Создание РНК-аптамеров, способных связываться с аутоантителами, вырабатываемыми организмом человека при рассеянном склерозе

Химико-ферментативный синтез модифицированной комбинаторной РНК-библиотеки. Способы получения РНК-аптамеров, устойчивых в биологических средах, способных селективно и с высокой аффинностью связывать аутоантитела человека, больного рассеянным склерозом.

Рубрика Медицина
Вид дипломная работа
Язык русский
Дата добавления 08.05.2012
Размер файла 2,6 M

Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже

Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.

Размещено на http://www.allbest.ru/

Размещено на http://www.allbest.ru/

Дипломная работа

Создание РНК-аптамеров, способных связываться с аутоантителами, вырабатываемыми организмом человека при рассеянном склерозе

Содержание

  • Введение
    • 1. Аптамеры к белковым мишеням: методы отбора, свойства и применение (обзор литературы)
    • 1.1 Метод SELEX
    • 1.2 Получение оцДНК- и РНК-аптамеров
    • 1.3 Модификация аптамеров
    • 1.4 Анализ структуры аптамеров
    • 1.5 Применение аптамеров
    • 1.5.1 Аптамеры в качестве средств детекции белков
    • 1.5.2 Аптамеры в качестве терапевтических средств
  • 2. Экспериментальная часть
    • 2.1 Исходные материалы
    • 2.2 Основные методы работы
    • 2.3 Методики эксперимента
      • 2.3.1 Твердофазный фосфитамидный синтез комбинаторной библиотеки олигодезоксирибонуклеотидов
      • 2.3.2 Деблокирование олигодезоксирибонуклеотидов
      • 2.3.3 Выделение олигодезоксирибонуклеотидов
      • 2.3.4 Получение 2'-F-модифицированной РНК-библиотеки
      • 2.3.5 Амплификация 2'-F-модифицированной РНК-библиотеки
      • 2.3.6 SELEX, один раунд
      • 2.3.7 “Негативный” SELEX
      • 2.3.8 Введение радиоактивной метки по 5'-концу 2'-F-пиримидинсодержащей РНК-библиотеки
      • 2.3.9 Определение констант диссоциации комплексов 2'-F-модифицированной РНК-библиотеки с поликлональными аутоантителами
      • 2.3.10 Хроматографическое разделение 2'-F-модифицированной РНК-библиотеки после 10-го раунда SELEX по сродству к поликлональным аутоантителам
      • 2.3.11 Получение плазмидной ДНК на основе вектора pUC18 и дцДНК-библиотеки фракций I, II и III
      • 2.3.12 Приготовление компетентных клеток
      • 2.3.13 Трансформация компетентных клеток плазмидной ДНК
      • 2.3.14 Определение наличия дцДНК-библиотеки в плазмидной ДНК трансформированных клеток
      • 2.3.15 Выделение плазмидной ДНК
      • 2.3.16 Определение наличия дцДНК-библиотеки в полученных плазмидных ДНК
      • 2.3.17 Определение нуклеотидной последовательности плазмидных ДНК
      • 2.3.18 Поиск гомологичных участков РНК-клонов фракций I, II и III 48
      • 2.3.19 Компьютерное моделирование вторичной структуры РНК-клонов фракций I, II и III
    • 3. Получение аптамеров к поликлональным аутоантителам, вырабатываемым организмом человека при рассеянном склерозе (результаты и обсуждение)
    • 3.1 Химико-ферментативный синтез 2'-F-модифицированной РНК-библиотеки
    • 3.2 Оптимизирование и апробация методики отбора аптамеров к поликлональным аутоантителам
    • 3.3 Изучение эффективности связывания обогащенной 2'-F-модифицированной РНК-библиотеки с поликлональными аутоантителами 60
    • 3.4 Хроматографическое разделение 2'-F-пиримидинсодержащей РНК-библиотеки после 10-го раунда отбора на фракции по сродству к поликлональным аутоантителам
    • 3.5 Клонирование и секвенирование фракций 2'-F- пиримидинсодержащей РНК-библиотеки
    • 3.6 Определение гомологичных участков и компьютерное моделирование вторичной структуры индивидуальных 2'-F-модифицированных РНК-аптамеров фракций I, II и III
  • Выводы
    • Список литературы

Список принятых сокращений

В настоящей работе использованы следующие сокращения:

А260 - оптическое поглощение раствора на длине волны 260 нм

о.е. - оптическая единица

НК - нуклеиновая кислота

ДНК - дезоксирибонуклеиновая кислота

кДНК - кодирующая дезоксирибонуклеиновая кислота

дцДНК - двуцепочечная дезоксирибонуклеиновая кислота

оцДНК - одноцепочечная дезоксирибонуклеиновая кислота

РНК - рибонуклеиновая кислота

АТ - антитела

IgG - иммуноглобулины класса G

ОБМ - основный белок миелина

ВИЧ - вирус иммунодефицита человека

AMV - вирус птичьего миелобластоза

РС - рассеянный склероз

е. а. - единица активности

LNA - конформационно затрудненная нуклеиновая кислота

ATP - аденозинтрифосфат

GTP - гуанозинтрифосфат

CTP - цитидинтрифосфат

UTP - уридинтрифосфат

2'-F-UTP - 2'-F-уридинтрифосфат

2'-F-СTP - 2'-F-цитидинтрифосфат

dNTP - дезоксирибонуклеозидтрифосфат

г-[32P]-ATP - г-[32P]-аденозинтрифосфат

N-MeIm - N-метилимидазол

IPTG - изопропилтиогалактозид

X-Gal - 5-бром-4-хлор-3-индолил-в-D-галактопиранозид

BSA - бычий сывороточный альбумин

DMF - диметилформамид

DTT - дитиотреит

THF - тетрагидрофуран

Py - пиридин

DCA - дихлоруксусная кислота

NTA - нитрилтрехуксусная кислота (2-[бис(карбоксиметил)амино]уксусная кислота)

CPG - стекло с контролируемым размером пор

ПААГ - полиакриламидный гель

ПЦР - полимеразная цепная реакция

ОТ-ПЦР - обратная транскрипция с последующей полимеразной цепной реакцией

УФ - ультрафиолет

EDTA - этилендиаминтетрауксусная кислота

Tрис - трис(оксиметил)аминометан

SELEX - systematic evolution of ligands by exponential enrichment (систематическая эволюция лигандов при экспоненциальном обогащении)

Kd - константа диссоциации

ПЛУ - полилинкерный участок

Введение

Аптамеры (от лат. aptus - подходящий, греч. meros - звено) - синтетические однонитевые нуклеиновые кислоты или пептиды, способные связывать свои молекулы-мишени с высокой аффинностью и специфичностью [1-3]. Исторически первыми аптамерами были нуклеиновые кислоты [4, 5]. Метод получения НК-аптамеров, предложенный в 1990 году, получил название SELEX [5] (от англ. systematic evolution of ligands by exponential enrichment - систематическая эволюция лигандов при экспоненциальном обогащении). На сегодняшний день насчитывается более десятка различных методов отбора НК-аптамеров. Большинство из них основано на методе SELEX [2, 5-8] , но существуют и другие подходы к получению аптамеров, например NECEEM (nonequilibrium capillary electrophoresis of equilibrium mixtures) [7, 9]. Наличие различных методов отбора НК-аптамеров позволяет получать специфические лиганды к самым разнообразным молекулам-мишеням: ионам металлов [10], малым органическим молекулам [11], нуклеиновым кислотам [12], белкам [8, 13-17], клеткам [18] и даже организмам [19]. Одним из широко исследуемых классов мишеней для аптамеров являются белки. Благодаря своим свойствам НК-аптамеры к белковым молекулам-мишеням рассматриваются как перспективные инструменты детекции [20-22] и терапии [20, 23-26].

Весьма привлекательными белковыми мишенями для аптамеров являются аутоантитела, вырабатываемые организмом человека при рассеянном склерозе. Рассеянный склероз - тяжелое хроническое аутоиммунное заболевание центральной нервной системы с непредсказуемым, часто прогрессирующим течением [27]. При рассеянном склерозе поражаются головной мозг, зрительные нервы, спинной мозг, что приводит к нарушению соответствующих функций организма. Данное заболевание характеризуется образованием хаотически рассеянных очагов демиелинизации, т.е. утраты миелина - белково-липидной мембраны, покрывающей нервное волокно. Исследования последних лет говорят о том, что при рассеянном склерозе нарабатываются аутоантитела, обладающие функцией протеаз и разрушающие миелиновую оболочку нервных волокон за счет деградации основного белка миелина (ОБМ) [28, 29]. В литературе отсутствуют работы, посвященные отбору и исследованию аптамеров к данным аутоантителам.

Целью данной дипломной работы являлось получение РНК-аптамеров, устойчивых в биологических средах, способных селективно и с высокой аффинностью связывать аутоантитела человека, больного рассеянным склерозом.

Для этого необходимо было решить следующие задачи:

провести химико-ферментативный синтез модифицированной комбинаторной РНК-библиотеки;

оптимизировать и апробировать методику отбора модифицированных РНК-аптамеров к поликлональным аутоантителам человека, больного рассеянным склерозом;

исследовать эффективность связывания обогащенной модифицированной РНК-библиотеки с поликлональными аутоантителами;

исследовать влияние обогащенной модифицированной РНК-библиотеки на деградацию основного белка миелина аутоантителами;

провести клонирование и секвенирование обогащенной модифицированной РНК-библиотеки;

провести анализ первичной и вторичной структуры полученных индивидуальных модифицированных РНК-аптамеров.

Работа выполнялась совместно с Лабораторией ферментов репарации и Группой взаимодействий биополимеров ИХБФМ СО РАН.

Секвенирование было проведено в ЦКП “Секвенирование ДНК” СО РАН.

Основные результаты получены лично дипломником.

1. Аптамеры к белковым мишеням

аптамер синтез аутоантитело

методы отбора, свойства и применение (обзор литературы)

Исторически считалось, что молекулы ДНК и РНК способны лишь хранить и передавать наследственную информацию. Однако открытие каталитической активности РНК послужило толчком к поиску олигонуклеотидов, обладающих и другими функциями. Так были найдены олигонуклеотиды, обладающие каталитической активностью (ДНКзимы, рибозимы), модулирующие экспрессию генов (например, siРНК) и образующие прочные специфичные комплексы (аптамеры).

НК-Аптамеры - синтетические одноцепочечные молекулы ДНК или РНК, получаемые из пула случайных последовательностей в результате отбора по их саособности к высокоэффективному и специфическому связыванию с молекулами-мишенями. На сегодняшний день существуют различные методы получения аптамеров, большинство из которых основано на методе SELEX.

1.1 Метод SELEX

Отбору аптамеров in vitro к различным молекулам-мишеням посвящено множество обзоров [2, 3, 8, 30]. Отбор аптамеров проводят из комбинаторных библиотек олигонуклеотидов. Перед началом селекции проводят дизайн комбинаторной библиотеки, представляющей собой рандомизированный район, фланкированный двумя участками с фиксированной последовательностью (рис. 1).

Рис. 1. Комбинаторная библиотека олигонуклеотидов.

При дизайне комбинаторной библиотеки учитывают такие факторы, как тип библиотеки, длина рандомизированного участка, свойства константных районов. Рандомизированная часть комбинаторной библиотеки отвечает за формирование разнообразных пространственных структур. Константные участки необходимы для амплификации комбинаторной библиотеки. Чем больше длина рандомизированного района, тем больше число разнообразных пространственных структур, которые формирует библиотека. Однако рандомизированный район редко превышает 100 нт. Во-первых, при химическом синтезе комбинаторной библиотеки, чем больше ее длина, тем меньше конечный выход. Во-вторых, на первый раунд отбора берут от сотен пмолей до нескольких нмолей комбинаторной библиотеки, что составляет примерно от 1014 до 1016 разнообразных молекул. Это колчество молекул соответствует комбинаторной библиотеке с рандомизированным районом 25 нт (425 = 1015). Поэтому в случае протяженных комбинаторных библиотек в отборе принимает участие то же количество разнообразных молекул, что и в случае коротких комбинаторных библиотек. В последние годы наиболее часто используют комбинаторные библиотеки с рандомизированным районом длиной 30 - 40 нт.

Полученную химическим синтезом комбинаторную библиотеку инкубируют с молекулой-мишенью (рис. 2). Образовавшиеся комплексы отделяют от несвязавшихся молекул, разрушают и амплифицируют связавшиеся с мишенью олигонуклеотиды, получая обогащенную библиотеку.

Рис. 2. Общая схема получения аптамеров. Каждый раунд отбора состоит из 1. дизайн комбинаторной оцДНК- или РНК-библиотеки; 2. химический синтез комбинаторной стадий: оцДНК- или РНК-библиотеки; 3. инкубирование комбинаторной библиотеки олигонуклеотидов с молекулой-мишенью; 4. отделение комплексов комбинаторной библиотеки с мишенью от несвязавшихся молекул; 5. разрушение комплексов комбинаторной библиотеки с мишенью и амплификация связавшихся с мишенью олигорибонуклеотидов; 6. клонирование и секвенирование обогащенной библиотеки после последнего раунда отбора, определение нуклеотидных последовательностей индивидуальных аптамеров.

Комбинаторная библиотека проходит несколько раундов отбора до тех пор, пока сродство обогащенной библиотеки к молекуле-мишени не достигнет максимума. Обычно для этого требуется 4 - 20 раундов SELEX, что занимает от нескольких недель до нескольких месяцев. Применение автоматических методов отбора аптамеров существенно ускоряет этот процесс и позволяет проводить до 10 раундов отбора в день [31].

Обогащенную дцДНК-библиотеку, полученную в последнем раунде SELEX, клонируют и секвенируют. Последовательности индивидуальных клонов анализируют и определяют оптимальную аптамерную последовательность (п. 1.4.).

С тех пор, как впервые был предложен метод SELEX для отбора аптамеров [4, 5], создано и апробировано более десятка его различных модификаций. В табл. 1 приведены виды SELEX, использующиеся при отборе аптамеров к белковым молекулам-мишеням.

Таблица 1. Виды отбора НК-аптамеров к белковым мишеням.

Название метода отбора

Особенности метода

Ссылка

Counter -SELEX

В ходе отбора комбинаторная библиотека поочередно инкубируется с белком-мишенью и родственным ему белком. Амплифицируются олигонуклеотиды, связывающиеся только с молекулой-мишенью.

[32-34]

Toggle-SELEX

В ходе отбора комбинаторная библиотека поочередно инкубируется с несколькими молекулами-мишенями. Амплифицируются олигонуклеотиды, связывающиеся со всеми молекулами-мишенями.

[35]

SELEX with structurally constrained libraries

В отборе используется комбинаторная библиотека, последовательность фиксированных участков которой формирует определенную вторичную структуру. Такой же вторичной структурой будет обладать полученный аптамер.

[5, 36]

Genomic SELEX или cDNA-SELEX

В отборе используется комбинаторная библиотека, рандомизированный район которой заменен на геномную последовательность. В качестве мишени используется белок того же организма, которому принадлежит геномная последовательность. Метод позволяет выявить в геномной последовательности сайты связывания белков.

[37]

Tailored SELEX

В отборе используется комбинаторная библиотека с короткими константными участками (10 нт). Для амплификации связавшихся с мишенью олигонуклеотидов проводится реакция лигирования участков с фиксированной последовательностью к библиотеке. Метод используется для получения коротких аптамеров.

[38, 39]

Blended SELEX

В отборе используется комбинаторная библиотека, включающая какой-либо лиганд ненуклеотидной природы. Метод позволяет придать аптамеру дополнительные свойства, помимо мишень-связывающих.

[40]

Covalent SELEX или Cross-linking SELEX

В отборе используется комбинаторная библиотека, которая содержит активные группы, способные ковалентно связывать молекулу-мишень. Таким же свойством будет обладать полученный аптамер.

[41, 42]

TECS-SELEX (target

expressed on cell surface-SELEX)

В качестве мишени используется экспрессирующаяся на клеточной поверхности рекомбинантная или природная молекула-мишень.

[43]

EMSA-SELEX (еlectrophoretic mobility shift assays-SELEX)

В ходе отбора для разделения комплексов олигонуклеотидов с мишенью и несвязавшихся молекул используют гель-электрофорез.

[17, 44, 45]

CE-SELEX (capillary electrophoresis-SELEX)

В ходе отбора для разделения комплексов олигонуклеотидов с мишенью и несвязавшихся молекул используют капиллярный электрофорез.

[13, 46]

FluMag-SELEX

В ходе отбора мишень иммобилизуют на магнитных шариках. Для разделения комплексов олигонуклеотидов с мишенью и несвязавшихся молекул применяют магнитное поле.

[36, 47]

Как видно из табл. 1, выбор метода отбора определяется особенностями мишени и свойствами, которыми должен обладать аптамер. Так, например, TECS-SELEX используется для отбора аптамеров к мишеням-рецепторам, а Covalent SELEX применяют для получения аптамеров, ковалентно связывающих молекулы-мишени.

Одной из важнейших стадий отбора аптамеров является стадия отделения комплексов олигонуклеотидов с молекулами-мишенями от несвязавшихся молекул. Все способы отделения комплексов от несвязавшихся молекул можно разделить на две группы.

I. Методы, основанные на иммобилизации белка-мишени:

1. ковалентная иммобилизация (белок ковалентно связывают с аффинным сорбентом, например, N-гидроксисукцинимид-активированной сефарозой [40], Ni-NTA аффинной смолой [48, 49] и др.);

2. нековалентная иммобилизация (белок иммобилизуют за счет сил адсорбции на ПЦР-пробирке [16, 50], гидрофобных парамагнитных шариках [36, 51, 52], магнитных шариках [36, 47, 53], нитроцеллюлозе [5, 54-57], стрептавидиновых “шариках” в случае биотинилированных белков-мишеней [58], модифицированной сефарозе [18, 59]. Иногда в белок-мишень вводят модификации, способствующие лучшей адсорбции [47] ).

Для отделения несвязавшихся молекул от иммобилизованных комплексов проводят отмывку буфером. В случае использования магнитных шариков для разделения комплексов и несвязавшихся молекул применяют магнитное поле.

II. Методы, не использующие иммобилизацию белка-мишени:

разделение комплексов и несвязавшихся молекул методом электрофореза в геле [16, 45, 46, 57] или в капиллярах [14, 47, 60] в неденатурирующих условиях.

Каждый метод разделения комплексов и несвязавшихся молекул имеет свои преимущества и недостатки. Гель-электрофорез является самым доступным из вышеперечисленных методов. Однако, при его использовании часть комплексов, а, следовательно, и аптамерных последовательностей, остается в геле, то есть теряется. Электрофорез в капиллярах позволяет использовать для отбора малое количество мишени - десятки-сотни пмоль, но при этом необходимо учитывать электрофоретическую подвижность мишени, ее адсорбционные свойства и др. Ковалентная иммобилизация белка-мишени позволяет многократно использовать одну и ту же колонку для отделения несвязавшихся молекул от комплексов. Однако метод обладает рядом недостатков: 1) для иммобилизации необходимо большое количество белка-мишени; 2) в ходе отбора самые прочные комплексы комбинаторной библиотеки и мишени могут оставаться неразрушенными, что приводит к потере искомых аптамерных последовательностей; 3) в ходе иммобилизации белка-мишени существует вероятность связывания его каталитического центра с носителем, что препятствует отбору аптамеров-ингибиторов. Наиболее приемлемым из всех способов отделения комплексов белков-мишеней с комбинаторной библиотекой от несвязавшихся молекул является нековалентная иммобилизация. Инкубирование мишени с комбинаторной библиотекой с последующей иммобилизацией на нитроцеллюлозных фильтрах гарантирует доступность для связывания всей поверхности белка-мишени. Однако доля элюируемых с фильтров олигонуклеотидов составляет 50-80%. Другим методом нековалентной иммобилизации является адсорбция белка-мишени на парамагнитных шариках или стенках ПЦР-пробирки. В первом случае для разрушения образовавшихся комплексов мишени и комбинаторной библиотеки используют специальные элюенты. Во втором случае для разрушения комплексов применяют термическую денатурацию, что позволяет проводить образование комплексов олигонуклеотидов с белком-мишенью и все реакции стадии амплификации в одной ПЦР-пробирке.

В ходе отбора могут быть использованы последовательно несколько различных методов отделения комплексов от несвязавшихся молекул, что позволяет выделить последовательности с максимальным сродством к молекуле-мишени [57].

В процессе SELEX олигонуклеотиды могут также связываться с молекулами - “не мишенями”. Для исключения таких олигонуклеотидных последовательностей применяют “негативный” SELEX [3]. Комбинаторную библиотеку инкубируют в условиях образования комплекса с мишенью, но без белка-мишени. Несвязавшиеся молекулы амплифицируют и используют в следующем раунде отбора. При этом “негативный” SELEX может проводиться как до, так и после раунда отбора аптамера к молекуле-мишени.

Не менее важным, чем способ отделения комплексов от несвязавшихся молекул, является выбор условий проведения отбора аптамеров к белковым мишеням. Отбор должен проводиться в тех условиях, в которых впоследствии будет использоваться аптамер. Так, например, для дальнейшего использования аптамера in vivo оптимальными будут считаться условия, наиболее близкие к физиологическим.

Другим критическим моментом в процессе отбора как РНК- , так и ДНК-аптамеров является стадия разрушения комплекса с целью отделения олигонуклеотидов от молекулы мишени. Именно от нее зависит конечный результат всего эксперимента. Если условия отделения будут слишком “мягкими”, самые прочные комплексы аптамеров с молекулами-мишенями не разрушатся и последовательности с наибольшим сродством к мишени будут утеряны. В слишком “жестких” условиях есть вероятность разрушить молекулу-мишень или комбинаторную библиотеку.

Следует отметить важность чистоты и количества мишени. Если мишень содержит примеси, в ходе отбора могут быть также получены аптамеры на молекулы, не являющиеся мишенями. Малых количеств молекулы-мишени может быть недостаточно для того, чтобы все способные связаться с мишенью олигонуклеотиды образовали комплекс, что ведет к потере части аптамерных последовательностей. Слишком большие количества мишени на конечных этапах SELEX снижают селективность отбора, уменьшают конкуренцию между олигонуклеотидами за место связывания. Поэтому для получения аптамеров с высокой аффинностью и селективностью в каждом последующем раунде SELEX условия отбора ужесточают, проводя последовательное повышение отношения концентрации мишени к концентрации олигонуклеотидов от 1:10 до 1:100 [1, 35].

1.2 Получение оцДНК- и РНК-аптамеров

Как было ранее отмечено, аптамерами могут быть одноцепочечные молекулы ДНК или РНК. В случае отбора оцДНК-аптамеров связавшиеся с мишенью молекулы ДНК амплифицируют методом ПЦР с использованием праймеров, комплементарных константным участкам комбинаторной библиотеки (рис. 2) [3, 9, 31]. Для получения обогащенной оцДНК-библиотеки цепи полученной дцДНК необходимо разделить. Для этого в одну из цепей дцДНК (чаще не в целевую) вводят какой-либо объемный заместитель: биотин [4] или биотин-стрептавидиновый комплекс [1, 46, 61], флуоресцентный краситель [62] или олигонуклеотид-олигоэтиленгликолевый кэп [48, 63]. Положение целевой цепи в геле детектируют в УФ-свете [1, 4, 62], по флуоресценции красителя [62] или, если в нее была введена радиоактивная метка, методом радиоавтографии [46]. Систему биотин-стрептавидин применяют для разделения цепей ДНК и в другом варианте. Биотинилированную по одной цепи дцДНК инкубируют со стрептавидином, иммобилизованном на каком-либо носителе, с последующей денатурацией и выделением целевой оцДНК промывкой [41, 54]. Другим вариантом получения обогащенной оцДНК-библиотеки является введение в 5'-праймер, используемый для амплификации, модификаций, способствующих деградации измененной цепи в соответствующих условиях. Примерами могут служить введение уридина по 3'-концу праймера с последующим щелочным гидролизом модифицированной последовательности [64] или введение по 5'-концу праймера фосфатной группы с дальнейшей обработкой экзонуклеазой фага л, которая расщепляет фосфорилированную цепь ДНК [65]. Проведение асимметричной ПЦР с избытком концентрации праймера, отвечающего аптамерной последовательности оцДНК, тоже приводит к желаемому результату [67]. Полученная обогащенная оцДНК-библиотека участвует в следующем раунде отбора.

В случае получения РНК-аптамеров синтезированную комбинаторную ДНК-библиотеку переводят в дцДНК-форму с использованием фрагмента Кленова ДНК-полимеразы E.coli и 5'-праймера для амплификации. Полученную дцДНК транскрибируют с помощью Т7 РНК-полимеразы. Для этого 5'-праймер для амплификации должен содержать последовательность промотора Т7 РНК-полимеразы. Полученную РНК-библиотеку используют в первом раунде отбора. Для получения обогащенной РНК-библиотеки связавшиеся с мишенью молекулы РНК амплифицируют методом ОТ-ПЦР с использованием праймеров, комплементарных константным участкам комбинаторной библиотеки (рис. 2). ПЦР-продукт выделяют из реакционной смеси и используют в качестве матрицы в реакции транскрипции in vitro. Полученная обогащенная РНК-библиотека участвует в следующем раунде отбора [1, 3, 31].

Каждый вид аптамеров - и ДНК, и РНК - имеет свои преимущества. ДНК-аптамеры в отличие от РНК-аптамеров более стабильны в биологических средах [66]. Однако РНК-аптамеры за счет 2'-OH группы способны образовывать большее количество разнообразных вторичных структур (п. 1.4.). Повышение стабильности РНК-аптамеров в биологических средах может быть достигнуто введением в олигонуклеотидную цепь соответствующих модификаций (п. 1.3.).

1.3 Модификация аптамеров

Существует два альтернативных пути модификации аптамеров - до отбора [3, 67, 68] и после него [3, 69]. При введении модификаций до первого раунда SELEX важно, чтобы полученная модифицированная комбинаторная библиотека была устойчива в условиях проведения отбора и участвовала в реакциях стадии амплификации. Модификации, которые вводят в последовательность полученного аптамера, не должны снижать его аффинность и специфичность к молекуле-мишени.

Для введения модифицированных нуклеотидов в последовательность комбинаторной библиотеки или полученного аптамера используют мутантные аналоги ДНК- или РНК-полимераз, эффективно включающие модифицированные нуклеозидтрифосфаты в олигонуклеотидную цепь, или подбирают условия, в которых природные полимеразы будут эффективно включать модифицированные нуклеозидтрифосфаты.

На данный момент существуют различные типы модификаций как комбинаторных библиотек, так и индивидуальных аптамеров, удовлетворяющие вышеперечисленным условиям.

Для придания аптамерам новых свойств наиболее часто используют введение заместителей по С5-положению пиримидиновых нуклеотидов исходной библиотеки [66, 70] (рис. 3).

С5-модифицированный цитидин С5-модифицированный уридин

Рис. 3. С5-Модифицированные пиримидиновые нуклеотиды.

Такие модификации позволяют получить аптамеры к молекулам-мишеням, для которых отбор аптамеров с использованием немодифицированной олигонуклеотидной библиотеки невозможен. Так, несмотря на то, что олигонуклеотиды являются полианионами, введение в состав исходной библиотеки олигонуклеотидов в С-5 положение положительно заряженного заместителя позволяет получить аптамер к отрицательно заряженным молекулам-мишеням [71]. Возможно также получение аптамеров, ковалентно связывающихся с молекулой-мишенью. Для этого используют библиотеки олигонуклеотидов, которые содержат фотоактивируемые группы, например, бром или йод [72]. С-5-Модифицированные пиримидиновые нуклеозидтрифосфаты узнаются как природными, так и мутантными полимеразами, что позволяет использовать их в процессе отбора [73]. При сравнении сродства модифицированного и не модифицированного аптамеров к одной и той же молекуле-мишени Kd комплексов белков с С5-модифицированными аптамерами может отличаться от Kd комплексов тех же белков с немодифицированными аптамерами как в большую, так и в меньшую сторону [66].

Для повышения устойчивости аптамеров к эндонуклеазной деградации широко используют введение модификаций по 2'-положению, таких как 2'-OCH3, 2'-NH2 или 2'-F (рис. 4) [3, 66]. Модифицировать по 2'-положению можно как исходную, так и обогащенную библиотеку олигонуклеотидов.

4'-тионуклеозид LNA

2'-аминонуклеозид 2'-О-метилнуклеозид 2'-фторнуклеозид

Рис. 4. Модификации рибозного остатка пиримидиновых (Pyr) нуклеозидов.

Аптамеры, содержащие 2'-NH2-модифицированные пиримидиновые нуклеотиды, более стабильны в сыворотке крови по сравнению с немодифицированными РНК-аналогами [74], однако такая модификация снижает термодинамическую стабильность дуплексной части как ДНК-, так и РНК-аптамеров [75]. 2'-OCH3-Модифицированные нуклеотиды широко используются для повышения нуклеолитической стабильности как индивидуальных аптамеров [67], так и исходных олигонуклеотидных библиотек [76]. Их синтез дешевле, чем синтез 2'-NH2- и 2'-F-содержащих нуклеотидов, а 2'-OCH3-модифицированные аптамеры обладают высокой аффинностью и стабильностью в биологических средах. Более того, 2'-O-метилированные рибонуклеотиды встречаются в природе в рибосомальных и транспортных РНК млекопитающих [77]. Другой модификацией, повышающей стабильность РНК-аптамеров в биологических средах, является замена 2'-OH группы на 2'-F [49, 67]. 2'-F-Модифицированные пиримидиновые нуклеотиды были использованы для получения Macugen - первого аптамера, прошедшего клиническую проверку [67], и anti-Factor IXa аптамера [78], который сейчас проходит клинические испытания. 2'-F-Модифицированные олигорибонуклеотиды не токсичны in vivo [77]. LNA-содержащие олигонуклеотиды также можно отнести к 2'-модифицированным НК [79]. Они способны участвовать в реакции транскрипции и ПЦР, их дуплексы отличаются высокой термостабильностью [79]. Введение LNA-нуклеотидов существенно повышает стабильность модифицированных олигонуклеотидов в биологических средах. Исследование токсичности LNA-содержащих олигонуклеотидов пока не завершено [77]. Вышеупомянутые 2'-модифицированные нуклеотиды могут быть включены в состав аптамеров как химическим [66, 80], так и химико-ферментативным путем с использованием мутантных полимераз [66, 76] или природных полимераз в соответствующих условиях [1, 66, 67, 74].

К повышающим нуклеолитическую устойчивость олигонуклеотидов модификациям относится также замена атома кислорода в 4'-положении на серу в пиримидиновых нуклеотидах [80, 81] (рис. 4). С использованием 4'-тиомодифицированной РНК-библиотеки был получен РНК-аптамер к б-тромбину, содержащий 4'-S-U и 4'-S-C, который был в 50 раз более устойчив к деградации РНКазой A, чем немодифицированные РНК [81].

Весьма эффективно повышают устойчивость к нуклеазам модификации по межнуклеозидной фосфатной группе (рис. 5).

5'-фосфоротиоат 5'-б-P-боранофосфат

Рис. 5. Модификации межнуклеозидной фосфатной группы в молекулах аптамеров.

Боранофосфатные межнуклеозидные мостики формируются природной Т7 РНК-полимеразой [82] или AmpliTaq ДНК-полимеразой [83] c использованием 5'-б-P-боранонуклеозидтрифосфатов в случае РНК- и ДНК-аптамеров, соответственно. Данная модификация значительно повышает стабильность аптамера. Другой удачной модификацией аптамеров является включение в их состав фосфоротиоатных межнуклеозидных мостиков [68, 84, 85]. Такие аптамеры являются высокоаффинными и существенно более устойчивыми к деградации нуклеазами. Недостатком фосфоротиоатмодифицированных олигонуклеотидов является их неспецифическое взаимодействие с белками in vivo [77].

По аналогии с природными процессами, одним из эффективных способов защиты НК от деградации экзонуклеазами является “кэпирование” (рис. 6). В качестве “кэпа” на 3'-конце олигонуклеотидов используют, например, концевую 3'-3' фосфодиэфирную связь (“инвертированный” тимидин) [50, 86], или биотиновый “кэп” [50, 87]. В качестве “кэпа” на 5'-конце используют полиэтиленгликоль [86] или тринуклеотидный “кэп”, присоединенный к аптамеру 5'-5'-межнуклеотидной связью [88]. При этом наличие “кэпа” не затрудняет связывание аптамера с молекулой-мишенью [86].

3'-“Инвертированный” тимидин 5'-Полиэтиленгликоль

Рис. 6. Варианты 3'- и 5'- “кэпов” аптамеров.

Шпигельмеры (Spiegelmers) (“зеркальные” аналоги аптамеров, состоящие из L-нуклеотидов) - единственный тип аптамеров, устойчивый к деградации и эндо-, и экзонуклеазами [40]. Для отбора шпигельмеров используют комбинаторную библиотеку, состоящую из природных нуклеотидов, но в ходе отбора комбинаторную библиотеку инкубируют с белком-энантиомером белка-мишени. Полученные после отбора аптамеры синтезируют химически с использованием L-аналогов мономеров.

1.4 Анализ структуры аптамеров

Для определения нуклеотидных последовательностей аптамеров полученную в последнем раунде SELEX обогащенную библиотеку в дцДНК-форме клонируют и секвенируют [3, 4]. Для этого обогащенную дцДНК-библиотеку амплифицируют с использованием праймеров, содержащих сайты рестрикции соответствующих эндонуклеаз. Полученную дцДНК и вектор, содержащий в полилинкерном участке сайты рестрикции соответствующих эндонуклеаз рестрикции, инкубируют с рестриктазами для образования “липких” концов. Далее комбинаторную библиотеку и вектор “сшивают” действием Т4 ДНК-лигазы. Полученную плазмидную ДНК используют для трансформации компетентных клеток E.coli. После наращивания клеточной массы полученных трансформированных колоний E.coli плазмидную ДНК выделяют и секвенируют [3, 4, 16]. Обычно секвенируют порядка 30 -100 клонов [3, 4]. Полученные нуклеотидные последовательности анализируют с использованием таких программых пакетов, как ClustulW [89] или MEME [90], и выявляют их гомологичные участки [3, 91]. Клоны, обладающие масимально схожими нуклеотидными последовательностями, объединяют в группы, проводят повторный анализ нуклеотидных последовательностей внутри группы и выявляют консервативные участки. Именно консервативные участки аптамеров отвечают за взаимодействие с мишенью. Ранее было показано, что главную роль в связывании аптамера с мишенью играют неспаренные участки олигонуклеотида, а часть аптамера, обладающая стабильной вторичной структурой, служит для поддержания правильного расположения участков, узнающих мишень [9, 79]. Поэтому для всех полученных клонов проводят компьютерное моделирование вторичной структуры, обычно используя программный пакет mfold [92]. В состав вторичной структуры олигонуклеотидов входят так называемые шпилечные структуры (структура “стебель-петля”) [13, 93], “псевдоузлы” [55, 93], в случае G-богатых последовательностей - “G-квадруплексы” [33, 94, 95] (рис. 7)

При этом для ДНК-аптамеров характерными являются G-квадруплексы различных типов [95], а для РНК-аптамеров - G-квадруплексы [96], псевдоузлы [93] и структуры типа стебель-петля [49].

“Стебель-петля” “Псевдоузел”

“G-квадруплекс”

Рис. 7 Типы пространственной структуры олигонуклеотидов: “стебель-петля”, “псевдоузел”, “G-квадруплекс”.

Для каждого полученного клона измеряют константу диссоциации его комплекса с мишенью, т.е. определяют его сродство к мишени. Для определения Kd часто применяют EMSA (анализ изменения электрофоретической подвижности) [45, 93] или адсорбцию на нитроцеллюлозных фильтрах [6, 55] в случае радиоактивно меченной комбинаторной библиотеки, а также поверхностный плазмонный резонанс (SPR) [35, 49] и измерение флуоресценции с использованием флуоресцентных зондов Beacon [41] для комбинаторной библиотеки без радиоактивной метки. Обычно константы диссоциации комплексов белок-аптамер лежат в пределах 10-9 - 10-11 M [9, 35], что является показателем большого сродства аптамера к молекуле-мишени. Также исследуют влияние полученных клонов на молекулу-мишень. Большинство аптамеров являются ингибиторами своих мишеней [35, 40], но существуют также аптамеры-активаторы [97, 98].

Из полученных клонов выбирают те, которые обладают необходимыми свойствами (например, аптамеры-ингибиторы), а также наибольшими сродством и специфичностью к молекуле-мишени и дальше работают только с ними. Для того чтобы определить мишень-связывающие участки аптамера, на комплекс аптамер-мишень действуют нуклеазами и химическими реагентами, специфически расщепляющими одноцепочечные и двуцепочечные участки олигонуклеотидов. Такой анализ структуры аптамера называют футпринтингом [3, 35, 93], а полученную белок-связывающую часть аптамера - “укороченным” аптамером. “Укороченные” аптамеры обычно обладают практически таким же [55], а иногда даже большим сродством к молекуле-мишени [36]. Получение “укороченного” аптамера позволяет также в дальнейшем снизить затраты на его синтез. Введение точечных мутаций в последовательность “укороченного” аптамера позволяет выявить влияние на взаимодействие с мишенью отдельно взятого нуклеотида [36]. Завершающим этапом анализа структуры аптамера является получение трехмерной структуры его комплекса с белком-мишенью. Для этого применяют метод ковалентных сшивок [43], ЯМР [99], кристаллографию и дифракцию рентгеновских лучей [3, 100].

Полученные данные о структуре и свойствах выделенного аптамера позволяют найти ему соответствующее практическое применение.

1.5 Применение аптамеров

Аптамеры к белковым молекулам-мишеням широко применяются в различных областях молекулярной биологии и медицины. Способность аптамеров образовывать с молекулой-мишенью прочные комплексы позволяет использовать их в качестве средств детекции [22, 23, 85, 101-103], для очистки белков [104, 105], для исследования структуры белков и функций оцДНК и РНК в живой клетке [106-108], а также в качестве потенциальных терапевтических средств [25, 26, 109, 110].

1.5.1 Аптамеры в качестве средств детекции белков

На данный момент существует несколько различных систем детекции белков на основе аптамеров. Все их можно разделить на электрохимические, оптические и гравиметрические методы анализа.

Детекция белка электрохимическими методами основана на измерении разности электропроводности системы до введения белка и после. Электрохимические системы детекции бывают “односторонними” (single-site binding assay) [101, 111] и “двусторонними” (dual-site binding assay или sandwich assay) [85, 112]. Методы “одностороннего” анализа позволяют детектировать белок-мишень непосредственно при его взаимодействии с аптамером. Все они используют в качестве основы аптамеры, иммобилизованные на проводящей подложке: электроде [101, 111, 113], полипирроле [114], кремниевой подложке [115] или одностенной углеродной нанотрубке [116]. Для получения сигнала используют молекулы-репортеры - доноры или акцепторы электронов, такие как метиленовый синий [101, 114], гексацианоферраты 3+ /4+ [114], гексаамминорутенаты 3+ [117], ферроцен [113]. При этом молекула-репортер изначально либо находится вблизи проводящей подложки и сигнал наблюдается [101], либо удалена от него и сигнала нет [113]. После взаимодействия аптамера с мишенью его конформация меняется так, что происходит “переключение” - “выключение” или “включение” сигнала, соответственно. С использованием “односторонних” методов анализа созданы системы детекции б-тромбина человека [101, 111, 113, 116, 118], тромбоцитарного фактора роста BB (PDGF-BB) [114, 115], иммуноглобулина Е [114], лизоцима [117]. В случае “двусторонних” систем мишень детектируется по образованию тройного комплекса антитело-белок-аптамер или аптамер-белок-аптамер*, что повышает специфичность и чувствительность анализа. В последнем случае аптамеры должны связывать белок-мишень в разных неперекрывающихся участках. “Двусторонняя” система детекции состоит из молекулы-“захватчика”, аптамера [119, 120] или антитела [85, 112, 121-123], иммобилизованного на проводящей подложке, и молекулы-“детектора”, в качестве которых зачастую выступают аптамеры, модифицированные наночастицами металлов [120, 123, 124], ферментами [121] и целыми системами амплификации по типу “катящегося колеса” [122]. На основе “двусторонних” методов анализа созданы системы детекции б-тромбина человека [85, 120, 123], тромбоцитарного фактора роста BB (PDGF-BB) [112, 122], иммуноглобулина Е [121].

Оптические системы детекции белковых молекул-мишеней делятся на флуоресцентные и колориметрические методы анализа. Детекция флуоресценции используется довольно часто ввиду наличия большого числа различных флуорофоров и тушителей и легкости синтеза флуоресцентно меченых аптамеров. Такие аптамеры получили название сигнальных аптамеров. Одним из самых распространенных методов детекции является использование системы флуорофор-тушитель [125]. На данный момент такие системы анализа считаются полуколичественными. Другой тип флуоресцентных методов анализа основан на переносе энергии между флуоресцентными молекулами - донором и акцептором (FRET - fluorescence resonance energy transfer) [126]. При образовании комплекса аптамер-мишень происходит удалание или сближение донора и акцептора и появление или исчезновение сигнала, соответственно. Недостатком данного метода является его повышенная чувствительность, например, к природе красителя, длине спейсера, взаимодействию краситель-краситель и др. В связи с этим метод трудно применим в биологических средах из-за возрастания шумового сигнала. Использование пиренильных производных аптамеров также применяется для детекции белковых молекул-мишеней [127]. При связывании аптамера с белком-мишенью образуется пиренильный эксимер и происходит смещение максимума испускания флуоресценции с 400 нм до 485 нм. Однако данный метод также трудно применим для исследования сложных биологических проб из-за большого шумового сигнала. На основе флуоресцентных аптасенсоров были созданы системы детекции Tat белка ВИЧ [125], б-тромбина человека [126], тромбоцитарного фактора роста (PDGF) [127]. Колориметрические методы анализа белков базируются на аптамер-зависимой агрегации наночастиц золота [128-130]. Для определения тромбоцитарного фактора роста (PDGF) было предложено ковалентно иммобилизовать аптамер к PDGF на наночастицы золота [129]. При образовании комплексов аптамеров с белком-мишенью в условиях низкой концентрации мишени цвет раствора меняется от красного до розового. При средней концентрации белка образуется комплекс молекул PDGF и аптамеров, иммобилизованных на наночастицах, фиолетового цвета. В избытке белка раствор снова становится розовым из-за образования отдельных наночастиц золота, покрытых молекулами PDGF. С использованием ковалентно связанных с наночастицами аптамеров также была создана система детекции тромбина [130]. После связывания аптамера с мишенью происходит каталитическое увеличение размеров наночастиц золота в присутствии HAuCl4 и NADH, за счет которого происходит усиление сигнала. Аналогичная система с применением каталитического нанесения слоя серебра на наночастицы золота была применена для детекции тромбоцитарного фактора роста BB (PDGF-BB) [131]. Возможно также использование и нековалентного взаимодействия аптамеров с наночастицами золота [128]. Свободные молекулы аптамеров электростатически связываются с наночастицами золота и предотвращают их агрегацию. При образовании комплекса белок-аптамер свободные от аптамеров наночастицы агрегируют под действием солей.

Гравиметрические биосенсоры определяют концентрацию белка по изменению сигнала, зависящего от массы пробы, связанной с их активной поверхностью. Их можно разделить на сенсоры, использующие затухающие волны (поверхностный плазмонный резонанс (SPR), акустические сенсоры (QCM, SAW)) и микромеханические кантиливерные сенсоры (cantilever-based sensors). SPR-аптасенсоры детектируют изменение резонансного угла, возникающее при образовании комплекса аптамер-мишень. С использованием SPR-метода были созданы сенсоры на Tat белок ВИЧ-1 [132], прионовый белок (PrP) мыши [133] и фактор роста сосудистого эндотелия (VEGF) [134]. Микрогравиметрические методы анализа с применением QCM-аптасенсоров детектируют образование комплексов аптамер-мишень по изменению частоты резонансных колебаний кварцевых кристаллов. Уже созданы детектирующие системы такого типа для тромбина [135] и Tat белка ВИЧ-1 [132]. SAW-аптасенсоры также используют пьезоэлектрические кварцевые кристаллы. К таким аптасенсорам относятся системы детекции б-тромбина человека и белка Rev [136], комплекса б-тромбина и антитромбина III человека [137]. В случае кантиливерных сенсоров аптамер иммобилизуют на вершине кантиливера. При образовании комплекса аптамер-мишень кантиливер отклоняется от своего первоначального положения, что можно детектировать оптическими или электрохимическими методами. На основе таких аптасенсоров возможна детекция Taq ДНК полимеразы [138] и геликазы вируса гепатита С [139].

1.5.2 Аптамеры в качестве терапевтических средств

Аптамеры как терапевтические средства обладают рядом преимуществ по сравнению с традиционными лекарственными средствами. По своей высокой специфичности и сродству к мишеням аптамеры сравнимы с антителами, но превосходят их по целому ряду характеристик, таких как лучшая способность проникать через биологические мембраны из-за меньшего размера молекулы, низкая иммуногенность, а также возможность химического или химико-ферментативного синтеза в препаративных количествах. Действие аптамеров in vivo может быть пролонгировано или замедлено посредством соответствующих модификаций. Все аптамеры, обладающие терапевтическим действием, можно разделить по выполняемым ими функциям на несколько групп: аптамеры-ингибиторы, аптамеры-приманки, регулируемые аптамеры, мультивалентные аптамеры, аптамеры-доставщики. Рассмотрим каждую из указанных групп.

Аптамеры-ингибиторы подавляют действие молекул-мишеней, образуя с ними прочные комплексы. Одним из самых известных аптамеров-ингибиторов является Pegaptanib (препарат Macugen) [67, 109]. Pegaptanib с высокой аффинностью связывает фактор роста сосудистого эндотелия (VEGF). В 2004 году он прошел испытания FDA в качестве лекарственного препарата для лечения возрастной дегенерации макулы и на данный момент проходит клинические испытания в качестве лекарственного препарата для лечения диабетической ретинопатии. К аптамерам-ингибиторам, которые проходят клинические испытания, также относятся аптамеры к нуклеолину [140, 141], тромбину [142], фактору IXa [143, 144], фактору von Willebrand [143].

Высокий уровень аутоантител к ДНК характерен для пациентов, страдающих таким аутоиммунным заболеванием, как системная красная волчанка. В работе [18] описано получение РНК-аптамера к моноклональному аутоантителу G 6-9, который ингибировал связывание ДНК с аутоантителом. Эти данные говорят о возможности создания терапевтических препаратов на основе аптамеров к аутоантителам.

Аптамеры-приманки имитируют строение белок-узнающих сайтов природных НК, за счет чего образуют комплексы с ДНК- и РНК- связывающими белками. Уже созданы аптамеры-приманки к белкам семейства E2F [145, 146], Tat белку ВИЧ [147, 148], фактору транскрипции NF-kB [149, 150] и к аутоантителам человека больного миастенией [151].

Регулируемые аптамеры. Одной из проблем при создании лекарств является вопрос о длительности терапевтического действия препарата. Именно в таких случаях используют регулируемые аптамеры. Они состоят из двух компонентов: устойчивого в биологических средах аптамера, обладающего терапевтическим действием, и немодифицированного олигонуклеотида-модулятора, комплементарного части аптамерной последовательности. Попадая в организм человека, олигонуклеотиды-модуляторы деградируются нуклеазами, постепенно освобождая молекулы аптамеров, что пролонгирует их терапевтическое действие. Таким аптамером является аптамер REG-1, ингибирующий фактор коагуляции IXа [144]. Он уже прошел 1-ю и 2-ю фазы клинического исследования. 1-я фаза была пройдена удачно, результаты 2-й фазы клинических исследований пока не опубликованы.

Мультивалентные аптамеры - ди-, три- или олигомеры одного или нескольких аптамеров. Обычно такие конструкции создаются в случае известной структуры молекулы-мишени для улучшения связывающих способностей аптамера [152, 153]. Методы создания мультивалентных аптамеров основаны на использовании различных линкерных молекул для соединения аптамеров в одну конструкцию, таких как триэтиленгликольфосфатный линкер [154], фосфамидный линкер [153], полиэтиленгликолевый линкер [98], или олигонуклеотидов-"скрепок" [152, 155], комплементарных соответствующим линейным участкам аптамеров. Одним из первых мультивалентных аптамеров является аптамер к цитотоксическому Т-клеточному антигену 4 (CTLA-4) - рецептору Т-клеток [152]. Ингибирование CTLA-4 способствует Т-клеточной активации, и как следствие, антиопухолевому иммунному ответу. Как показали эксперименты, тетрамер CTLA-4 аптамера повышал иммунный ответ как в клеточной культуре, так и in vivo. К мультивалентным аптамерам относятся также гибриды аптамеров к TAR элементу ВИЧ и сайту инициации димеризации [154], тромбину [153, 156], рецептору 4-1BB [155], рецептору OX40 [98].

Аптамеры, используемые в качестве средств доставки. Мишень-направленная терапия - одна из актуальных задач современной медицины. С использованием аптамеров к рецепторам, экспрессирующимся определенными типами клеток, возможна адресная доставка различных терапевтических средств, таких как токсины, химиотерапевтические препараты, ферменты и многие другие. Весьма перспективным подходом является использование аптамеров для доставки в клетки siRNA. Одним из часто используемых в данном случае аптамеров является аптамер к PSMA, простат-специфическому мембранному антигену, гиперэкспрессия которого наблюдается в клетках рака простаты. Для создания химер аптамеров и siRNA используют систему стрептавидин-биотин и дополнительных комплементарных (“stick”) последовательностей. В первом случае биотинилированные 5'-конец аптамера и 5'-конец смысловой цепи siRNA связывает стрептавидиновый модуль. Во втором случае на 3'-конец аптамера добавляется “stick”-последовательность, а одна из цепей siRNA содержит комплементарную ей последовательность с 3'-конца. Первым способом были получены химеры PSMA-аптамера с siRNA, направленными на гены Lamin A/C, GAPDH1 и GAPDH2 [157] а также Plk-1 и Bcl-2 [158]. Вторым способом был получен химер gp120 аптамера с tat-rev siRNA [110]. Для всех химер эксперименты показали аптамер-опосредованное проникновение siRNA в клетки. Таким образом, использование аптамеров в качестве средств доставки может позволить избежать попадания лекарственных средств в здоровые клетки и этим существенно снизить токсичность препаратов для организма человека.

Как видно из обзора литературных данных, создание аптамеров к белковым молекулам-мишеням является перспективным способом решения самых разнообразных задач в области молекулярной биологии, биотехнологии и медицины. Среди белков-мишеней есть и антитела, и аутоантитела. На основе аптамера к IgE человека уже создан электрохимический односторонний биосенсор [114]; к аутоантителам человека, больного миастенией, создан аптамер-приманка [151]; получен аптамер-ингибитор моноклональных аутоантител G 6-9 к ДНК, вырабатывающихся при системной красной волчанке [18]. Однако, отбор аптамеров к аутоантителам, вырабатываемым организмом человека, больного рассеянным склерозом, в литературе не описан. В то же время аптамеры, специфически связывающие аутоантитела человека при рассеянном склерозе, могут послужить основой для создания перспективных средств диагностики и терапии данного заболевания.


Подобные документы

  • Исследование психологических особенносттей больных рассеянным склерозом. Принципы когнитивно-бихевиоральной терапии. Применение когнитивно-бихевиоральной терапии в виде гетеросуггестивной психомышечной релаксации в терапии больных рассеянным склерозом.

    дипломная работа [2,6 M], добавлен 04.05.2011

  • Оценка риска для здоровья человека. Характеристика вредных эффектов, способных развиться в результате воздействия факторов окружающей среды на группу людей. Передача информации о риске. Анализ продолжительности воздействия факторов риска на человека.

    презентация [211,5 K], добавлен 01.10.2014

  • Биологическое значение гемоксигеназной системы. Тетрапиррольная структура уропорфиринoгена III. Ферментативный, химический механизм. Регуляция активности гемоксигеназы на уровне генома. Структура гемоглобина человека. Синтез гемма в митохондриях.

    курсовая работа [2,2 M], добавлен 08.07.2016

  • Строение, расстройства и функции мозжечка. Дисметрия и атаксия как наиболее важные симптомы поражения. Сестринская помощь пациентам. Занятия с больными по указаниям методиста лечебной физкультуры. Помощь пациентам, страдающим рассеянным склерозом.

    реферат [22,8 K], добавлен 07.06.2014

  • Требования, предъявляемые к материалам для медико-биологического применения. Проблема биологической совместимости, реакция организма на токсическое воздействие. Воздействие материалов на человека, роль стерилизации. Углеродные материалы в медицине.

    реферат [32,9 K], добавлен 26.02.2012

  • Исследование благосостояния пациентов, страдающих хроническими заболеваниями, такими как рассеянный склероз. Характеристика методики оценки благосостояния с учетом психологических особенностей восприятия пациентом заболевания на различных его стадиях.

    контрольная работа [26,6 K], добавлен 25.11.2010

  • Применение криотерапии в биологических исследованиях. Реологические свойства крови. Атомно-силовая микроскопия в исследованиях биологических объектов. Влияние холодового воздействия на клетки крови человека. Результаты эксперимента и его обсуждение.

    дипломная работа [4,4 M], добавлен 14.07.2013

  • История развития табачного производства. Основные виды и особенности выращивания табака. Описание получения покровных листьев табака для сигар. Анализ влияния курения на организм человека и способы борьбы с ним. Понятие и сущность пассивного курения.

    презентация [1,3 M], добавлен 05.03.2010

  • Идея учения о биоритмах - периодически повторяющихся изменениях характера и интенсивности биологических процессов и явлений. Классификация биоритмов человека по их характеристикам, биологической системе, роду процесса и функции, которую выполняет ритм.

    презентация [1,3 M], добавлен 11.03.2015

  • Классы интерферонов: естественного происхождения и искусственно синтезируемые. Способы получения лейкоцитарного интерферона человека из лейкоцитов донорской крови и микробиологическим синтезом. Механизмы действия интерферонов, терапевтическое применение.

    реферат [22,6 K], добавлен 27.01.2010

Работы в архивах красиво оформлены согласно требованиям ВУЗов и содержат рисунки, диаграммы, формулы и т.д.
PPT, PPTX и PDF-файлы представлены только в архивах.
Рекомендуем скачать работу.