Концентрирование экстрактов лекарственных растений методом нанофильтрации

Получение концентрата экстрактов лекарственных растений: грецкого ореха, персика и осины методом нанофильтрации: характеристика процесса, оценка энергетических затрат. Совмещенный метод концентрирования, включающий нанофильтрацию и вакуумное выпаривание.

Рубрика Химия
Вид дипломная работа
Язык русский
Дата добавления 11.10.2011
Размер файла 3,0 M

Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже

Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.

Автор [15]отдает предпочтение мембранной технологии, так как она позволяет концентрировать растительные экстракты в условиях низких температур, что обеспечивает максимальное сохранение исходных свойств природных компонентов. Для концентрирования водных экстрактов S. officinalis был использован метод нанофильтрации с использованием мембран с минимальным размером пор 5-10 A (0,5-1 нм) (установка ROCS-5, Россия). В [15] было исследовано влияние величины давления на степень концентрирования экстракта S. officinalis, полученного методом батарейного экстрагирования. Для этой цели определяли массу, плотность и массовую долю растворимых сухих веществ в оставшемся концентрате в зависимости от прилагаемого давления 4,7; 5,2 и 5,3 кг/см2 (таблица 2.4.14)

Таблица 1.4.14

Влияние величины прилагаемого давления на степень концентрирования экстракта корней S. officinalis при нанофильтрации

Давление, кг/см2

Масса, г

Плотность, кг/м3

Массовая доля растворимых сухих веществ. %

Исходный экстракт

1350

1032

9,0

Фильтрат1

4,689

250

999

0

Концентрат1

4,689

1100

1038

10,0

Фильтрат2

5,199

1120

998

0

Концентрат2

5,199

230

1100

26,0

Фильтрат3

5,301

1230

998

0

Концентрат3

5,301

120

1219

50,0

Установлено, что концентрирование при давлении 5,2 кг/см2 в течение 62 мин приводит к получению концентрата с массовой долей растворимых сухих веществ 26%, в то время, как увеличение давления до 5,3 кг/см2 при той же продолжительности процесса позволяет сконцентрировать экстракт до массовой доли растворимых сухих веществ почти 50%.

Однако, концентрированные экстракты корней S. officinalis имели высокую плотность и вязкость, причем значительное увеличение этих параметров наблюдалось при содержании массовой доли растворимых сухих веществ -30%. В связи с этим, концентрирование экстрактов свыше 30% нецелесообразно из-за технологических проблем, возникающих в промышленных условиях при использовании высоковязких растворов.

Как отметила автор [15], концентрирование с помощью метода нанофильтрации позволило полностью сохранить функциональные свойства экстрактов, в отличие от концентратов, полученных методом упаривания. Так, концентрат, полученный методом упаривания, имел более низкие показатели пенообразующей способности и эмульгирующей емкости (способности связывать масло) по сравнению с концентратом, полученным методом нанофильтрации, или свежеприготовленным экстрактом корней, при сохранении параметров устойчивости эмульсии на прежнем уровне (таблица 1.4.15). Для сравнения функциональных свойств концентраты разбавляли до массовой доли растворимых сухих веществ 5%.

Таблица 1.4.15

Сравнительная характеристика функциональных свойств экстрактов S. officinalis, концентрированных различными методами

Экстракт 5%

Пс, %

Уп, %

ТИ, мл

Эс

Уэ, %

Свежеприготовленный

500

100

138

17,3

100

Методом нанофильтрации

500

100

138

17,3

100

Методом выпаривания

380

97,4

112

14,0

100

Автор [15] делает вывод, что Результаты исследований свидетельствуют о принципиальной возможности использования нанофильтрации для концентрирования разбавленных экстрактов S. оfficinalis, с целью максимального сохранения их исходных функциональных свойств.

Изучению процесса концентрирования экстракта прополиса нанофильтрацией посвящена статья [16]. Основными компонентами, селективность по которым определялась в статье, были флавоны, флавонолы, флаваноны и дигидрофлаваноны.

Как один из методов концентрирования экстракта авторы рассматривают лиофилизацию, отмечая, что ее основными недостатками по сравнению с нанофильтрацией являются высокие затраты энергии и необходимость долгого выдерживания экстракта при температуре порядка 70оС.

Характеристики мембран, использованных в исследовании отображены в таблице 1.4.16

Таблица 1.4.16

Характеристика мембран

Мембрана

StarmemTM 122

DURAMEMTM 200

Материал

Полиимид

Модифицированный полиимид

Тип мембраны

Листовая плоская

Листовая плоская

Максимальное давление

60 бар

60 бар

Максимальная температура

50оС

50оС

Производительность по толуолу при 55 бар

30 л/м2ч

-

Отсечка по молекулярной массе

220 Да

200 Да

Устойчивость к растворителям

Спирты, алканы, ароматические соединения, эфиры, кетоны

Спирты, алканы, ароматические соединения, эфиры, кетоны

Экспериментальная установка работает в режиме тупиковой фильтрации.

Давление нагнеталось сжатым азотом чистотой 99,996%. Частота перемешивания поддерживалась постоянной - 350 оборотов в минуту, чтобы уменьшить величину концентрационной поляризации.

Распределение частиц экстракта прополиса (пиноцембрин и галангин) по размеру дано на рисунке 1.4.41. Как видно, размеры колеблются в пределах от 10 до 80 микрометров. 90% - 15-52 микрометра. Размер агломератов составлял порядка 344 микрометров.

Результаты измерения концентрации в исходном растворе флавонов, флавонолов, флаванонов и дигидрофлаванонов, а также фенольных веществ, экстрагированных из прополиса, даны в таблице 1.4.17

Рисунок 1.4.41 Распределение частиц пиноцембрина-галангина (2:1) по размеру

Таблица 1.4.17

Количественный анализ экстрактов прополиса, полученных нанофильтрацией

Мембрана

Приложенное давление, бар

Компонент

Сf, мг/мл

Сp, мг/мл

R, %

Сr, мг/мл

StarmemTM 122

30

Флавоны и флавонолы

2.99

0.284

90

9.29

Флаваноны и дигидрофлаваноны

5.12

0.596

88

15.7

Общие фенолы

19.9

2.41

88

60.6

50

Флавоны и флавонолы

2.99

0.245

92

9.38

Флаваноны и дигидрофлаваноны

5.12

0.552

89

15.8

Общие фенолы

19.9

2.20

89

61.1

DURAMEMTM 200

30

Флавоны и флавонолы

2.99

0.070

97

9.79

Флаваноны и дигидрофлаваноны

5.12

0.248

95

16.5

Общие фенолы

19.9

1.02

95

63.8

50

Флавоны и флавонолы

2.99

0.089

97

9.75

Флаваноны и дигидрофлаваноны

5.12

0.228

95

16.5

Общие фенолы

19.9

1.16

95

65.8

В таблице 1.4.17 величины концетрации в исходном растворе и пермеате измерены спектрофотометрией. Концентрация концентрата вычислена из материального баланса.

Таблица 1.4.18

Производительность и коэффициент проницаемости через мембрану, уменьшение толщины активного слоя после нанофильтрации

Мембрана

Приложенное давление, бар

Jp, л/м2ч

Толщина активного слоя до нано-фильтрации, мкм

Толщина активного слоя после нано-фильтрации, мкм

Коэффициент проницаемости, *106, л/м*ч*бар

StarmemTM 122

30

1,70

38

26

1,5

50

2,05

1,1

DURAMEMTM 200

30

2,66

72

70

6,2

50

4,05

5,7

Обе использованные в исследовании [16] мембраны показали очень хорошую селективность. Лишь около 11% флавоноидов и 12% всех фенольных компонентов прошли через активный мембраны StarmemTM 122.Для мембраны DURAMEMTM 200 эти величины еще меньше: 3% и 5% соответственно. Это может быть объяснено как минимум тремя причинами:

1) Молекулярная отсечка мембраны DURAMEMTM 200 на 20 Да меньше. Таким образом органические компоненты с молекулярной массой от 200 до 220 Да будут задержаны только DURAMEMTM 200.

2) DURAMEMTM 200 в отличие от StarmemTM 122 изготовлена из модифицированного полиимида (перекрестно-плетеного). Соответственно, механизм транспорта органических веществ через активный слой мембран будет различен благодаря взаимодействию мембрана-растворитель.

3) Сравнивая результаты из таблиц 1.4.17 и 1.4.18, как и микроснимки поперечного сечения мембран до и после нанофильтрации (рисунки 1.4.42 и 1.4.43), кажется вполне вероятным, что DURAMEMTM 200 (рисунок 1.4.43) более устойчива, чем StarmemTM 122 (рисунок 2.4.42). После нанофильтрации на StarmemTM 122 обнаруживается более чем 30% снижение толщины актиного слоя мембраны, чего не наблюдается со второй мембраной. Это тоже может влиять на селективность.

Рисунок1.4.42 Микроснимки поперечного сечения мембраны Starmem 122 после обраюотки жидким азотом: (а) - до нанофильтрации, (b) - после нанофильтрации

Рисунок 1.4.43 Микроснимки поперечного сечения мембраныDuramem 200 после обраюотки жидким азотом: (а) - до нанофильтрации, (b) - после нанофильтрации

Кроме того, результаты из таблицы 1.4.17 показывают, что с увеличением давления от 30 до 50 бар селективность StarmemTM 122 возрастает незначительно. Совмещенный эффект повышения давления и уменьшения толщины активного слоя могут изменять величину отсечки по молекулярной массе.

То что с увеличением давления мембрана Duramem устойчива, влияет на возрастание производительности с давлением. Проницаемость, как фидно из таблицы 2.4.18 остается постоянной в случае DURAMEMTM 200, тогда как для StarmemTM 122 с увеличением давления уменьшается.

На микроснимках поверхности мембран до и после нанофильтрации (рисунок 1.4.44 и 1.4.45) хорошо видно, что гладкая поверхность покрывается загрязнением, что влияет на срок использования мембраны и делает необходимым принятие мер для предотвращения образования слоя гелевой поляризации.

Авторы [16] приходят к выводу, что для медицинских и фармакологических целей вероятно подойдет использование режима перекрестного потока (cross-flow).

Рисунок 1.4.44 Микроснимки поверхности мембраны Starmem 122 после обработки жидким азотом: (а) - до нанофильтрации, (b) - после нанофильтрации

Рисунок 1.4.45 Микроснимки поверхности мембраны Duramem 200 после обработки жидким азотом: (а) - до нанофильтрации, (b) - после нанофильтрации

Выводы

На основании изученной литературы можно сделать следующие выводы о целях и задачах, ставимых в данной исследовательской работе:

1) На основании эксперимента выбрать метод мембранного разделения, который будет наиболее эффективен для концентрирования объекта.

2) Получить массив экспериментальных данных для оценки влияния различных параметров на характеристики процесса разделения.

3) Проанализировать полученные зависимости и сделать соответствующие выводы о протекании процесса.

4) Обозначить и обосновать пределы проведения процесса, оптимальные величины исследованных параметров.

5) Сделать вывод о применимости нанофильтрации для концентрирования объекта.

2. Методическая часть

2.1 Выбор мембраны

Рисунок 2.1.1 Схема процесса концентрирования экстрактов. 1 - компрессор,2 - редуктор,3 - регулирующий вентиль, 4 - манометр, 5 - мембранная ячейка, 6 - мерный цилиндр на 10 мл, 7 - магнитная мешалка

Таблица 2.1.1

Характеристики мембран

Мембрана

Произво-дитель

Материал

Рабочее давление, МПа

Селективность по 0,2% MgSO4/0,5% NaCl

Отсечка по молекулярной массе, 97%

Производительность по чистой воде, л/м2*ч*ат

Диапа-зон рабочих рН

УПМ-10

Владипор

Полисульфонамид

0,1

--

64500

15

2-12

УПМ-30

Владипор

Полисульфонамид

0,1

--

64500

60

2-12

УФМ-50

Владипор

Фторопласт

0,1

--

64500

250

2-8

ОПМН-К

Владипор

Полиамид

1,6

98.5/--

--

6,25

2-12

ОПМН-КМ

Владипор

полиамид

1,6

98.5/--

--

6,25

2-12

МГА-70

Владипор

Ацетатцеллюлозы

5,0

--/70

--

1,84

3-8

Рисунок 2.1.1 Мембранная ячейка. 1 - корпус, 2 - крышка, 3 - трубка для подачи воздуха под давлением, 4 - клапан регулирования давления, 5 - трубка для вывода пермеата, 6, 10 - уплотнительные кольца, 7 - мембрана, 8 - дренаж, 9 - магнитная мешалка

Для проведения эксперимента были взяты пять мембран: ультрафильтрационные - УПМ-10, УПМ-30, УФМ-50; и нанофильтрационные - ОПМН-К, ОПМН-КМ.

Перед проведением эксперимента экстракты были очищены от взвешенных частиц микрофильтрацией на мембранах с размером пор 5 мкм.

Перед проведением эксперимента необходимо смочить мембрану дистиллированной водой.

1) Предохранительный клапан (позиция 4 на рисунке 2.1.2) отвинчивается

2) В отверстие для предохранительного клапана вливается жидкость, исследование которой необходимо провести.

3) Предохранительный клапан возвращается на место.

4) Включается магнитная мешалка (рисунок 2.1.1), регулируется число оборотов.

5) Через трубку (позиция 3 на рисунке 2.1.2) компрессором (рисунок 2.1.1) подается воздух. Вентилем (рисунок 2.1.1) регулируют давление. Отмечают давление, показываемое манометром (рисунок 2.1.1).

6) Через трубку (позиция 5 на рисунке 2.1.2) сливают образец пермеата в мерный цилиндр (рисунок 3.1.1).

7) Предохранительным клапаном сбрасывают давление.

8) Жидкость сливают, ячейку тщательно промывают дистиллированной водой.

Каждый образец пермеата исследуется на ФЭК:

1) В правый световой пучок помещают кювету с исследуемым раствором, в левый - кювету с растворителем.

2) Направляют пучок света через кювету с растворителем.

3) Устанавливают показания гальванометра на 0.

4) Направляют пучок света через кювету с исследуемым раствором.

5) Фиксируют показания прибора.

6) После проведения опыта кюветы промывают дистиллированной водой.

2.2 Методика проведения исследования процесса концентрирования экстрактов

Рисунок 2.2.1 Схема процесса концентрирования: 1 - емкость с исходным экстрактом, 2 - насос, 3 - нанофильтрационный аппарат, 4- манометр, 5 - ротаметр, 12 - регулирующий вентиль, 6-11 - вентиль запорный, 13 - емкость для регенерации

Величина давления ограничена возможностями насоса и составляет 7 ати.В качестве модуля в экспериментальной установке выбираем нанофильтрационныйрулонный модуль с элементом DesalHL1812T

1) Исходный раствор насосом (рисунок 2.2.1) подается из емкости (рисунок 2.2.1) в мембранный аппарат (рисунок 2.2.1) с нанофильтрационным модулем. Вентилем 12 (рисунок 2.2.1) регулируют давление. Давление фиксируют на манометре (рисунок 2.2.1). Вентили 7,9,11 закрыты.

2) Расход пермеата измеряется ротаметром (рисунок 2.2.1).Каждые полчаса измеряют производительность и берут образцы пермеата.

3) Концентрат возвращают в исходную емкость.

4) Во время регенерации перекрываются вентили 6,8,10. Вентили 7,9,11 открыты, реагент подается из емкости 13.

2.3 Методика проведения измерений концентрации пермеата на приборе Specord

Для оценки относительной концентрации пермеата был использован прибор Specord UV-VIS. Методика работы с этим прибором описана далее:

1. Установить и подключить мультиметр к спектрографу. Для этого два черных штекера закрепленных с тыльной стороны спектрографа подключить в гнезда на нижней части мультиметра COM и V/?

2. Соединить ПК с мультиметром при помощи специального кабеля. Для этого пятиигольчатый конец кабеля подключить к порту мультиметра RS232C (рис.2.3.1 поз. 4). Другой конец кабеля соединить с универсальным последовательным COM-портом ПК.

3. Включить ПК и запустить программу для записи показаний прибора. (Данное программное обеспечение прилагается к мультиметру, либо может быть найдено через интернет-ресурсы)

4. Открыть файл для обработки данных в MicrosoftExcel “Отчет_Specord.xls”

5. Включить мультиметр (рис.2.3.1 поз.1)

6. С помощью переключателя (рис.2.3.1 поз.6) установить режим измерения ? (рис.2.3.1 поз.2)

7. С помощью кнопки выбора диапазона измерений (рис.3.3.1 поз.3) выбрать режим, при котором на экране, индикация будет соответствовать виду: 000

а единицы измерений: к?

8. Включить вилку прибора Specord в сеть ~220 В.

9. Поместить в кюветное отделение кюветы с фоновым раствором.

10. Включить тумблер (рис.2.3.1 поз.1) в положение «I». При этом должна загореться лампа (рис.2.3.1 поз.2), свидетельствующая о подаче напряжения на схемы прибора.

11. Если необходимо проводить измерения в видимом диапазоне спектра 400-750 нм - включить тумблер (рис.2.3.1 поз.5).

12. Если необходимо проводить измерения в ультрафиолетовом диапазоне - повернуть переключатель (рис.2.3.1 поз.3) в среднее положение и подождать пять-десять секунд, затем повернуть переключатель в положение «I». Сигнальная лампа (рис.2.3.1 поз.4) свидетельствует об успешном зажигании дейтериевой лампы. Если лампа не загорелась - повторить этот пункт методики с начала. При этом необходимо использовать кюветы, изготовленные из кварца - 2 из их стенок имеют матовую поверхность.

13. Выставить необходимое волновое число при помощи переключателя (рис.2.3.1 поз.6). В положении «>» происходит быстрая прокрутка спектра от больших волновых чисел к меньшим. Если необходимо передвинуть начальную точку измерения в обратную сторону - повернуть переключатель (рис.2.3.1 поз.6) в положение «о<». Откорректировать волновое число поворотом верхней дальней шестеренки на правом торце прибора. Нажимая на кнопку, расположенную рядом с планшетом самописца, передвинуть планшет так, чтобы начальная точка измерений была на левом краю координатной бумаги. Отпустить кнопку и пошевелить планшет до его жесткой фиксации. Занести начальное значение волнового числа в ячейку n0, см-1

14. Зафиксировать линию полного поглощения. Для этого перекрыть ход лучей прибора непрозрачным предметом. Закрыть кюветное отделение. Занести показания мультиметра в ячейку MSExcel: 0% пропускания, кОм

15. Отмасштабировать ординату - для этого перевести переключатель режимов (рис.2.3.1 поз.9) в положение «0-100». Вращая ручку реостата (рис.2.3.1 поз.10), установить желаемое положение линии 100%-го пропускания, но не более: 950к? по показанию (мультиметра). Занести показания мультиметра в ячейку MSExcel: 100%пропускания, кОм

16. Заполнить ближнюю кювету исследуемым образцом.

17. Закрыть кюветное отделение. В расчетном модуле “Отчет_Specord.xls” внести маркировку образца в соответствующую ячейку, в программе нажать на кнопку старт, одновременно повернув переключатель на спектрографе (рис.3.3.1 поз.6) в положение «о<», при этом начнется регистрация показаний.

18. Сняв желаемую часть спектра, в программе нажать на кнопку стоп, а на спектрографе вернуть переключатель (рис.3.3.1 поз.6) в положение «0». Для удобства обработки результатов, можно занести в таблицу отчета диапазон порядковых номеров измерений из программы в соответствующую ячейку отчета N1-N2 для этого образца.

19. При необходимости, повторить действия по регистрации спектра другого образца, повторив пункты 17-19 настоящей методики, предварительно выставив начальное волновое число по пункту 14. НЕОБХОДИМО УСТАНАВЛИВАТЬ ОДНО И ТО ЖЕ ВОЛНОВОЕ ЧИСЛО В КАЖДОЙ СЕРИИ ИЗМЕРЕНИЙ, что связано с обработкой данных.

20. При длительных простоях (10-15 мин) ОБЯЗАТЕЛЬНО ВЫКЛЮЧИТЬ ЛАМПЫ ПРИБОРА И МУЛЬТИМЕТР.

21. После окончания экспериментальной части, в окне ПО мультиметра нажать иконку X, при этом происходит экспорт данных в формат CSV. В диалоге сохранения введите желаемое имя файла.

22. Открыть экпортированные данные и программу расчета «Отчет_Specord». Если файл с экспортированными данными автоматически не распределил их по колонкам, то проделать следующие шаги :

- выделить весь столбец данных (А) с экспортированными данными;

- открыть на панели управления вкладку «Данные», выбрать формат данных «с разделителем», нажать «Далее»;

- в качестве разделителя выбрать «запятая», нажать кнопку «Далее»

24. После разбивки данных по столбцам, выделить столбцы А-Е, скопировать и вставить их в те же самые столбцы расчетного модуля «Отчет_Specord».

25. Согласно времени проведения измерений из столбца Е (или согласно записанным диапазонам точек измерения) данные из столбца С со значениями сопротивления скопировать в соответствующие образцам столбцы таблицы (I, M, O, Q, S, U, W) предварительно очистив их от старых значений.

26. Выровнять диапазоны значений поглощения соразмерно диапазону сопротивления для каждого образца, протянув или удалив лишнее в столбце поглощений.

27. В результате на графике расчетного модуля появятся кривые пропускания образцов. Точное положение минимума пропускания можно установить либо по координатной сетке, либо наведя курсор на минимум линии пропускания, при этом рядом с ним высветится ближайшее значение длины волны из расчетной таблицы. По соответствующей этой длине волны строке таблицы можно посмотреть значения пропускания.

Примечания:

1) При необходимости - выставить желаемый диапазон измерений светопропускания поворотом переключателя режимов (рис. 2 поз. 9). При этом поменять значения границ измерений в отчете, изменив значения ячеек нижняя, %верхняя, %

2) Пример определения волнового числа.

Слева от индексного штриха «0» нониуса находится деление для волнового числа 40.2•103 см-1 = 40 200 см-1 . Цену расстояния между этим делением шкалы и неподвижным индексом можно определить, найдя тот штрих нониуса, который точнее всего совпадает с одним из делений шкалы волновых чисел. В случае данного примера это относится к штриху «1,2» нониуса, соответствующему приращению на 120 см-1. Итого, текущее значение волнового числа составляет 40 320 см-1.

Пересчет в длину волны производится по формуле :

где л- длина волны излучения, нм.; х - волновое число, см-1.

3) Таблица соответствия волновых чисел длинам волн находится на листе «Таблица соответствия» файла-отчета.

3. Экспериментальная часть

3.1 Характеристики мембран. Выбор мембраны

Таблица 3.1.1

Данные о производительности мембран в зависимости от давления

мембрана

ДP,ат

,мл

ф, с

Jv(H2O), л/м2

УПМ-10

3,25

5

269

24,48

2,10

5

396

16,63

1,80

3

272

14,53

УПМ-30

3,40

5

61

107,93

1,95

5

110

59,85

1,45

5

140

47,03

УФМ-50

3,35

5

8

822,97

2,00

5

14

420,27

1,20

5

21

313,51

ОПМН-К

3,35

5

420

15,68

2,00

5

730

9,02

1,55

3

530

7,45

ОПМН-КМ

3,35

5

305

21,59

1,95

5

630

10,45

1,50

5

823

8,00

Таблица 3.1.2

Производительность исследуемых мембран по экстракту при ДР = 3,35ат

мембрана

,мл

ф, с

Jv, л/м2

УПМ-10

3

510

7,75

УПМ-30

5

234

28,14

УФМ-50

5

255

25,82

ОПМН-К

3

3040

1,30

ОПМН-КМ

3

5595

0,706

а)

б)

Рисунок 4.1.4 Производительность мембран (л/м2*ч) по дистиллированой воде в зависимости от давления (ат), а - УПМ-10,УПМ-30, УФМ-50, ОПМН-К, ОПМН-КМ; б (укрупненный масштаб) - УПМ-10, ОПМН-К, ОПМН-КМ

Таблица 3.1.3

Измерения оптической плотности на ФЭК при л=670 для разбавлений исходного экстракта Юглон-П в 4, 6, 8, 10, 12, 15, 20, 50 и 100 раз

разбавл

4

разбавл

6

T

13

13

13

T

21,5

21,5

21,5

D

0,9

0,9

0,9

D

0,58

0,58

0,58

разбавл

8

разбавл

10

T

36,5

36,5

36,5

T

45

45

45

D

0,445

0,445

0,445

D

0,35

0,35

0,35

разбавл

12

разбавл

15

T

51

51

51

T

61

61

61

D

0,03

0,03

0,03

D

0,22

0,22

0,22

разбавл

20

разбавл

50

T

66

66

66

T

82,5

82,5

82,5

D

0,185

0,185

0,185

D

0,085

0,085

0,085

разбавл

100

T

90

90

90

D

0,045

0,045

0,045

Рисунок 3.1.5 Калибровочная кривая для определениия концентрации сухого вещества (г/л) в пермеате Юглона-П

Таблица 3.1.4

Концентрация пермеата

мембрана

C, г/л

УПМ-10

0,85

12,8

УПМ-30

0,65

10,2

УФМ-50

0,7

10,8

ОПМН-К

0,01

0,2

ОПМН-КМ

0,042

0,4

3.2 Зависимость производительности по экстракту от давления и от времени

В качестве модуля в экспериментальной установке выбираем нанофильтрационный рулонный модуль с мембраной Desal HL1812T

Таблица 3.2.1

Зависимость производительности по воде от давления

ДР, ат

Jv, л/м2*ч(до проведения опыта)

ДР, ат

Jv, л/м2*ч(после проведения опыта)

2,4

18,90

2,1

12,90

3,2

25,02

4,1

23,63

6,2

44,78

6,0

32,73

Таблица 3.2.2

Зависимость производительности по экстракту Юглон-П от давления

ДР, ат

Jv, л/м2

4,0

0,47

5,0

1,23

6,5

2,17

Рисунок 3.2.1 Зависимость удельной производительности (л/м2ч) по воде от давления (ат)

Рисунок 3.2.2Зависимость удельной производительности (л/м2ч) по экстракту Юглон-П от давления (ат)

Таблица 3.2.3

Зависимость производительности по экстракту Югло-осин от давления

ДР, ат

Jv, л/м2

4,0

3,03

5,4

4,73

6,5

5,79

Рисунок 3.2.3 Зависимость производительности по экстракту Югло-осин(л/м2ч)от давления (ат)

Таблица 3.2.3

Зависимость производительности по экстракту Юглон-П от времени при ДР = 7 ат

ф, мин

Q, л/ ч

0

5,14

28

3,91

58

3,13

88

2,35

118

1,90

Рисунок 3.6.3 Зависимость производительности (л/м2ч) по экстракту Юглон-П от времени (мин) при ДР = 7 ат

Таблица 3.2.4

Зависимость производительности по экстракту Югло-осин от времени при ДР = 7 ат

ф, мин

Q, л/ ч

0

5,48

10

4,99

29

4,32

43

3,71

62

3,05

102

1,84

218

0,43

Рисунок 3.7.4 Зависимость производительности (л/м2ч)по экстракту Югло-осин от времени (мин) при ДР = 7 ат

3.3 Зависимость производительности от относительной концентрации

Под относительной концентрацией понимаем отношение концентрации концентрата к исходной концентрации:

Содержание сухих веществ в концентрате определялось по материальному балансу через концентрацию пермеата, которая в свою очередь была определена на приборе Specord UV VIS.

По высотам пиков (светопропускание) в программном обеспечении Specord для растворов известной концентрации построены калибровочные графики.

Рисунок 3.3.1 Калибровочный график пересчета высоты пика (%) в концентрацию пермеата Юглона-П (г/л)

Рисунок 3.3.2 Калибровочный график пересчета высоты пика (%) в концентрацию пермеата Югло-осина (г/л)

Отсюда:

Таблица 3.3.1

Соответствие концентраций пермеата Юглон-П высотам пиков

Hпика, %

49,153

44,972

23,616

7,119

Сперм, г/л

0,065

0,075

0,13

0,19

Таблица 3.3.2

Соответствие концентраций пермеата Югло-осин высотам пиков

Hпика, %

17,319

16,963

16,607

15,777

14,591

Сперм, г/л

0,24

0,25

0,27

0,29

0,31

Рисунок 3.3.1 Зависимость производительности по экстракту Юглон-П (л/м2ч)от относительной концентрации, ДР = 7 ат

Рисунок 3.3.2 Зависимость производительности по экстракту Югло-осин(л/м2ч)от относительной концентрации,ДР = 7 ат

3.4 Зависимость содержания сухого вещества в перемеате от степени концентрирования

Рисунок 3.4.1 Зависимость концентрации пермеата Юглона-П (г/л) от степени концентрирования, ДР = 7 ат

Рисунок 3.4.2 Зависимость концентрации пермеата Югло-осина (г/л) от степени концентрирования, ДР = 7 ат

3.5 Обсуждение результатов эксперимента

1) Несмотря на высокую производительность ультрафильтрационных мембран, они показывают относительно невысокое качество разделения. Поэтому для концентрирования экстрактов предпочтительнее выбор нанофильтрационных мембран.

2) Использование обратного осмоса требует организации высокого давления, поэтому в данной работе изучено не было. Однако литературные источники [10] показывают, что для концентрирования растительных экстрактов нанофильтрация предпочтительнее обратного осмоса по экономическим соображениям.

3) Линейная зависимость удельной производительности по экстракту от давления позволяет сделать вывод о том, что использование насоса с большим напором даст возможность добиться довольно высоких производительностей. Однако, исходя из данных, полученных в литературе [10,11,13], можно сделать вывод о том, что при повышении давления производительность будет расти лишь до некоторого оптимального значения давления, а далее приобретать постоянный характер.

4) Значительное падение производительность во времени и с ростом концентрации экстракта означает необходимость частого проведения регенерации мембраны, а также определяет концентрационные пределы проведения процесса, равные для Юглона-П и для Югло-осина. Такие выводы подтверждаются источниками [10-14]. Однако при повышении давления возможно изменение концентрационных пределов. Необходимы дополнительные исследования.

5) Увеличение содержания сухого вещества в пермеате с повышением степени концентрирования также задает пределы проведения процесса. Если в случае экстракта Югло-осин увеличениеконцентрации пермеата не так значительно, то в случае с Юглоном-П концентрация пермеата возросла в 3 раза при степени концентрирования 2,5. В статье [14] нарастание степени концентрирования также приводит к понижению производительности, что еще раз обосновывает выбор концентрационных пределов проведения данного процесса, упомянутых в пункте 3.

Чтобы выявить тенденцию возрастания концентрации пермеата с увеличением степени концентрирования, возможно, недостаточно существующей выборки экспериментальных данных, что делает необходимыми дополнительные исследования данного процесса.

4. Расчет экономической эффективности процесса

Проведем расчет экономической эффективности метода концентрирования растительного экстракта нанофильтрацией в сравнении с вакуумным выпариванием.

1) Вакуумное выпаривание:

(5.1)

Где - общая мощность установки вакуумного выпаривания, Вт; - мощность выпарной установки, Вт; - мощность процесса вакуумирования, Вт

(5.2)

Где r - удельная теплота парообразования воды, Дж/м3; G - массовый расходвлаги, кг/с

r = 2382,5кДж/кг при Р = 0,126 ат, tкип = 50оС

(5.3)

Где Q - объемный расход экстракта, м3/с, ДP - разность давлений, создаваемая вакуум-насосом.

Р =1- 0,126=0,874 ат = 85739,4Па

Расход принимаем равным 1 л/ч = 2,78 м3

Упаривание на вакуум-выпарной установке ведем от исходных 5,4% до 75% сухого вещества.

Тогда материальный баланс:

(5.4.1)

(5.4.2)

Принимая концентрацию в паре равной 0, получим:

=>0,61 кВт*ч

Так как с 1л/ч раствора приготовить можно 0,073кг концентрата и выпарить 0,943 кг влаги. Тогда на м3 упаренной влаги получим:

0,61/(0,943/988)=639 кВт*ч/м3 влаги

Стоимость кВт*ч энергии в Москве - 3,31 руб.

639*3,31 = 2115 руб/м3 влаги

2)

Где Q - объемный расход концентрата экстракта, м3/с, p - разность давлений, создаваемая насосом.

Производительность насоса: 18 л/ч при давлении 6 ат. Тогда мощность насоса:

Следовательно при удельной производительности 1 л/ч получим:

С коэффициентом запаса 2 получим, что при стоимости кВт*ч энергии 3,31 руб:

3*3,31*2=19,86 руб/м3

Сконцентрированный нанофильтрацией экстракт имеет массовую концентрацию 17% сухого вещества. Плотность раствора станет 1,0353 кг/м3.Тогда сопряженный процесс вакуумного выпаривания будет иметь следующую стоимость:

Соотношение удаленной влаги нанофильтрацией и выпариванием составит 1:4,42. Тогда и затраты будут распределяться аналогичным образом. Из м3 удаленной влаги 185 л будет удалено нанофильтрацией, а оставшиеся 815 л вакуумным выпариванием.

19,86*0,185+2115*0,815=1727,4 руб/м3

Выводы

В результате проделанной работы был изучен процесс жидкостного концентрирования экстрактов лекарственных растений методом нанофильтрации.

Были оценены параметры проведения процесса, а также определены пределы, в которых можно осуществлять процесс.

Концентрационные пределы проведения процесса составили для Юглона-П и для Югло-осина. Выявлена необходимость проведения опытов с насосом большего напора для выбора оптимального рабочего давления.

Предложен метод концентрирования экстрактов лекарственных растений на основе совмещения нанофильтрации с традиционным вакуумным выпариванием.

В результате совмещенного процесса достигается:

1) Необходимое качество целевого продукта, содержание влаги в котором составляет 25%

2) Сокращение энергетических затрат в 1,2 раза

Предложен метод анализа содержания растворенных веществ в экстракте с помощью спектрофотометра SpecordUVVIS

По результатам проведенной работы получены исходные данные для проектирования промышленной установки концентрирования экстрактов лекарственных растений на основе совмещения нанофильтрации и вакуумного выпаривания

5. Приложение по экономической части

5.1 Технико-экономическое обоснование

Уже на самых ранних стадиях развития человечества растения были не только источником питания людей, они помогали человеку избавиться от болезней.

В лекарственных травах содержится минимум одно вещество, обладающее лечебными свойствами. Сейчас известно несколько групп активных веществ растений: алкалоиды, гликозиды, дубильные вещества, сапонины, флавоноиды, различные органические кислоты, витамины, жирные и эфирные масла, микроэлементы и др.[17]

Основные способы применения сырья лекарственных растений: производство лекарственных средств для внутреннего и наружного применения.

Из лекарственных растений на фармацевтических заводах и фабриках, в аптеках готовят различные лечебные препараты и лекарственные формы.

Внутрь применяют водные извлечения: настой, отвар, водно-спиртовые, масляные извлечения (настойка, экстракты) из лекарственного растительного сырья или сборов. Из сочных свежих частей официнальных растений получают сок. Реже находит применение в медицине порошок из высушенного лекарственного растительного сырья.[17]

Натуральный продукт настойки черного (или грецкого) ореха - юглон - универсальное, эффективное и безвредное для организма средство широкого спектра действия.

Применяется при самом широком спектре патологий, особенно если есть тенденция к хронизации воспалительных процессов, признаков необратимости патологического процесса, при онкологических заболеваниях.

Для получения различных продуктов содержащих юглон необходимо получить его концентрат или порошок, чтобы в дальнейшем производить лечебные препараты в любой лекарственной форме.

Чтобы обезводить экстракты лекарственных растений нельзя применять обыкновенную выпарку, так как это приведет к разложению большинства активных веществ препарата. Предприятия, производящие концентраты или порошки лекарственных растений используют в этих целях в основном вакуумное выпаривание, так как оно позволяет при относительно невысоких температурах достичь необходимого результата.

Однако у этого способа есть один весомый недостаток: установки потребляют большое количество электроэнергии.

К примеру трехступенчатый вакуумный выпарной аппарат потребляет 200кВт. Цена за кВт*ч энергии равна3,31 руб. Таким образом затраты на работу аппарата в течение 200 часов и в течение года составят:

Таблица 1

Эксплуатационные затраты на вакуумное выпаривание

Наименование оборудования

Число ед. оборудования

Номинальная мощность ед. оборудования, кВт

Суммарная потребляемая мощность, кВТ

Коэф. Использования мощность

Время работы оборудования, ч.

Цена, ру/кВтч

Сумма затрат, руб

Трехступенчтый вакуумный выпарной аппарат

1

200

200

0,8

200

3,31

106090

8760

4639296

ИТОГО, руб:

4639296

Отсюда видно, что предприятие платит значительные суммы за электроэнергию.

Для решения проблемы высоких эксплуатационных затрат требуется поиск новых методов получения продукта без использования энергоемкого оборудования.

К таким методам в первую очередь относятся мембранные методы. С помощью проведенных экспериментов показано, что достаточной эффективностью при концентрировании экстрактов лекарственных растений, в частности экстракта грецкого ореха, обладает нанофильтрация.

Мембранные установки, применяющие метод нанофильтрации, используются во многих отраслях промышленности, где есть необходимость выделения крупных молекул и ионов (многовалентные ионы, органические молекулы и др.): молочная промышленность, пищевая промышленность и производство напитков, фармацевтическая промышленность и др.

Широкое распространение мембранные установки получили благодаря ряду преимуществ:

- универсальность очистки и стабильность качества очищенного продукта;

- простота эксплуатации;

- экологическая безопасность;

- компактность;

- любой уровень автоматизации;

- низкие эксплуатационные затраты.

Таким образом, нанофильтрация является оптимальным методом, позволяющим получить концентрат достаточного качества при низких эксплуатационных затратах. Экономические затраты на создание и обслуживание данного процесса на порядок ниже, чем у других процессов.

5.2 Расчет затрат на научно-исследовательскую работу

5.2.1 Расчёт материальных затрат

Затраты на основные и вспомогательные материалы и реактивы, использованные на научно-исследовательскую работу, можно определить следующим образом:

(1)

Где Pi - количество израсходованного i-го материального ресурса;

Цi - планово-заготовительная цена i-го вида материальных ресурсов (руб/ед);

i- 1, 2, … n - виды ресурсов.

В работе используются растворы, поставляемые заводом, поэтому в материальных затратах учитываем только затраты на пилотную установку.

Пилотная установка для концентрирования экстракта грецкого ореха включает в себя следующее оборудование. Оборудование закупается у фирм изготовителей.

Таблица 2

Расходы на закупку оборудования.

Наименование технологического оборудования

Количество, шт

Цена, руб. (вкл. НДС)

Стоимость, руб.

Шланги силиконовые

100

100

Насос центробежный

1

3000

3000

Мембранная ячейка:

Корпус

Мембрана нанофильтрационная

1

1

142

1750

142

1750

ИТОГО, руб:

4992

5.2.2 Расчёт энергетических затрат

В составе энергетических затрат учитываются затраты на электроэнергию, пар, воду, холод, сжатый воздух и т.п., непосредственно израсходованные на технологические цели на выполнение научно-исследовательской работы.

Затраты на электроэнергию

Затраты на электроэнергию составят:

(2)

Где Мi - паспортная мощность электрооборудования (кВт);

К - коэффициент использования мощности, К=0,8-0,9;

Тi - время работы электрооборудования (ч);

Ц - цена за 1 кВт·ч (руб/кВт·ч);

Рi - расход электроэнергии на i-том виде оборудования (кВт·ч).

Т.к. работа проводилась в лаборатории кафедры Мембранной технологии РХТУ им. Д.И. Менделеева, цена 1 кВт·ч составляет 2 руб 47 коп.

Таблица 3

Наименование оборудования

Число ед. оборудования

Номинальная мощность ед. оборудования, кВт

Суммарная потребляемая мощность, кВТ

Коэф. Использования мощность

Время работы оборудования, ч.

Цена, ру/кВтч

Сумма затрат, руб

Насос центробежный

1

0,2

0,2

0,8

200

3,31

105,92

ИТОГО, руб:

105,92

Затраты на воду

Т.к. работа проводилась в лаборатории кафедры Мембранной технологии РХТУ им. Д.И. Менделеева, цена за потребление и отведение воды принята согласно тарифам, установленным для РХТУ им. Д.И. Менделеева.

Таблица 4

Вид ресурса

Израсходованное количество, м3

Цена, руб/м3

Сумма, руб

Вода холодная, потребление

5

19,85

99,25

Вода холодная, отведение

5

14,40

72

ИТОГО, руб:

171,25

5.2.3 Затраты на аренду помещения

Т.к. работа проводилась в лаборатории кафедры Мембранной технологии РХТУ им. Д.И. Менделеева, аренда помещения в затратах не учитывается.

5.2.4 Расчет затрат на заработную плату

Заработная плата состоит из заработной платы исполнителя (студента) ЗПЛИ, заработной платы консультантов ЗПЛКОН, заработной платы руководителей дипломной работы (ЗПЛрук).

Заработная плата исполнителя:

ЗПЛи = См · n (3)

См - месячная стипендия: 1350 руб.

n- количество месяцев выполнения дипломной работы: 4 месяцев.

ЗПЛИ=1350 · 4 =5400 руб.

Заработная плата руководителя:

Заработная плата руководителя определяется из почасовой ставки, которая составляет (по данным РХТУ):

150 руб. в час для ассистента, ст. преподавателя;

300 руб. в час для кандидата наук;

400 руб. в час для доктора наук.

Общая продолжительность консультаций 24,5 часа:

ЗПЛрук=24,5·Т (5)

Т - часовая оплата труда руководителя

ЗПЛрук=24,5 · 400 = 9800 руб.

Заработная плата консультантов:

ЗПЛКОН=0.5·Т (5)

Т - часовая оплата труда консультантов:

ЗПЛкон,общ=400·0,5+300·0,5+150·0,5+150·0,5=500 руб.

Начисления на заработную плату.

Начисления на заработную плату составляют 26% от суммарной заработной платы:

Ссс = (ЗПЛрук + ЗПЛкон) · 0,26 = (500 + 9800) = 2678 руб

Общий фонд заработной платы:

Собщ = ЗПЛИ + ЗПЛкон + ЗПЛрук= 5400 + 500 + 9800 + 2678 = 18378 руб.

5.2.5 Затраты на посуду

Таблица 5

Наименование

количество

Цена за единицу, руб.

Сумма, руб.

Колба мерная 25 мл

2

38

76

Колба мерная 50 мл

1

41

41

Колба мерная 250 мл

2

52

104

Колба мерная 500 мл

1

59

118

Мерный цилиндр 100 мл

1

320

320

Колба коническая 250 мл

4

80

320

Колба коническая 500 мл

2

95

190

ИТОГО, руб:

1169

5.5.2 Амортизационные отчисления:

(6)

Где: Ф - стоимость приборов, применяемых в исследовании, руб.;

На - годовая норма амортизационных отчислений, %;

Т - время работы приборов и оборудования в течение срока выполнения дипломной работы, месс.

Так как стоимость оборудования меньше 20 тыс. рублей, то амортизацию не рассчитываем.

5.2.7 Затраты, связанные с использованием вычислительной техники

Свт = Т Ц

Где Т - время использования вычислительной техники, ч;

Ц - цена за 1 час машинного времени;

Поскольку в ходе выполнения дипломной работы вычислительная техника не применялась, то затраты, связанные с использованием вычислительной техники равны 0.

Свт = 0 руб.

5.2.8 Услуги сторонних организаций

В данной работе затрат на услуги сторонних организаций нет.

5.2.9 Накладные расходы

Накладные расходы принимаются в размере 15% от суммы заработной платы с начислениями:

Сн = 18378 · 0,15 = 2756,70 руб.

5.3 Смета затрат на проведение дипломной научно-исследовательской работы

Таблица 7

Наименование статей затрат

Сумма, руб.

%

Затраты на покупку оборудования

4992

18,10

Энергетические затраты:

На электроэнергию

На воду

277,17

1,00

105,92

0,38

171,25

0,62

Заработная плата:

Исполнителя

Руководителя

консультантов

15700

56,94

5400

19,59

9800

35,154

500

1,81

Начисления на заработную плату

2678

9,72

Затраты на посуду

1169

4,24

Накладные расходы

2756,7

10,00

ИТОГО, руб

27907,46

100

Заключение

Проведенный расчет показывает, что большую часть затрат на исследовательскую работу составляют затраты на оплату труда, а значит работа является трудоемкой. Однако, существенны и затраты на покупку оборудования, т.е. работа относительно фондоёмка. Энергетические затраты невысоки, таким образом, эксплуатационные затраты на установку малы.

6. Приложение по охране окружающей среды

Сегодня человечество переживает фазу осмысления опасности бурного неконтролируемого роста промышленного производства, приводящего к истощению природных ресурсов и загрязнению окружающей среды.

6.1 Экологическое обоснование темы работы и предполагаемых технологических решений

Россия осталась практически единственным на планете регионом с огромнейшими запасами экологически чистого растительного сырья и питьевой воды. Производство лекарственных средств и экологически чистых продуктов из дикого и выращенного в регионах России сырья является перспективным направлением.

Переработка растительного сырья представляется перспективной для пищевой и фармацевтической промышленности. Как, собственно, и разработка новых технологий и технологического оборудования для этих отраслей.

Основным требованием к препаратам из растительного сырья при их разработке является обеспечение высокой эффективности и биологической доступности. Для этого необходимо извлечь биологически активные вещества из клеток сырья и обеспечить их поступление в организм человека.

Технологии экстрагирования из лекарственных растений, позволяющие выделить биологически активные вещества, целенаправленно, в максимальном количестве и сохранением их высокой природной активности, являются основополагающими в производстве экстрактов.

Работа с экологически чистым природным сырьем является безопасной и приносит огромную пользу, ведь обогащение витаминными комплексами и биологически активными добавками благотворно сказывается на здоровье людей.

Цель работы.

Исследование эффективности и экологической безопасности метода нанофильтрации для концентрирования растительных экстрактов.

6.2 Краткая характеристика процесса

Из емкости с исходным раствором Е1 насосом Н1 перекачивается растительный экстракт, содержащий юглон. Раствор проходит через мембранный аппарат с нанофильтрационной мембраной НФ1, разделяя поток на концентрат и пермеат. Концентрат циркулирует, обогащаясь основным компонентом - юглоном, пермеат сбрасывается в канализацию.

6.3 Токсикологическая характеристика сырья, реагентов, промежуточных и конечных продуктов

В процессе проведения НИР использовались следующие вещества:

Вода

Под свойствами воды понимают совокупность биохимических, органолептических, физико-химических, физических, химических и других свойств воды. Многие свойства воды аномальны, это вызвано особенностями строения молекулы воды. Вода является наиболее важным и распространенным веществом, в природе не существует чистой воды, в ней обязательно содержатся какие-либо примеси, чистая вода не имеет вкуса и запаха, прозрачна, её получают в процессе перегонки, после этого она называется дистиллированная.

Среди всех жидкостей вода имеет самое высокое поверхностное натяжение. Дистиллированная вода не проводит электрический ток, так как она слабый электролит и диссоциирует в малой степени.

По массе в состав воды входит 88,81%кислорода и 11,19%водорода, а наибольшую плотность вода имеет при 0°С (1г/см3)

Физические свойства воды:

· Температура кипения - 100°С;

· Температура кристаллизации - 0°С;

· Плотность при 20°С - 0,9982 г/см3

· Молекулярная масса - 18

· Теплоемкость - 4,1868 кДж/кг

В работе использовалась водопроводная вода (ГОСТ 2874-82).

Исходный раствор -экстракт грецкого ореха и персика, а также экстракт грецкого ореха и осины. Точный состав экстракта не установлен. Однако известно, что все компоненты растительного происхождения, соответственно для сравнительного расчета токсикологической активности используем как характеристику ХПК теоретическое основных компонентов.

Концентрат - вышеупомянутые экстракты, обогащенные юглоном и обедненные солями (NaCl, KCl).

Пермеат - солевой раствор, содержащий NaCl, KCl

Химическое потребление кислорода (ХПК) - количество кислорода, потребляемое при химическом окислении содержащихся в воде органических и неорганических веществ под действием различных окислителей.

Расчитаем ХПК теоретическое для основных компонентов экстрактов: юглона, дубильных веществ, флавоноидов, витаминов, органических кислот, сахаров.Реакции горения будут выглядеть следующим образом:

Юглон:

С10Н6О3+10О2 = 10СО2+3Н2О

Дубильные вещества: эллагогендубильная и эллаговая кислоты

2C14H10O10 + 23О2 = 28СО2+10Н2О

2C14H6O8+ 23О2 = 28СО2+6Н2О

Флавоноиды: эпикатехин, эпигаллокатехин, изофлавон,

2C15H10O6 + 29О2 = 30СО2+10Н2О

C15H14O7 + 15О2 = 15СО2+7Н2О

2C15H10O2 + 33О2 = 30СО2+10Н2О

Витамины: С, А, Е, В2, В5, В6

С6Н8О6+ 5О2 = 6СО2+4Н2О

С20Н30О + 27О2 = 20СО2+15Н2О

29Н50О2+ 81О2 = 58СО2+50Н2О

C17H20N4O6+ 19О2 = 17СО2+10Н2О+2N2

4C9H17NO5+ 43О2 = 36СО2+34Н2О+2N2

4C7H11NO3+ 33О2 = 28СО2+22Н2О+4N2

Органические кислоты: яблочная, бензойная

С4Н6О5 + 3О2 = 4СО2+3Н2О

2C7H6O2 + 15О2 = 14СО2+6Н2О

Рассчитаем ХПК теоретическое в мг О2 на один мг вещества:

1)

2)

3)

4)

5)

6)

7)

8)

9)

10)

11)

12)

13)

14)

Сведем результаты в таблицу в порядке уменьшения величины ХПК:

Вещество

ХПКтеор, мгО2/мг вещества

Витамин А

3,02

Витамин Е

3,01

Изофлавон

2,38

Юглон

1,84

Витамин В6

1,68

Эпикатехин

1,62

Витамин В2

1,62

Эпигаллокатехин

1,57

Витамин В5

1,57

Бензойная кислота

1,56

Эллаговая кислота

1,22

Эллагогендубильная кислота

1,09

Витамин С

0,91

Яблочная кислота

0,72

Таким образом, можно оценить, какое из веществ в составе экстракта более токсично с экологической точки зрения.

Хлорид натрия

По степени воздействия на организм согласно ГОСТ 12.1.007 - 76 ССБТ относится к веществам 3-го класса опасности. При повышенной концентрации в организме может вызвать отёки.

Хлорид калия

Калий хлористый не горюч, пожаро- и взрывобезопасен, по степени воздействия на организм согласно ГОСТ 4568-95относится к веществам 3-го класса опасности. Пылевидные частицы, попадая на кожные раны, ухудшают их заживление. На неповрежденную кожу калий хлористый вредного действия не оказывает. Не образует токсичных соединений в воздушной среде.

ПДКв ионов в воде водных рыбохозяйственных объектов составляет:

· ПДКврСl- = 300 мг/л

· ПДКврNa+ = 120 мг/л

· ПДКврK+ = 50 мг/л

6.4 Охрана атмосферного воздуха от загрязнения

При проведении работы вредные газы, пары не образуются.

6.5 Охрана водоёмов от загрязнения сточными водами

При проведении НИР сточные воды не образуются, организуется замкнутая система водооборота.

6.6 Экологически безопасное обращение с отходами


Подобные документы

  • Сбор и сушка лекарственных растений, сохранение полученного из них сырья и приготовление лекарственных форм. Методы анализа лекарственных средств. Получение водного экстракта силибина субкритической водой и оценка растворимости его сухого экстракта.

    курсовая работа [296,6 K], добавлен 05.06.2011

  • Анализ современных методов концентрирования жидких смесей на примере раствора карбамида. Сущность технологии процесса упаривания. Конструкция выпарного аппарата, обеспечивающего заданную производительность, оптимизация его теплообмена по минимуму затрат.

    курсовая работа [183,3 K], добавлен 08.05.2010

  • Источники и причины загрязнения лекарственных средств. Способы определения примесей в субстанции. Испытание на соли тяжелых металлов, мышьяк растворов лекарственных веществ. Определение потери в массе лекарственного препарата методом высушивания.

    курсовая работа [2,5 M], добавлен 16.09.2017

  • Специфика аналитической химии сточных вод, подготовительные работы при анализе. Методы концентрирования: адсорбция, выпаривание, вымораживание, выделение летучих веществ испарением. Основные проблемы и направления развития аналитической химии сточных вод.

    реферат [171,6 K], добавлен 08.12.2012

  • Технология производства диоксида титана, области применения. Получение диоксида титана из сфенового концентрата. Сернокислотный метод производства диоксида титана из ильменита и титановых шлаков. Производство диоксида титана сульфатным и хлорный методом.

    курсовая работа [595,9 K], добавлен 11.10.2010

  • Физико-химическая характеристика кобальта. Комплексные соединения цинка. Изучение сорбционного концентрирования Co в присутствии цинка из хлоридных растворов в наряде ионитов. Технический результат, который достигнут при осуществлении изобретения.

    реферат [34,9 K], добавлен 14.10.2014

  • Методы окислительно-восстановительного титрования. Основные окислители и восстановители. Факторы, влияющие на окислительно-восстановительные реакции. Применение реакции окисления-восстановления в анализе лекарственных веществ. Растворы тиосульфата натрия.

    презентация [1,0 M], добавлен 21.10.2013

  • Основные стадии технологического процесса выращивания монокристалла методом вытягивания из расплава. Устройство теплового узла, классификация источников нагрева. Применение графитового тигля для выращивания монокристаллов германия методом Чохральского.

    презентация [711,0 K], добавлен 19.02.2016

  • Изучение теоретических основ методов осаждения органических и неорганических лекарственных веществ. Анализ особенностей взаимодействия лекарственных веществ с индикаторами в методах осаждения. Индикационные способы определения конечной точки титрования.

    курсовая работа [58,1 K], добавлен 30.01.2014

  • Принцип работы и конструкция установки концентрирования серной кислоты. Расчет диаметра трубопровода, определение потерь напора на различных участках трубопроводной сети. Выбор центробежного химического насоса и электродвигателя. Режим работы насоса.

    курсовая работа [610,1 K], добавлен 04.01.2013

Работы в архивах красиво оформлены согласно требованиям ВУЗов и содержат рисунки, диаграммы, формулы и т.д.
PPT, PPTX и PDF-файлы представлены только в архивах.
Рекомендуем скачать работу.