизненным циклом, который включает трех хозяев: промежуточных (брюхоногие моллюски), дополнительных (рыбы, круглоротые) и дефинитивных (рыбоядные птицы, амфибии, млекопитающие). При интенсивном заражении рыбы, метацеркарии вызывают заболевание - диплостомоз.

Жизненный цикл

К середине 80-х годов жизненные циклы были изучены полностью или частично только у 19 видов [5]. К началу 2000 года некоторые из них были дополнены, а у других видов, например, D. pungiti и D. pusillum до сих пор остаются не изученными до конца. Как уже было сказано, жизненный цикл трематод рода Diplostomum происходит по триксенному типу развития при участии нескольких хозяев. Наряду с этим происходит смена поколений личинок с чередованием бесполого и полового поколения. Схематично жизненный цикл диплостомид представлен на рисунке 1.

Рисунок 1. Схема жизненного цикла диплостомид

Мариты - половозрелые гермафродитные особи, паразитируют в кишечнике дефинитивного хозяина, продуцируя яйца, которые выделяются во внешнюю среду с экскрементами хозяина. В воде происходит эмбриональное развитие и формирование первой личиночной стадии - мирацидия. Мирацидий ведет свободный образ жизни, плавая в воде, она находит и проникает в первого промежуточного хозяина - пресноводного моллюска. В гепатопанкреасе моллюска мирацидий превращается в первичную спороцисту - личинку материнской спороцисты. Она представляет собой мешок, заполненный половыми продуктами. Размножаясь партеногенетически, материнская спороциста дает начало особям следующего партеногенетического поколения - дочерним спороцистам, которые активно растут и размножаются, заполняя всю «печень» моллюска. В дочерних спороцистах развиваются церкарии. Эти две стадии развития диплостом внутри моллюска называются партенитами.

Церкарии - вторая свободноживущая стадия развития трематод рода Diplostomum. Они покидают тело моллюска и выходят в воду. В этот период церкарии способны активно передвигаться, и могут переноситься током воды на значительные расстояния. Церкарии внедряются в тело второго промежуточного хозяина, которым обычно является рыба. Это может осуществляться пассивно при дыхании рыбы, оседая на жабрах, либо активно через покровы тела и плавников. В теле дополнительного хозяина личинка носит название метацеркарии.

Метацеркарии в теле рыб могут сохраняться длительное время - 2-3 года. Они отличаются от взрослых гельминтов только отсутствием развитой половой системы. Для того чтобы метацеркария достигла половой зрелости, она должна попасть в организм окончательного хозяина. В организме дефинитивного хозяина метацеркарии быстро (за несколько дней) превращаются во взрослую стадию паразита и начинают выделять яйца.

Таким образом, чередование гермафродитного и партеногенетических поколений в жизненном цикле диплостом, происходит также как у всех трематод. Личиночные стадии - мирацидий и церкария - осуществляют расселительную функцию паразита, а партеногенетические поколения во много раз увеличивают число потомков одного мирацидия. Способность к чередованию поколений: гермафродитного, представленного маритой и её личинками (церкариями и метацеркариями) и партеногенетического, представленного мирацидиями и спороцистами, относится к числу биологических особенностей паразитов всего класса Trematoda.

Вкратце рассмотрим отдельные стадии развития трематод рода Diplostomum в порядке их последовательной смены, начиная с мариты.

Марита. Марита обитает в кишечнике дефинитивного хозяина, роль которого выполняют рыбоядные птицы и некоторые млекопитающие, связанные с водной средой, которым свойственна хотя бы факультативная ихтиофагия.

Из птиц в этой роли зарегистрированы представители девяти отрядов, однако ведущее место среди них, несомненно, занимают ржанкообразные (Charadriiformes) и гусеобразные (Anseriformes). Половозрелые мариты поселяются в тонком кишечнике, причем одни виды (D. volvens, D. chromatophorum) предпочитают дуоденум и переднюю половину этого отдела, другие (D. indistinctum) - его центральную часть (вторую и третью четверти), третьи - заднюю половину (D. spathaceum), а D. pseudomergi поселяется в слепых отростках.

Рисунок 2. Марита Diplostomum sp. (ув. х100).

Марита достигает половой зрелости быстро, за 5-7 суток и живет в хозяине до месяца, редко больше. Несмотря на малый размер (не более 5 мм) и короткую матку, мариты продуцируют относительно большое количество яиц. Так, мариты D.chromatophorum продуцируют в сутки около 245 яиц, а их общая продуктивность определяется в 5 тысяч яиц [11, 12]. Яйца выделяются во внешнюю среду с экскрементами хозяина; их дальнейшее развитие возможно только в воде.

Яйцо. Во внешнюю среду яйца выделяются в несегментированном состоянии. В воде происходит эмбриональное развитие, которое завершается формированием и выходом из яйцевой скорлупы первой личиночной стадии - мирацидия. Продолжительность эмбрионального развития определяется главным образом температурой. Пороговые значения развития яиц укладываются в диапазоне температур от 7 до 45-50°С; оптимальная температура развития составляет 20-25°С. На всех этапах эмбриогенеза яйца очень чувствительны к воздействию минусовых температур и высушиванию, что приводит к их гибели. При низкой температуре воды яйца способны длительное время сохраняться, не развиваясь. Это позволяет им жить на дне водоема в течение всей зимы, при условии, если дно водоема не промерзает.

Мирацидий. Мирацидий - первая личиночная стадия в развитии диплостом, ведущая свободный образ жизни. С помощью ресничек эпителиальных пластин он плавает и, войдя в контакт с хозяином-моллюском, внедряется в него. Фото личинки Diplostomum spathaceum представлено на рисунке 3.

Рисунок 3. Мирацидий Diplostomum spathaceum (ув. x200)

В качестве первого промежуточного хозяина все виды рода Diplostomum (за одним исключением) используют брюхоногих моллюсков из семейства прудовиков (Lymnaeidae).

По форме, размерам и характеру движения мирацидий напоминает мелких инфузорий и, подобно последним, несомненно, потребляется как кормовой объект многими гидробионтами [13]. Особо узкой специфичности паразиты при этом не проявляют - один и тот же вид может использовать для своего развития 2-3 вида моллюсков. Единственное упомянутое выше исключение составляет вид Diplostomum petromyzifluviatilis. Личинки этих трематод внедряются и развиваются в переднежаберных моллюсках Bithynia tentaculata.

Срок жизни мирацидия в воде ограничивается несколькими часами, обычно не более шести; за это время он в состоянии преодолеть путь длиной до 10 м.

Партениты. Под этим названием объединяются две самостоятельные стадии развития - материнская и дочерние спороцисты. Внедрившийся в моллюска мирацидий претерпевает регрессивный метаморфоз: отбрасывает ресничный эпителий, утрачивает глаза и другие личиночные органы чувств и превращается в первичную спороцисту, которая является личинкой материнской спороцисты. Первичная спороциста мигрирует в околосердечную сумку моллюска и со временем превращается там в материнскую.

Рисунок 4. Дочерная спороциста Diplostomum phoxini.

Внутри нее формируются дочерние спороцисты, представленные на рисунке 4. По мере созревания они покидают материнскую особь и мигрируют в пищеварительную железу хозяина. Зрелые дочерние спороцисты обладают длинным червеобразным телом и размножаются партеногенетически. Со временем они практически полностью заполняют "печень" моллюска (гепатопанкреас). В дочерних спороцистах, развиваются церкарии, которые, достигнув зрелого состояния, выходят из неё, совершают миграцию по тканям хозяина и, наконец, покидают его.

Церкария. Церкария - вторая свободноживущая стадия развития трематод рода Diplostomum. Она выделяется из моллюска и ведет планктонный образ жизни. Церкариям свойствен положительный и отрицательный фотогеотаксисы. Поэтому в стоячей воде они держатся в поверхностных слоях, не погружаясь более чем на 40-50 см.

Рисунок 5. Церкария Diplostomum sp. (ув. x150).

К заднему концу тела личинки прикреплен вильчатый хвост, состоящий из хвостового стволика и двух расположенных на его свободном конце ветвей - фурок. С помощью изгибаний хвоста личинки активно и очень быстро плавают в толще воды. Для церкарий представленного рода характерно чередование периодов активного движения с периодами покоя, при этом принимают характерную для них «позу покоя». Личинка широко раздвигает фурки и пассивно парит на них в толще воды. При малейших возмущениях в окружающем пространстве, могущих служить сигналом о приближении потенциального хозяина, личинки возобновляют активное поисковое движение. Церкарии диплостом, также как и других трематод, эндотрофны - они существуют только за счет тех запасов питательных веществ, которые были накоплены ими в процессе развития в спороцистах. Это сильно ограничивает сроки их свободной жизни во внешней среде, которые в зависимости от температуры воды обычно не превышают 12-24 часов. Личинки, истощив свои энергетические ресурсы, погибают.

Для дальнейшего развития церкария должна войти в контакт с дополнительным хозяином и внедриться в него. Этот контакт может осуществляться пассивно при дыхании рыбы, когда церкарии оседают на жабрах, или активно через кожные покровы тела и плавники. Для этого на переднем конце располагается так называемый "передний орган" - мускульно-железистое образование, в котором располагаются протоки желез проникновения (двух пар крупных секреторных клеток).

Метацеркария. Вопреки широко распространенному мнению метацеркарии рода Diplostomum, как и других трематод, нельзя считать личиночной формой мариты. Это - ювенильная марита, у которой имеются все органы и системы взрослого паразита; и только некоторые из них недоразвиты.

Рисунок 6. Метацеркария Diplostomum sp. (ув. x150).

Первый этап паразитирования диплостом в дополнительном хозяине начинается с момента внедрения церкарии в хозяина и завершается ее миграцией. В этот момент трематода носит название диплостомула. Диплостомула - уже не церкария, поскольку не имеет хвоста, а средой её обитания является живой организм хозяина, но еще и не метацеркария, поскольку в морфологическом отношении она не отличается от церкарии, а средой ее обитания являются любые органы и ткани, кроме органа стационарного обитания метацеркарии (глаза, головной мозг). Достигнув окончательного места паразитирования в хозяине, она прекращает миграцию. Только с этого момента ее можно называть метацеркарией. Инвазионные метацеркарии впадают в состояние стадийного гипобиоза и характеризуются большой продолжительностью жизни. В отдельных случаях срок их жизни может превышать срок жизни своих хозяев, в связи с чем на протяжении всего периода жизни хозяина наблюдается непрерывный процесс увеличения его зараженности. Стимулом к дальнейшему развитию метацеркарий служит их попадание в организм дефинитивного хозяина, где они заканчивают развитие и превращаются в половозрелую мариту.

1.1.2 Экология трематод рода Diplostomum

Широкое географическое распространение, а также богатство и видовое разнообразие трематод, в том числе и рода Diplostomum, обусловлено сложным гетероксенным жизненным циклом, включающим в себя несколько хозяев. Прежде всего, это связано с обилием первых промежуточных хозяев - моллюсков. Чаще всего они встречаются в мелководных хорошо прогреваемых участках водоемов с обильными зарастаниями мелколиственными водными растениями (роголистник, элодея, хара, рдесты и др.). Так как церкария эндотрофна и ее "свободная жизнь" в воде, в зависимости от температуры водоема сильно ограничена, она зачастую проникает в рыбу со сходными условиями обитания первых хозяев [14].

На стадии метацеркарии большинство из известных диплостом паразитируют в глазах, реже в мозге рыб и круглоротых. Головной мозг используется метацеркариями представленного рода крайне редко. В нем на сегодня зарегистрировано всего шесть видов, причем почти все они обладают узкой гостальной специфичностью [2, 3, 5]. В некоторых источниках помимо указанных мест, они могут локализоваться и на поверхности внутренних органов, в мускулатуре и под кожей рыб [2]. Питаются хрусталиковыми волокнами или продуктами их лизиса, другие - пигментным слоем ретины. А.А. Шигин (1996) обозначает глаз как местообитание паразитов термином «гостальный биотоп», выделяя в нем шесть эндостаций (микрониши); диплостомиды занимают четыре из них - хрусталик, жидкие среды, внутренние оболочки, стекловидное тело глаза.

Локализация именно в этих местах не случайна. В ряде экспериментов было показано, что манипулирование поведением рыбы ведет к повышению доступности её хищникам, которые служат паразиту дефинитивным хозяином. Воздействие возбудителей диплостомозов направлено главным образом на изменение реакций хозяина на искаженное восприятие внешних раздражителей, то есть на изменение стереотипа его поведения. На примере трематоды D. spathaceum, метацеркарии которой развиваются в хрусталике глаза рыбы, показано, что вызванные паразитом модификации защитного поведения не только точно синхронизированы с развитием паразита, но и происходят по-разному в разных биотопах. У молоди лососевых рыб, обитающей в толще воды, нарушается комплекс стайного оборонительного поведения; у тех же рыб, ведущих территориальный образ жизни на мелководных участках, нарушается индивидуальное оборонительное поведение, связанное с использованием убежищ [15].

Особенности топической приуроченности, трофических связей, экологии и миграции птиц, играют важную роль в реализации жизненных циклов диплостом, а также расширению границ их естественного ареала. В зависимости от типа питания птиц варьирует и разнообразие паразитов в одной особи.

Наибольшим разнообразием трематодофауны характеризуются семейства Утиных и Чайковых, так как, многие из них являются полифагами (кряква, серебристая чайка). В то время как ихтиофаги имеют более специфичную фауну паразитов (крохаль, клуша). Число видов диплостом, приуроченных к остальным семействам водоплавающих птиц, гораздо меньше. Наиболее узкоспецифичную фауну трематод имеют Пастушковые, что связано с особенностями их рациона питания.

Широкий межпопуляционный обмен и обширные территориальные связи птиц могут иметь решающее значение для формирования современного облика фауны рода Diplostomum [16].

1.1.3 Проблемы идентификации и таксономии диплостом

На протяжении всего времени изучения трематод рода Diplostomum одна из главных проблем являлась видовая идентификация паразита. К началу 60-х годов возбудителем всех диплостомозов пресноводных рыб России и сопредельных государств считался один вид - D. spathaceum, тогда как у рыбоядных птиц этой же фауны к тому времени было зарегистрировано 13 видов этого рода [17]. Систематика диплостом и сегодня находится в спорном положении по нескольким причинам: представители данного рода обладают высокой морфологической пластичностью, что затрудняет идентификацию на всех стадиях жизненного цикла, а также вследствие того факта, что стадии жизненного цикла изучались и классифицировались изолированно и обособленно друг от друга [18]. Зачастую, большинство исследователей при паразитологическом обследовании рыб и птиц указывают локализацию паразита предельно упрощенно: «хрусталик», «стекловидное тело глаза», «тонкий кишечник». В таблице 1 (приложение) собраны морфологические данные из шести источников, охватывающие период с 1986 года по 2013 год. Трудности в классификации и идентификации диплостом не раз приводила к биологическому парадоксу: количество зарегистрированных и описанных паразитов рода Diplostomum у водно-болотных птиц значительно превышает число видов в промежуточных хозяевах: рыбах и моллюсках. Так, по последним данным из Чехии и Словакии соотношение видов диплостом в рыбоядных птицах, рыбах и моллюсках составляет 9:3:2 [19, 20, 21, 22]. Эти показатели свидетельствуют о том, что и хозяин, и пространственное распространение D. spathaceum были завышены (50 видов хозяев), и что большую часть видов, вероятно, пропустили из-за невозможности идентифицировать или ошибки [19]. В научно-исследовательской литературе по изучению зараженности организмов паразитами представители рода Diplostomum до сих пор указываются как Diplostomum sp. и до вида не определяются. Сложности идентификации и видовой классификации церкарий и метацеркарий являются серьезными препятствием для оценки разнообразия видов диплостом, фактической роли в популяциях рыб, а также для экологического мониторинга, для углубления знаний биологии паразита и эволюционных аспектов отношений паразит-хозяин изучаемого рода [8].

1.2 Геномная вариабельность рДНК трематод

В геноме трематод, как и у всех эукариот, имеется кластер рибосомной ДНК (рДНК), представляющий собой многократно тандемно повторенные транскрипционные единицы (опероны), которые разделяются межгенными спейсерами (NTS). Каждый оперон состоит из генов рибосомных РНК (18S, 5.8S, и 28S), внутренних (ITS1, ITS2) и внешних (ETS) транскрибируемых спейсеров, которые транскрибируются вместе и затем расщепляются на отдельные молекулы [23]. Молекулы рРНК, кодируемые 18S, 5.8S и 28S генами, становятся структурными частями рибосом. Эти гены высоко консервативны и универсальны, то есть имеются у всех таксономических групп. Последовательности 18S, 5.8S и 28S рДНК позволяют проводить филогенетические сравнения на разных таксономических уровнях, включая представителей разных царств. Считается, что различия между этими генами прямо пропорциональны филогенетическим расстояниям, степени эволюционного родства [23].

По сравнению с этими генами, транскрибируемые спейсеры ITS1 и ITS2 значительно более вариабельны, так как их транскрипты вырезаются из рРНК и не участвуют в образовании рибосомы. Нуклеотидные последовательности ITS полезны для таксономических сравнений близко родственных видов и родов.

Анализ многочисленных данных по секвенированию рДНК трематод выявил различия в длине и структуре ITS1 и ITS2, что редко позволяет выровнять эти последовательности на уровне семейств и более высоких таксонов [23]. В особенности это касается ITS1, для которого нередко наблюдается внутривидовая и даже индивидуальная изменчивость. Последовательности ITS1 содержат различные повторы, вероятные промоторные сайты, горячие точки рекомбинации. Использование более консервативного 3`-конца ITS1 вполне возможно для оценки филогенетических связей даже крупных таксонов [23]. В то же время, два вида D. spathaceum и D. parviventosum, между которыми существуют четкие морфологические отличия на всех основных стадиях жизненного цикла, имели идентичные последовательности ITS1 рДНК [24]. И наоборот, два криптических вида из группы Trichobilharzia franki имели одинаковые последовательности ITS2 и отличались по другим локусам (ITS1 рДНК, cox1).

Внутривидовая изменчивость ITS2 мала или вообще отсутствует у большинства изученных трематод. Так, для представителей рода Ichthyocotylurus внутривидовая изменчивость ITS2 составляет всего лишь 1.0%, в то же время межвидовая достигает 5.4% [25].

Таким образом, последовательности кластера ITS позволяют достаточно надежно идентифицировать и дифференцировать близкородственные и некоторые криптические виды организмов, в частности, трематод, а также выявлять между ними филогенетические связи.

1.3 Геномная вариабельность митохондриальной ДНК трематод

На сегодняшний день без молекулярно-генетических методов практически невозможно представить дальнейшее развитие таких областей знания, как систематика, популяционная экология, филогенетика. При этом особенно популярным становится анализ изменчивости митохондриальной ДНК (мтДНК). В отличие от ядерной ДНК, у мтДНК передача информации осуществляется от предка к потомку только по материнской линии, нет интронов, большое количество копий и минимальный уровень рекомбинации. Она обладает высокой скоростью эволюции и значительным внутривидовым полиморфизмом, а также селективно нейтральной или почти нейтральной природой мутаций [26].

Митохондриальная ДНК эукариотических организмов сильно варьирует по размеру и генному составу. У животных она почти всегда представлена кольцевой молекулой и составляет в среднем 15-20 тыс. пар нуклеотидов [23]. Размер митохондриального генома трематод составляет 13,5-16,9 тыс п.н. [27].

Молекулярно-генетические маркёры используются для установления филогенетических взаимоотношений между разными таксонами трематод и плоских червей вообще. Помимо молекулярной филогении, ядерные и митохондриальные маркёры используются и для видовой идентификации. Что касается митохондриальных маркёров, то из-за высокой скорости эволюции генома митохондрий по сравнению с ядерным (примерно в 5-10 раз), филогенетический анализ их последовательностей подходит в большей степени для относительно недавно дивергировавших таксонов [28]. И по ряду причин лучшим кандидатом является участок баркода cox1. Cox1 плоских червей имеет более высокую изменчивость по сравнению с ITS- регионом и может быть использован как более удобный маркер для детекции видов [29]. Область баркода (первые 650 пар нуклеотидов гена cox1) как было доказано, подходит для идентификации большого набора таксонов животных и для выявления разнообразия криптических видов [30]. Специфичные для диплостомид праймеры, фланкирующие область баркода cox1 были разработаны недавно и используются для создания большой библиотеки баркода для североамериканских диплостом [31]. Результаты этих первых молекулярных исследований метацеркарий из рыб в реке Св. Лаврентия (Канада) выявили гораздо более высокое видовое разнообразие, чем предполагалось ранее только при морфологическом определении [32, 33]. Такие же результаты были получены в Исландии: собранные образцы из трех озер, после проведенной молекулярно-генетической идентификации увеличили видовое богатство на 200% [7]. Но контраст нехватки данных при сравнении исследований в Северной Америке и Европе сохраняется, что затрудняет крупномасштабный скрининг естественных диплостомных инфекций в промежуточных хозяевах [8].

Использование маркеров мтДНК коренным образом меняет ранг операционной таксономической единицы, в отличие от традиционной систематики, где таковой является вид, и от популяционной биологии, оперирующей с популяциями, в филогеографии сравнимое значение приобретает уже особь.

Глава II. Материалы и методы исследования

2.1 Материалы

Все образцы диплостомид (изоляты), представленные в работе, были нами собраны в 2015 году, а также любезно предоставлены Акимовой Н. С., научным сотрудником ГНПО «Научно-практический центр Национальной Академии Наук Беларуси по биоресурсам» (г. Минск). Паразиты были извлечены из тела моллюсков и глаз рыб нескольких видов, широко распространенной на территории Евразии.

Сбор моллюсков и рыб проводили на территории Национального парка «Нарочанский» (Республика Беларусь) - на озере Нарочь.

Сбор моллюсков осуществлялся при помощи модифицированного бентосного сачка на металлической раме диаметром 300 мм, с размером ячеек сетки около 1 мм, либо вручную. Моллюски собирались из прибрежной зоны водоема, на расстоянии до 3-20 м от берега, в зонах обитания моллюсков: неглубоких, сильно заросших участках (до 1 м глубиной).

Собранных моллюсков по одному раскладывали в чашки Петри, наполненные фильтрованной озерной водой, и определяли их видовой состав. Через 3 часа воду из чашек Петри анализировали под микроскопом при увеличении в 32 раза на наличие в ней личинок различных трематод, которые после подвергались морфологической идентификации. Зараженных диплостомами моллюсков вскрывали, отделяли пораженный партенитами гепатопанкреас и фиксировали небольшие его фрагменты в 1,5 мл пробирках двумя разными способами - в 0.05М ЭДТА (pH=8,0) и 70% этиловом спирте. Фиксированный материал хранили при +4 оС или -20 оС.

Данные по географической и гостальной приуроченности исследованных церкариальных изолятов представлены в таблице 2.

Таблица 2. Характеристика исследованных диплостомидных изолятов

Вид изолята

Хозяин

Местонахождение

Церкарии Dipal15_1 Dipal15_2 Dipal15_3 Distal5_1 Distal5_2 Diplo_sp1 Diplo_sp2 Diplo_sp3 Diplo_sp4 Diplo_sp5 Diplo_sp6 Diplo_sp20 Diplo_sp23 Всего 13 Метацеркарии D_sp7.1

D_sp7.2 D_sp8 D_sp24.1 D_sp24.2 D_sp25.1 D_sp25.2 D_sp26.1 D_sp26.2 D_sp29 D_sp31.1 D_sp31.2 D_sp35.1 D_sp35.2 D_sp37.1 D_sp37.2 D_sp38.1 D_sp38.2

Lymnaeae palustris

L.palustris (Прудовик болотный) L.palustris (Прудовик болотный) L.stagnalis (Большой прудовик) L.stagnalis (Большой прудовик) R.ampla (Прудовик ушковый) R.ampla (Прудовик ушковый) R.ampla (Прудовик ушковый) R.ampla (Прудовик ушковый) R.auricularia (Ушастый прудовик) R.ampla (Прудовик ушковый) R.auricularia (Ушастый прудовик) R.auricularia (Ушастый прудовик)

G. aculeatus (Трёхиглая колюшка)

G. aculeatus (Трёхиглая колюшка)

A. alburnus (Уклейка)

Ch. nasus (Обыкновенный подуст)

Ch. nasus (Обыкновенный подуст)

A. brama (Лещ)

A. brama (Лещ)

A. alburnus (Уклейка)

A. alburnus (Уклейка)

N. fluviatilis (Бычок - песчаник)

R. rutilus (Плотва)

R. rutilus (Плотва)

L. idus (Язь)

L. idus (Язь)

L. leuciscus (Елец)

L. leuciscus (Елец)

A. ballerus (Синец)

A. ballerus (Синец)

оз. Нарочь (Степенево) оз. Нарочь

оз. Нарочь оз. Нарочь оз. Нарочь оз. Нарочь оз. Нарочь оз. Нарочь оз. Нарочь

оз. Большие Швакшты оз. Нарочь

водохр. Дрозды (Минск) водохр. Дрозды

оз. Нарочь оз. Нарочь оз. Нарочь р. Припять р. Припять р. Припять р. Припять р. Припять р. Припять р. Припять р. Припять р. Припять р. Припять р. Припять р. Припять р. Припять р. Припять р. Припять

Всего 18

L. canus (Сизая чайка)

р. Припять

Мариты

Dm_sp5.10

D.m_sp3.12

L. canus (Сизая чайка)

р. Припять

D.m_sp4.12

L. canus (Сизая чайка)

р. Припять

D.m_sp5.12

L. canus (Сизая чайка)

р. Припять

D.m_sp6.13

L. canus (Сизая чайка)

р. Припять

D.m_sp7.13

L. canus (Сизая чайка)

р. Припять

D.m_sp8.13

L. canus (Сизая чайка)

р. Припять

D.m_sp9.13

L. canus (Сизая чайка)

р. Припять

D.m_sp11.13

L. canus (Сизая чайка)

р. Припять

D.m_sp8.17

L. ridibundus (Озерная чайка)

р. Припять

D.m_sp9.17

L. ridibundus (Озерная чайка)

р. Припять

D.m_sp10.17

L. ridibundus (Озерная чайка)

р. Припять

D.m_sp15.18

A. platyrhynchos (Кряква)

р. Припять

Всего 13

Таблица 3. Нуклеотидные последовательности cox1 диплостомид из GenBank.

Вид, номер

Локализация

Локально сть

Стадия

1

D. baeri JX986859

Стекловидное тело (Gobio gobio)

Германия

Метацеркария

2

D. baeri JX986871

Стекловидное тело (Salmo trutta fario)

Германия

Метацеркария

3

D. baeri JX986866

Стекловидное тело (Salmo trutta fario)

Германия

Метацеркария

4

D. baeri JX986867

Стекловидное тело (Salmo trutta fario)

Германия

Метацеркария

5

D. sp. LIN5 KJ726485

Сетчатка (Salmo trutta fario)

Исландия

Метацеркария

6

D. sp. LIN5 KJ726495

Сетчатка (Salmo trutta fario)

Исландия

Метацеркария

7

D. sp. LIN5 KJ726492

Сетчатка (Salmo trutta fario)

Исландия

Метацеркария

8

D. baeri JQ639190

Стекловидное тело (Perca fluviatilis)

Германия

Метацеркария

9

D. sp. LIN4 KJ726482

Мозг (Gasterosteus aculeatus)

Исландия

Метацеркария

10

D. sp. LIN4 KJ726481

Сетчатка (Gasterosteus aculeatus)

Исландия

Метацеркария

11

D. spathaceum JX986887

Larus cachinnans

Чехия

Марита

12

D. spathaceum KR269763

Larus ridibundus

Чехия

Марита

13

D. pseudospathaceum

JX986897

Lymnaea stagnalis

Германия

Церкария

14

D. pseudospathaceum

KR271088

Германия

15

D. pseudospathaceum

JX986907

Lymnaea stagnalis

Германия

Церкария

16

D. mergi KR149523

Radix auricularia

Германия

Церкария

17

D. mergi JX986875

Radix auricularia

Германия

Церкария

18

D. mergi JX986877

Хрусталик (Gobio gobio)

Германия

Метацеркария

19

D. mergi JX986881

Хрусталик (Salmo trutta fario)

Германия

Метацеркария

20

D. mergi JX986873

Radix auricularia

Германия

Церкария

21

D. parviventosum

KR149508

Radix auricularia

Германия

Церкария

22

D. parviventosum

KR149509

Radix auricularia

Германия

Церкария

23

D. sp. LIN6 KM212048

Норвегия

24

D. sp. LIN6 KM212035

Норвегия

25

D. sp. LIN6 KJ726496

Сетчатка (Gasterosteus aculeatus)

Исландия

Метацеркария

26

D. sp. LIN6 KJ726505

Radix peregra

Исландия

Церкария

27

D. sp. LIN2 KJ726451

Хрусталик (Salmo trutta fario)

Исландия

Метацеркария

28

D. sp. LIN2 KJ726459

Хрусталик (Gasterosteus aculeatus)

Исландия

Метацеркария

29

D. sp. LIN2 KJ726460

Хрусталик (Gasterosteus aculeatus)

Исландия

Метацеркария

30

D. huronense KR271075

Канада

31

D. huronense FJ477197

Канада

32

D. indistinctum FJ477196

Канада

33

D. indistinctum KT831379

(Stagnicola elodes)

Канада

Церкария

34

D. indistinctum

HM064673

(Catostomus commersoni)

Канада

Метацеркария

35

Tylodelphys clavata

JX986908

Radix auricularia

Германия

Церкария

36

Tylodelphys sp. KF809488

Кения

37

Tylodelphys excavata KC685344

Planorbarius corneus

Чехия

Церкария

Таблица 3.1 Нуклеотидные последовательности ITS диплостомид из GenBank

Вид, номер

Локализация

Локально сть

Стадия

1

D. spathaceum JX986847

Larus argentatus

Польша

Марита

2

D. spathaceum JX986846

Radix auricularia

Германия

Церкария

3

D. paracaudum JQ665457

Coregonus lavaretus

Германия

Метацеркария

4

D. pseudospathaceum

JX494232

Radix balthica

Германия

Церкария

5

D. pseudospathaceum

JX986849

Larus cachinnans

Чехия

Марита

6

D. sp. LIN6 KJ726538

Radix peregra

Исландия

Церкария

7

D. sp. LIN6 KJ726537

Radix peregra

Исландия

Церкария

8

D. sp. LIN6 KJ726535

Стекловидное тело (Gasterosteus aculeatus)

Исландия

Метацеркария

9

D. sp. LIN2 KJ726512

Хрусталик (Salmo trutta fario)

Исландия

Метацеркария

10

D. sp. LIN2 KJ726510

Хрусталик (Salmo trutta fario)

Исландия

Метацеркария

11

D. mergi JX494231

Radix balthica

Германия

Церкария

12

D. mergi JX494233

Radix balthica

Германия

Церкария

13

D. mergi JX986838

Radix auricularia

Германия

Церкария

14

D. parviventosum

KR149492

Radix auricularia

Германия

Церкария

15

D. parviventosum

KR149490

Radix auricularia

Германия

Церкария

16

D. mergi JQ665458

Radix auricularia

Германия

Церкария

17

D. sp. LIN4 KJ726527

Мозг (Gasterosteus aculeatus)

Исландия

Метацеркария

18

D. baeri JQ665460

Стекловидное тело (Perca fluviatilis)

Германия

Метацеркария

19

D. baeri JX986837

Стекловидное тело (Salmo trutta fario)

Германия

Метацеркария

20

D. sp. LIN3 KJ726520

Стекловидное тело (Salmo trutta fario)

Исландия

Метацеркария

21

D. sp. LIN5 KJ726529

Сетчатка (Salmo trutta fario)

Исландия

Метацеркария

22

D. indistinctum GQ292508

Catostomus commersoni lens

Канада

Метацеркария

23

D. huronense GQ292507

Catostomus commersoni lens

Канада

Метацеркария

2.2 Методы

Выделение ДНК из церкарий и метацеркарий

Выделение ДНК с использованием суспензии ионообменной смолы Chelex-100 (5%) и протеиназы K

1. Церкарии и метацеркарии отмывали от спирта бидистиллированной деионизованной водой под бинокуляром.

2. Затем переносили их в 0,5 мл пробирки, содержащие 5% суспензию Chelex-100 и протеиназу К (0,1 мг/мл).

3. В каждую пробирку добавляли по 20 мкл минерального масла для предотвращения испарения с поверхности раствора и центрифугировали в течение 15 с (5000об\мин).

4. Выделение ДНК осуществляли в термоциклере «Терцик» (ДНК- Технология, Россия) при температуре 50оС в течение 30 мин.

5. ДНК хранили при -20оС.

Выделение ДНК с использованием набора QIAamp DNA micro Kit (QIAGEN, Germany) для марит

Выделение ДНК осуществляли согласно методике производителя с собственными модификациями.

1. Мариты под бинокуляром отмывали от спирта и переносили в 1,5 мл микроцентрифужную пробирку «Эппендорф».

2. Добавляли к образцу 90 мкл буфера ATL и инкубировали при комнатной температуре.

3. Добавляли 10 мкл протеиназы К и вортексировали 15 сек.

4. Пробирки инкубировали в течение 3 часов при температуре 60оС до полного лизиса образца.

5. Добавляли 100 мкл буфера AL и вортексировали в течение 15 сек до получения гомогенной массы.

6. Добавляли 100 мкл этанола (96%) и вортексировали 15 сек. Инкубировали 5 мин при комнатной температуре (15-20оС).

7. Аккуратно переносили чистый лизат на колонку и центрифугировали в течение 1 мин при 8000 об/мин. Колонку помещали в чистую 2 мл пробирку.

8. На колонку наносили 500 мкл буфера AW1 и центрифугировали содержимое пробирки 1 мин при 8000 об/мин. Колонку помещали в чистую 2 мл пробирку.

9. На колонку наносили 500 мкл буфера AW2 и центрифугировали содержимое пробирки 1 мин при 8000 об/мин. Колонку помещали в чистую 2 мл пробирку.

10. Центрифугировали содержимое пробирки для полной очистки фильтра колонки от жидкости, 3 мин при 14000 об/мин. Колонку помещали в чистую 1,5 мл микроцентрифужную пробирку.

11. На колонку наносили 50 мкл деионизованной бидистиллированной воды и инкубировали образец при комнатной температуре в течение 5 мин.

12. Центрифугировали содержимое пробирки в течение 1 мин при 14000 об/мин.

14. ДНК хранили при -20оС.

Амплификация cox1 и ITS-кластера

Рисунок 7. Структура кластера ITS рибосомного оперона с указанием места отжига праймеров.

Полимеразную цепную реакцию для ITS проводили с использованием локус-специфичных праймеров ITS5Trem и S2, для cox1 использовали праймеры Dcox-F и Dcox-R. Структура праймеров представлена в таблице 3.

Рисунок 8. Фрагмент мтДНК с локализацией гена cox1 и указанием места отжига праймеров

Таблица 4. Нуклеотидный состав локус-специфичных праймеров, использованных в ПЦР и для секвенирования

Локус

Обозначение

Структура (5'>3')

ITS1

ITS5Trem (F)

GGAAGTAAAAGTCGTAACAAGG

ITSETrem (R)

GATCCACCGCTCAAAGTT

ITS2

S1 (F)

TGTGTCGATGAAGAGCGCAG

S2 (R)

TGGTTAGTTTCTTTTCCTCCGC

pGEM-T Easy Vector

T7

TAATACGACTCACTATAGGG

SP6

TATTTAGGTGACACTATAG

cox1

Dcox-F

CGTTTRAATTATACGGATCC

Dcox-R

AGCATAGTAATMGCAGCAGC

Для амплификации использовали наборы реагентов GenPak PCR Core: обычный (с Taq ДНК полимеразой) и Long (с Pfu полимеразой).

1. Добавляли в каждую пробирку по 5 мкл смеси праймеров (1 о.е./мл).

2. Добавляли во все пробирки по 10 мкл ПЦР растворителя.

3. Добавляли в соответствующие пробирки по 5 мкл исследуемой ДНК.

4. Добавляли во все пробирки по 20 мкл масла.

5. Перенесли пробирки в термоблок программируемого термостата. Амплификацию ДНК проводили в термоциклерах «MJ Research» (USA) и «Терцик» (ДНК-Технология, Россия) на программе «ITS» (Таблица 4).

Таблица 5. Температурные и временные режимы PCR-реакции

Программа

Название этапа PCR

Температура (оС), количество циклов

Время

«ITS»

Предварительная денатурация

95

5 мин

Денатурация

95

30 циклов

1 мин

Отжиг

50

45 с

Элонгация

72

2 мин

Достройка цепей

72

10 мин

Электрофоретическое разделение продуктов

Продукты амплификации подвергались электрофоретическому разделению в 1,5% агарозном геле толщиной 7-10 мм, содержащем бромистый этидий. В качестве маркеров молекулярного веса использовали 100 bp Ladder (Fermentas). Гель-электрофорез проводился в горизонтальной камере, заполненной 1x трис-боратным буфером с рН 7,5-7,8 (0,089М Трис, 0,089М борная кислота и 0,002М ЭДТА). Вхождение ДНК в гель осуществляли при 20V в течение 10 минут, далее электрофорез вели при 80V.

Визуализация результатов осуществлялась на трансиллюминаторе (Chemical Company SIGMA 2202) с последующим фотографированием результатов с использованием BioDoc Analyse System (Biometra, USA).

Элюирование ДНК из геля

ПЦР-продукты элюировали из агарозного геля с использованием набора реагентов Wizard SV Gel and PCR Clean-Up System (Promega, USA).

1. Взвешивали пустую пробирку для последующего определения массы блока геля.

2. Вырезали блок геля с нужным ПЦР-продуктом, помещали в пробирку и взвешивали.

3. Добавляли Mem Bind Solution из расчета 1 мкл на 1 мкг веса.

4. Вортексировали 15 с и инкубировали 15 мин при 60оС до полного растворения геля.

5. Полученный раствор переносили на собранную SV колонку и центрифугировали 1 мин при 16000 об/мин.

6. Добавляли 500 мкл Mem Wash Solution и центрифугировали 1 мин при 14000 об/мин. Слить жидкость из сливной пробирки и вернуть колонку.

7. Добавляли 500 мкл Mem Wash Solution и центрифугировали 1 мин при 14000 об/мин. Слить жидкость из сливной пробирки и вернуть колонку.

8. Центрифугировали 1 мин при 14000 об/мин, чтобы высушить мембрану.

9. Переносили SV колонку в чистую 1,5 мл микроцентрифужную пробирку и добавляли 30-40 мкл (в зависимости от объема ПЦР-продукта) деионизованную бидистиллированную воду.

10. Инкубировали 3 минуты при комнатной температуре (15-20оС).

11. Центрифугировали 1 мин при 16000 об/мин.

12. Элюаты хранили при -20єС.

Клонирование.

Амплифицированные фрагменты исследуемых локусов клонировали с использованием набора pGEM®-T Easy Vector System (Promega, USA) согласно рекомендациям производителя.

Рисунок 7. Структура вектора для клонирования - плазмиды pGEM®-T Easy

Полученными лигатами трансформировали компетентные клетки E. coli линии JM 109 (Promega, USA). Трансформанты высевали на LB-агар, содержащий ампициллин (50 нг/мл), X-gal (50 мг/мл) и IPTG (100 мМ). Чашки инкубировали 16 часов при 37єC. Скрининг белых колоний проводили с использованием плазмидных праймеров T7 и SP6. В качестве матрицы использовали супернатант, полученный кипячением небольшого количества клеток отдельных колоний. Клоны, несущие рекомбинантные плазмиды, подращивали в LB среде с ампициллином.

Плазмидную ДНК выделяли с помощью набора GeneJET™ Plasmid Miniprep Kit (Fermentas, Lithuania) из 1.0 мл ночной культуры E. coli согласно следующему протоколу:

1. Ресуспендировать осажденные клетки в 250 мкл раствора для ресуспендирования бактериальных клеток, содержащем рибонуклеазу А. Перенести клеточную суспензию в пробирку для микроцентрифугирования.

2. Добавить к клеточной суспензии 250 мкл раствора для щелочного лизиса клеток и перемешать, переворачивая пробирку 4-6 раз.

3. Добавить к клеточному лизату 350 мкл раствора для нейтрализации, немедленно тщательно перемешать, переворачивая пробирку 4-6 раз.

4. Центрифугировать смесь 5 мин для осаждения клеточного дебриса и хромосомной ДНК.

5. Нанести полученный раствор на мембрану спин-колонки GeneJET™.

6. Центрифугировать 1 мин. Удалить прошедший через мембрану раствор из пробирки и поместить спин-колонку в ту же пробирку.

7. 500 мкл раствора для промывки плазмидной ДНК, адсорбированной на мембране нанести на мембрану спин-колонки GeneJET™. Центрифугировать 30-60 с, удалить раствор, прошедший через мембрану. Поместить спин- колонку в ту же пробирку.

8. Повторить процедуру промывки (пункт 7).

9. Удалить раствор, прошедший через мембрану. Центрифугировать спин- колонку еще 1 мин, чтобы удалить раствор для промывки плазмидной ДНК.

10. Перенести микроколонку GeneJET™ в чистую пробирку на 1,5 мл. Нанести 30 мкл буфера для элюирования плазмидной ДНК в центр мембраны. Выдержать 2 мин и центрифугировать 2 мин.

11. Удалить спин-колонку и хранить плазмидную ДНК при -20°С.

Секвенирование.

Для прямого секвенирования ПЦР-продуктов использовали амплификационные праймеры ITS5Trem и S2, а при необходимости - внутренние праймеры ITSETrem и S1 (табл. 4). Секвенирование ДНК осуществляли с помощью набора реактивов ABI PRISM??BigDye? Terminator v.3.1 с последующим анализом на автоматическом 4-х капиллярном секвенаторе ДНК ABI Prism 3100-Avant Genetic Analyzer. Секвенирование проводили в Межинститутском Центре коллективного пользования «ГЕНОМ» Института молекулярной биологии РАН (http://www.genome-centre.narod.ru/).

2.3 Статистическая обработка результатов

Выравнивание нуклеотидных последовательностей проводили вручную. Поиск нуклеотидных гомологий в базе данных NCBI осуществляли с использованием алгоритма blastn (http://www.ncbi.nlm.nih.gov). Выбор эволюционной модели нуклеотидных замен (программа Modeltest) и реконструкцию филогенетического дерева методом генетических дистанций («ближайшего соседа», Neighbor-Joining, NJ) на основании нуклеотидных замен в сайтах, вариабельных в пределах изученной выборки, выполняли с использованием пакета программ MEGA ver. 6 (Kumar et al, 2013). Надёжность ветвления оценивалась на основании расчётного индекса бутстрепа (1000 реплик).

Глава 3. Результаты и обсуждения

3.1 Получение последовательностей участка баркода cox1 и ITS- кластера

В ходе проведенной работы, по всем 44 изолятам, в частности из 13 церкарий, 18 метацеркарий и 13 марит были получены и определены первичные последовательности участка баркода cox1. Данные по видовой идентификации всех образцов приведены в таблице 6.

Таблица 6. Видовая идентификация диплостом по участку баркода cox1

Вид

Изолят

Количество

Хозяин

1

D. mergi 2

Церкарии Diplo_sp6 Метацеркарии

Diplo_sp8 D_sp25.1

1

2

У=3

Radix ampla

Gasterosteus aculeatus Abramis brama

2

D. pseudospathaceum

Церкарии Dipal15_1 Dipal15_2

Dipal15_3

Distal5_1 Метацеркарии D_sp7.2 D_sp26.2 D_sp29

D_sp31.1 D_sp31.2 D_sp35.1 D_sp35.2 D_sp37.1 D_sp37.2 D_sp38.2

Мариты Dm_sp5.10 D.m_sp6.13

D.m_sp7.13

D.m_sp8.13 D.m_sp9.13 D.m_sp11.13

4

Lymnaea palustris

L. palustris

L. palustris

L. stagnalis

G. aculeatus

Аlburnus alburnus

Neogobius fluviatilis

Rutilus rutilus

10

R. rutilus

Leuciscus idus

L. idus

L. leuciscus

L. leuciscus

Abramis ballerus

Larus canus

6

L. canus

L. canus

L. canus

L. canus

L. canus

У=20

3

D.spathaceum

Церкарии Diplo_sp5 Diplo_sp20

Diplo_sp23

Метацеркарии D_sp24.1 D_sp25.2

D_sp38.1

D_sp38.2

Мариты D.m_sp3.12 D.m_sp4.12

D.m_sp8.17 D.m_sp9.17 D.m_sp10.17 D.m_sp15.18

3

R.auricularia

R.auricularia

R.auricularia

4

Chondrostoma nasus

A. brama

A. ballerus

A. ballerus

L. canus

6

L. canus

L. ridibundus

L. ridibundus

L. ridibundus

У=13

Anas platyrhynchos

4

D. sp LIN2

Метацеркарии D_sp25.1 D_sp26.1

2

У=2

A. brama

A. alburnus

5

D. sp LIN4

Церкарии Diplo_sp1 Diplo_sp2

Diplo_sp3

Diplo_sp4

Мариты D.m_sp5.12

4

R. ampla

R. ampla

R. ampla

R. ampla

1

L. canus

У=5

6

D. sp LIN6

Метацеркарии

2

G. aculeatus

D_sp7.1

Мариты

D.m_sp9.13

1

L. canus

У=3

Для 14 изолятов, среди которых 10 церкарий, 3 метацеркарии и 1 марита, получены и определены полноразмерные последовательности ITS- кластера. Данные по видовой идентификации, с использованием ITS- кластера приведены в таблице 7.

Таблица 7. Видовая идентификация диплостом по ITS-кластеру

Вид

Изолят

Стадия жизненного цикла

1

D. mergi 2

Diplo_sp6 Diplo_sp8 D_25.1

У=3

Церкария Церкария Метацеркария

2

D. pseudospathaceum

Dipal15_1 Distal5_2

У=2

Церкария Церкария

3

D.spathaceum

Diplo_sp5 Diplo_sp23

У=2

Церкария Церкария

4

D. sp LIN2

D_sp26.1

У=1

Метацеркария

5

D. sp LIN4

Diplo_sp1 Diplo_sp2 Diplo_sp3 Diplo_sp4

У=4

Церкария Церкария Церкария Церкария

6

D. sp LIN6

D_sp7.1 D.m_sp9.13

У=2

Метацеркария Марита

Анализ первичной структуры полученных участков показал высокий процент сходства с европейскими локусами. 100% идентичность по участку баркода cox1 была обнаружена у следующих видов: D. spathaceum, D. pseudospathaceum, D. mergi и D. sp. LIN 4.

3.2 Видовая идентификация диплостом

После проведенной видовой идентификации было выявлено, что отобранные изоляты церкарий, метацеркарий и марит из Беларуси принадлежат к 6 видам и линиям: к двум широко распространенным в Евразии видам D. pseudospathaceum, D. spathaceum и к линии 2 комплекса `D. mergi'. Кроме того, обнаружены линии D. sp. LIN2, D. sp. LIN4 и LIN6, зарегистрированных ранее в Исландии [7]. Представленность видов и линий в исследованной коллекции диплостом отражена в таблице 8. Также было обнаружено 15 новых гаплотипов для 5 видов рода Diplostomum (D. spathaceum, D. pseudospathaceum, D. mergi 2, D. sp LIN 2, D. sp LIN 4).

Таблица 8. Представленность видов и линий в исследованной коллекции диплостом

Вид

Количество изолятов

Церкарии

Метацеркарии

Мариты

Всего

1

D. mergi 2

1

2

-

3 (6.7%)

2

D. pseudospathaceum

4

10

6

20 (44.4%)

3

D. spathaceum

3

4

6

13 (28.9%)

4

D. sp LIN2

-

2

-

2 (4.4%)

5

D. sp LIN4

4

-

1

5 (11.1%)

6

D. sp LIN6

-

1

1

2 (4.4%)

В сводной таблице дана информация о представленности видов и линий в нашей коллекции. Самыми часто встречающимися видами являются D.pseudospathaceum (44.4%) и D. spathaceum (28.9%). Это согласуется с мировыми данными, так как D. pseudospathaceum и D. spathaceum два самых обильно распространенных вида в природе внутри своего рода, что позволяет делать выводы о путях трансмиссии паразита. Диплостомы этих видов были выявлены на всех стадиях жизненного цикла.

Как и во всех европейских водоемах, церкарии D. pseudospathaceum обнаружены на моллюсках L. palustris и L. stagnalis. Церкарии D. spathaceum, помимо обычного в Европе моллюска R. auricularia, впервые зарегистрированы на другом виде рода Radix - R. ampla. На этом же виде R. ampla нами впервые обнаружены церкарии одной из линий комплекса `D.mergi' (D. mergi 2) и D.sp. LIN4, которые в Центральной Европе инфицируют моллюсков R. auricularia [10] и R. peregra [7], соответственно.

На стадии метацеркарии зарегистрированы все идентифицированные нами виды, кроме D.sp. LIN4. Виды D. pseudospathaceum и D. spathaceum обнаружены на 8 видах семейства карповых - Leuciscus idus, L. leuciscus, Alburnus alburnus, Abramis brama, A. ballerus, Rutilus rutilus, Neogobius fluviatilis, Chondrostoma nasus. Таким образом, впервые подтверждено широкое паразитирование этих видов на представителях сем. Cyprinidae. Показана возможность паразитирования метацеркарий D. sp. LIN2 не только на рыбах сем. Salmonidae и Gasterosteidae [7, 36], но и на Cyprinidae.

Метацеркарии D. mergi из хрусталика уклеи Alburnus alburnus и церкарии из моллюска R. ampla (озеро Нарочь) имеют 100% сходство с известными последовательностями европейской церкариальной линии

D. mergi 2. Интересно, что последовательность cox1 третьего изолята D. mergi из леща Abramis brama, найденного нами также на оз. Нарочь, характеризуется наличием трех специфичных замен по сравнению с гаплотипами линии D. mergi 2.

В чайках L. ridibundus паразитировали мариты D. pseudospathaceum и D. spathaceum, а у L. canus - D. pseudospathaceum, D. spathaceum и исландская линия D.sp. LIN4. Ранее оба широко распространенных вида диплостом были генотипированы в Европе на чайках L. cachinnans и L. argentatus [8], а LIN4 была представлена только церкариями или метацеркариями [7]. Единственная марита из утки A. platyrhynchos (озеро Нарочь) принадлежала к виду D. spathaceum.

Обнаружение трех исландских линий D. sp. LIN2, D. sp. LIN4, D. sp. LIN6 подтвердило возможность восточно-атлантической миграции водно- болотных птиц через территорию Беларуси.

3.3 Анализ филогенетических связей в группе диплостомид на основании последовательностей ITS и cox1

Чтобы связать и сопоставить разрозненные молекулярные данные, а также выявить филогенетические связи среди диплостомных паразитов, мы построили дендрограммы с использованием полученных последовательностей по ITS-кластеру и баркодовой последовательности cox1, представленные на рисунках 9 и 10 соответственно.

Все последовательности группируются в кластеры в соответствии с их родством, принадлежащие к отдельным видам и линям. Для построения дендрограммы были взяты только те изоляты, для которых впоследствии нами получены нуклеотидные последовательности ITS-кластера.


Подобные документы

  • Анализ зараженности моллюсков (как промежуточных хозяев трематод) реки Сож и прилегающих водоемов. Жизненный цикл трематод, их особенности, внешнее и внутреннее строение. Эпидемиологическое и эпизоотическое значение трематоды Paramphistomum cervi.

    дипломная работа [1,1 M], добавлен 02.05.2015

  • Изучение частной микробиологии, систематики и методов идентификации бактерий рода Listeria, возбудителей острой инфекционной болезни, особенности морфологии и физиологии. Экология и распространение данных бактерий, медицинское и ветеринарное значение.

    курсовая работа [577,3 K], добавлен 23.01.2011

  • Особенности биологии и экологии рода воронов. Значение рода воронов в научной и хозяйственной деятельности человека, их распространенность. Эколого-географическая характеристика птиц. Описание мест учёта птиц, полевые признаки и рацион питания воронов.

    дипломная работа [2,5 M], добавлен 27.01.2018

  • Возбудители протозойных заболеваний. Кокцидиоз семенников сельдевых. Заражение морских рыб взрослыми формами трематод. Методика исследования инвазионных заболеваний. Эпидемиологическое значение паразитов морских рыб. Болезни, вызываемые инфузориями.

    курсовая работа [48,9 K], добавлен 04.10.2011

  • Особенности биологии и экологии птиц. Видовое разнообразие, численность, система связей лесных птиц, их роль в жизни лесных биоценозов. Определение степени влияния антропогенного фактора на численность массовых видов птиц рекреационной зоны реки Сож.

    курсовая работа [7,7 M], добавлен 24.03.2014

  • Место плоских червей в эволюционной иерархии животного мира, сравнительная характеристика различных классов. Изучение особенностей, основных признаков строения и жизненного цикла турбеллярий, трематод, цестод, их роль в заболеваниях человека и животных.

    реферат [50,9 K], добавлен 18.09.2011

  • Единицы учета и показатели численности эктопаразитов. Изученность фауны паразитов и обитателей гнезд хищных птиц. Видовой состав эктопаразитов орлов, мелких соколиных. Оценка отрицательного воздействия паразитов и вызываемых ими болезней на хозяина.

    дипломная работа [4,3 M], добавлен 27.05.2013

  • Особенности строения и жизненного цикла ленточного червя. Пагубное влияние червя на организм. Наиболее яркие представители класса Cestoda. Особенности, основные признаки, строение турбеллярий, трематод, цестод, их роль в заболеваниях человека и животных.

    реферат [31,6 K], добавлен 25.04.2015

  • Причины межсезонных перелетов птиц. Виды перелетных и оседлых птиц, их характерные особенности. Определенный порядок расположения птиц в стае. Причины массовой гибели птиц на зимовках. Наблюдение и изучение учеными поведения птиц во время перелетов.

    презентация [813,4 K], добавлен 09.11.2010

  • Общая характеристика и уровень синантропизации орнитофауны г. Вологда. Видовое разнообразие и население птиц в парке Ветеранов. Сезонная динамика видового состава и плотности птиц на разных участках парка. Особенности экологии и биологии птиц парка.

    дипломная работа [1,6 M], добавлен 07.10.2016

Работы в архивах красиво оформлены согласно требованиям ВУЗов и содержат рисунки, диаграммы, формулы и т.д.
PPT, PPTX и PDF-файлы представлены только в архивах.
Рекомендуем скачать работу.