Интенсивность потребления кислорода в процессе эмбрионального развития увеличивалось. Содержание растворенного в воде кислорода не снижалось менее 7,5 мг/л. Концентрация ниже 6 мг/л (80% насыщения) приводит к различным отклонениям в развитии (гипертрофия сердца, водянка перикарда и др.), концентрация кислорода 3 -3,5 мг/л приводит к полной гибели эмбрионов. Одним из показателей нормального эмбрионального развития, характеризующих качество полученного потомства, являлась синхронность развития зародышей. В ходе нормального развития икры стадийный разброс развития не должен превышать более двух стадий в пробе (Детлаф и др.,1981).

Изменение темпов и синхронности эндогенного развития рыб может возникать вследствие повреждающего воздействия абиотических факторов. С повышением температуры наблюдалась десинхронизация развития, которая характеризуется большими стадийными различиями, приводящими к формированию различных уродств, значительному увеличению продолжительности выклева, проходящего без ярко выраженного пика (Вернидуб, 1951; Детлаф и др., 1981).

Подобные явления довольно часто наблюдаются при инкубации икры на рыбоводных заводах, где создание оптимальных условий обычно сопряжено со многими техническими трудностями. Управление температурным режимом инкубации икры позволяет избежать негативного воздействия изменений температуры за пределами оптимального интервала и создать наиболее благоприятные условия для развития эмбрионов, предотвращая этим также поражение их сапролегнией.

Оптимальная температура для развития икры стерляди 13-15 °С. Значительное отклонение от оптимальных температур как: в сторону повышения, так и понижения приводит к различным уродствам и гибели эмбрионов. Контроль над температурным режимом осуществлялся каждые 2 часа. Суточные колебания температуры воды не должны превышали 3 °С. Температурные показатели, ход и результаты инкубации регистрировали в журналах.

Особое внимание на этом этапе следует уделить появлению на мёртвой икре гифов разновидности плесневого грибка сапролегнии (Saprolegnia). Сущёствует несколько родов - грибы Achilla, Aphanomyces, Saprolegnia, вызывающих похожие симптомы заболевания у икры и молоди осетровых. Наиболее часто встречается именно грибы рода Saprolegnia. В зависимости от условий окраска грибка может быть белой и слабо-жёлтой. Имеют разветвляющиеся и неразветвляющиеся нитеобразные гифы, лишённые перегородок, толщина которых достигает 75 мкм. Гифы окружены оболочкой и заполнены протоплазмой, которая содержит большое количество ядер. Терминальная часть гифа расширена и образует оболочки с зооспорами. При созревании спор оболочка разрывается, и зооспоры выбрасываются во внешнюю среду. Эти грибы могут размножаться и половым путём. Гифы сначала образуются на мёртвой икре и если её вовремя из аппарата не извлекали, сапролегния переходила на здоровые икринки. Лечение: вовремя и периодически отбирали из аппаратных лотков мёртвые икринки и оболочки, а также погибших предличинок. Воду до начала выклева обрабатывали органическим красителем метиленовым синим. Концентрацию дозировали по литературным рекомендациям к применению метиленового синего. Над аппаратами ставили капельницы, чтобы поступление раствора было постоянным. Также хорошо зарекомендовал себя ветпрепарат для борьбы с грибковыми заболеваниями, применяющиеся для аквариумных рыб, Сера Микопур (Sera Mycopur). Также воду перед попаданием в аппараты можно стерилизовать ультрафиолетовым бактерицидным излучением с длинной волны 254 нанометра. Слой воды 1 см должен непрерывно обрабатываться 9 секунд с мощностью лампы из расчёта 18-24 ватта на кубометр.

Для борьбы с сапролегнией были использованы органический краситель метиленовый синий и ветеринарный препарат Сера Микопур.

0,3 г метиленового синего разводилось в 50 мл воды. Это количество рассчитано для объема воды 100л, то есть по 5 мл данного раствора на каждые 10 л воды. В такой концентрации раствор устанавливался в капельнице над лотком с икрой. Экспозиция не более 2 часов.

Микопур дозировался исходя из инструкции к препарату.

Таблица 5 - Применение препаратов для борьбы с сапролегнией.

Из таблицы 5 следует, что целесообразно ставить капельницы с растворами в условиях систем оборотного водоснабжения. Ультрафиолет малоэффективен в таких условиях. Из плюсов метиленового синего - его доступность, цена, длительность хранения. Недостатки - канцерогенный эффект, подбор точной дозировки, при преждевременном выклеве может пострадать предличинка. Что касается микопура, то плюсы - малое количество препарата при дозировках (необходимо в 15 раз меньше, чем метиленового синего), не канцерогенен, не вредит предличинкам, гибкость в экспозициях - можно применять как единовременно, так и капельно. Из минусов - цена препарата выше метиленового, доступно только в ветаптеках и зоомагазинах.

стерлядь индустриальный молодь воспроизводство

Таблица 6 - Результат оплодотворения и инкубации икры стерляди.

Из 720 000 заложенных икринок выклюнулось 600000, что составляет 83%.

4.4 Выращивание молоди в бассейнах

Начало выклева характеризовалось появлением в инкубационном аппарате единичных плавающих предличинок. Постепенно их число увеличивалось и время, когда в аппарате появляется несколько сот предличинок, было началом массового выклева.

Выклюнувшихся предличинок переносили в пластиковые бассейны (ИЦА-2 или др.). Оптимальный слой воды - 20 см. Подсчёт предличинок вёлся визуально по эталону 500 шт. На следующий день после посадки предличинок в бассейнах производился отбор оболочек, мёртвой икры и уродливых особей. Отбирали погибшую икру и оболочки при помощи резинового сифона. В последующие дни количество погибших личинок подсчитывалось ежедневно и заносилось в рыбоводный журнал.

Рисунок 18 - Подсчёт предличинок эталонным методом.

Следует отметить важность оценки размеров желточного мешка при осуществлении рыбоводно-экологического мониторинга молоди, выращенной на осетровых заводах. Показателем деформации желточного мешка предличинок осетровых, являлось отношение его высоты к длине, составляющее в норме 0,55-0,69. Для деформированного (грушевидного или удлиненно-овального) желточного мешка данное отношение уменьшалось до 0,29-0,44. (Е.С. Беляева, 1983). В случае небольших размеров мешка (и значительной индивидуальной изменчивости его морфометрических показателей) эндогенные ресурсы не обеспечивают дальнейший рост и нормальное развитие на одном из наиболее важных этапов - переходе к экзогенному питанию. Вместе с тем, и излишне большой объем желтка на стадиях дифференцировки отделов пищеварительной системы негативно влияет на их формирование, приводя к задержке секреторной функции эпителия (Гербильский, 1957; Богданова, 1972).

Скорость утилизации желточной массы также связана с развитием молоди. Ускорение рассасывания желточного мешка (по сравнению с предшествующим этапом - пассивным залеганием на дне бассейнов) обусловлено началом активного плавания предличинок и ускорением процессов морфогенеза

Таблица 7 - Нормативы содержания молоди.

При выдерживании предличинок в бассейнах, так же, как и в период инкубации икры, осуществляли постоянный контроль за температурным и кислородным режимом.

Следует отметить некоторые особенности поведения предличинок в первые дни жизни. После выклева предличинки рассеивались в толще воды и совершали так называемые «свечки»: периодически поднимались к поверхности воды и опускались на дно бассейна. При естественном нересте такое поведение предличинок осетровых позволяет им, во-первых, избежать заиливания, и, во-вторых, скатываясь по течению быстрее достигать зон богатых кормовыми организмами.

Таблица 8 -Плотность посадки молоди при бассейновом выращивании.

При переходе на жаберное дыхание и стадии формирования пищеварительной системы, так называемый период «роения», предличинки опускались на дно бассейна и образовали различного рода скопления («пятна»). В случае, если скопления личинок находятся в зонах с низким водоснабжением, возможна их гибель из-за недостатка кислорода (интенсивность потребления кислорода к этому периоду возрастает в несколько раз по сравнению с эмбриональным).

На этом этапе также возможна массовая гибель предличинок, которая может быть вызвана как рыбоводным качеством икры, так и неблагоприятными условиями выращивания.

По достижению этих стадий, предличинки, имеющие морфофизиологические дефекты и отклонения в развитии органов дыхания, пищеварения, ферментной системы уже не были способны к дальнейшему развитию и погибали. В связи с этим было необходимо каждые трое суток отбирать пробы в количестве 30-50 штук живых и погибших предличинок для наблюдения за развитием и оценкой качества предличинок.

Появление на дне бассейна единичных меланиновых пробок служило сигналом к началу первого кормления, которое осуществляют при выбросе меланиновой пробки у 2-3% личинок. Период выброса меланиновых пробок может длиться 3-4 суток, а несвоевременное внесение корма приводит к взаимному травмированию и гибели личинок. В частности стерлядь обкусывает плавники друг другу, у белуги же, например, в этом период наблюдаются случаи каннибализма.

Сроки перехода на активное питание зависят от температуры воды и ее химического состава. До возраста 10 суток оптимальные температуры выдерживания предличинок соответствуют оптимуму нереста: 13-17 ?С.

В период перехода на активное питание следует избегать резких колебаний температуры воды. Так, понижение температуры, несмотря на выброс меланиновых пробок, может вызвать у личинок отказ от корма, что объясняется замедлением процесса резорбции жира в пищеварительной системе (хорошо заметно при осмотре брюшной стороны личинок).

В качестве живого корма традиционно используют науплий артемии, дафнию, моину, или мелкорубленых олигохет. Суточная норма потребления живых кормов рассчитывалась в соответствии с планируемым приростом и кормовым коэффициентом потребляемых организмов (науплии артемии 2-4, дафнии - 6, олигохеты - 2). Для кормления подрощенной молоди можно использовать трубочник, при этом крупные личинки могут потреблять целых червей. Суточные дозы кормления варьируют от 20 до 30% от массы тела личинок.

Применение дафнии неоднозначно. С одной стороны это эффективный, доступный, лёгкий в культивации живой корм. Однако, как правило, культивируются дафнии в открытых водоёмах. Только так можно обеспечить достаточное количество дафнии для кормления молоди. Скармливая дафний из таких водоёмов молоди в бассейнах, существует риск занести инфекционное заболевание.

Кратность кормления по суточному рациону живыми кормами зависит от видовой специфики интенсивности переваривания кормовых объектов. Суточная норма дафнии составляла 40-50%. Дафнии или науплии артемий лучше всего разводить водой в определенном объеме, рассчитанном соответственно по количеству молоди в бассейне. Обычно при полноценном питании (качество и количество) личинки стерляди за 5-6 суток достигают массы 80-90 мг. В процессе подращивания контролировали плотности посадки и размерную структуру осетровых рыб в каждом бассейне, проводя вовремя сортировки.

Кормление искусственными кормами. Длительное использование только живых кормов может существенно осложнить последующий переход молоди на искусственные корма (облегчить такой переход может одновременное использование нескольких видов живых кормов). Поэтому применяли пылеобразные фракции искусственных кормов сразу при переходе на активное питание с постепенным повышением их доли в общем рационе.

Суточные нормы кормления комбинированными кормами рассчитывали на период 5-10 дней (в зависимости от возраста рыбы) с учетом температуры воды, средней массы молоди и ее количества. Определение средней массы производили один раз в трое суток, начиная с момента перехода на активное питание. Численность рыбы определялась с учетом погибшей. Кроме этого, в зависимости от массы молоди подбирали фракцию (размер крупки) стартовых кормов. Для кормления молоди осетровых рыб можно использовать корма отечественного и импортного производства с содержанием белка не менее 48-55% и жира 8-12%. Наиболее эффективны сбалансированные полноценные корма отечественные корма производства НТЦ «Аквакорм» - ОСТ-4, ОСТ-6, а также фирм производителей «Крафт» (Германия), «Биомар» (Дания), Аллер Аква (Польшп). Рецептуру, рекомендации, кормовые коэффициенты и периодичность кормления производитель указывает в сопровождающих корм документах.

В процессе подращивания контролировали плотности посадки и размерную структуру осетровых рыб в каждом бассейне. При достижении массы 0,2-0,3 г, каждые 7 дней проводили сортировку молоди, выделяя три размерные группы: крупную, среднюю и мелкую. Необходимость сортировки объясняется пищевой конкуренцией при интенсивном росте молоди и невозможностью точного определения количества задаваемого корма в случае, если масса молоди в одном бассейне различаются более чем на 50%.

В период кормления искусственными кормами молоди осетровых обеспечивали чистоту бассейнов и не допускали накопления остатков корма. Чистили бассейны после каждого кормления. Личинка и молодь имела не более 15 минут доступа к корму, После того, как истекали 15 минут, резко повышался сброс воды из бассейна, унося с собой остатки несъеденного корма и экскременты рыб.

Следует отметить важность своевременной замены фильтрующих решеток на стоке воды из бассейнов. По мере роста личинок, ячейка сливного экрана на «фонарях», «стаканах» должна увеличиваться от 1мм при выдерживании предличинок, до 2мм при переходе на активное питание и далее постепенно до 7мм при выращивании молоди до 10г.

Во время кормления личинок были использованы как живые корма (дафния, науплии артемий) так и искусственные (Аллер Аква). В начале кормления первую неделю в один бассейн вносились 50% живых кормов и 50% искусственных (опытная группа), в остальные же 80% Аллер Аква и 20% живых кормов (контрольная группа). В результате темп роста у молоди, питавшейся 50% живыми кормами, был заметно выше (рисунок) - на 35 день опытная группа имела навеску м, тогда как контроль был весом в среднем 680 мг. Однако последующий отход из-за отказа опытной группы от питания полностью искусственным кормом нивелировал это достижение. Отход опытной группы составил более 80%. Опыт на этом был прекращён.

Из выклюнувшихся 600 000 шт предличинок, на активное питание перешли 480 000 шт (80%), а навески более 3 г достигло всего 410 000 шт (68%).

Таблица 9 -Нормы кормления и рационы.

Таблица 10 - Количество молоди стерляди по мере развития.

Как видно из таблицы 10, из 1800000 полученных икринок только 410000 развились до массы 3 г, что составляет 23%. Это удовлетворительный результат.

ВЫВОДЫ И РЕКОМЕНДАЦИИ

В дипломной работе была исследована биотехника воспроизводства стерляди в условиях индустриальной аквакультуры. Был дан литературный обзор по рассматриваемому виду осетровых. Описаны процессы выдерживания и инъецирования производителей, обесклеивания, инкубирования, подращивания и кормления предличинки. Приведены соотношения выхода 3 граммовой молоди из заложенной икры.

1. Темп роста стерляди, разогнанной на 50% кормлении живыми кормами выше чем у молоди, которую кормили по традиционной технологии, но в дальнейшем происходит отход практически всей группы, питавшейся по рациону с 50% живыми кормами - на 35 день кормления разница между опытом и контролем была 70мг(10%). Отход более 80%, что показывает нецелесообразность кормления по рациону с повышенным процентом живых кормов.

4. Кормление стерляди рационально начинать с живых кормов, постепенно переводя на искусственные. Соотношением 10% живых кормов к 90% искусственных.

ЛИТЕРАТУРА

1. Ананьев В.И., Чебанов М.С., Манохина М.С., Шевцова Э.Е. Рабочая встреча по материалам Международной конференции «Сохранение генетического разнообразия рыб » (г. Ванкувер, Канада, 1998). «Действия до исчезновения». - Рыбное хозяйство. Серия Аквакультура, Вып. 1. - М.: ВНИиПKИЭИиАСУ, 1999. С. 45-51.

2. Артюхин Е. Н. Осетровые (экология, географическое распространение и филогения). С-ПБ.: Изд-во С.-Пб. ун-та, 2008. 137 с. + вкл.

3. Атлас нарушений в гаметогенезе и строении молоди осетровых. Акимова Н. В., Горюнова В. Б., Микодина Е. В., Никольская М. П., Рубан Г. И., Соколова С. А., Шагаева И. Г., Шатуновский М. И. М., Изд-во ВНИРО. 2004. 120 с.

4. Березовская В.И., Савельева Э.А., Чебанов М.С., Шепиленко Н.Д., Реусов М.П., Чёлушкин Г.А. Нерестовый комплекс для воспроизводства реофильных рыб//Авторское свидетельство № 1755752.-Б.И. № 31, 1992. 12с.

5. Березовская В. И., Савельева Э. А., Чебанов М. С. Реакклиматизация стерляди и шипа в бассейне реки Кубань // II Межд. симпозиум. "Ресурсосберегающие технологии в аквакультуре". Краснодар, 1999. С. 16-18.

6. Бойко Н. Е. Григорьян Р. А., Чихачёв А. С. Обонятельный импринтинг молоди осетра Acipenser gueldenstaedtii // Ж. эвол. биохим. и физиол. - 1993. Т. 29 - №5-6. С. 509-514.

7. Бойко Н. Е. Физиологические механизмы адаптивных функций в раннем онтогенезе русского осетра Acipenser gueldenstaedtii Brandt. Автореф.

дис. на соиск. уч. степ. д.б.н.: С-Пб., 2008. 31 с.

8. Бойко Н. Е., Григорьян Р. А. Влияние тиреоидных гормонов на запечатление химических сигналов в раннем онтогенезе осетра Acipenser gueldenstaedtii Brandt // Ж. эвол. биохим. и физиол. 2002. Т. 38 - №2. С. 169-172.

9. Галич Е. В. Эколого-морфологические особенности развития осетровых рыб р. Кубань в раннем онтогенезе при управлении сезонностью их размножения. Автореф. дис. канд. биол. наук. Краснодар, 2000. 19 с.

10. Казанский Б. Н. Закономерности гаметогенеза и экологическая пластичность размножения рыб // Экологическая пластичность половых циклов и размножения рыб. Л., 1975. С.3-32.

11. Карнаухов Г. И., Чебанов М. С., Василиади В. Д. Генетические подходы при формировании коллекционного маточного стада стерляди // Генетика, селекция и воспроизводство рыб. С-Пб., 2002. С. 80-83.

12. Кокоза А. А. Искусственное воспроизводство осетровых рыб //Астрахань, 2004. 208 с.

13. Константинов А. С., Зданович В. В., Пушкарь В. Я., Речинский В. В., Костоева Т. Н. Рост и энергетика молоди стерляди в оптимальном стационарном терморежиме и при плавании в термоградиентном пространстве в зависимости от накормленности рыб // Вопр. ихтиологии. 2005. Т. 45. №6. С. 831-836.

14. Краснодембская К.Д. Методические указания к оценке физиологической полноценности личинок костистых и осетровых рыб, выращиваемых на рыбоводных заводах, по реакциям пигментных клеток (меланофоров) С-Пб., 1994. 39 с.

15. Легеза М. И. О помесях каспийских осетровых // Осетровые СССР и их воспроизводство. М., «Пищевая промышленность», 1971. С. 196-206.

16. Николюкин Н. И. Межвидовая гибридизация рыб. Саратов. «Саратовское областное государственное издательство», 1952. 312 с.

17. Никоноров С. И., Витвицкая Л. В. Эколого-генетические проблемы искусственного воспроизводства осетровых и лососевых рыб. М., Наука, 1993.

18. Подушка С. Б., Левин А. В. Использование аномалий обонятельного органа в качестве маркера выпускаемой рыбоводными заводами молоди осетровых // Проблемы и перспективы рыбоводства и рыболовства в Пермской области // Тр. ГосНИОРХ. 1988. Вып. 281. С. 132-137.

19. Савушкина С.И. Воспроизводство осетровых рыб с использованием криоконсервированной спермы // Рыбное хозяйство. Серия Аквакультура, Вып. 1. - М.: ВНИиПKИЭИиАСУ, 1999. С. 39-43.

20. Тихомиров А. М., Никоноров С. И. Пути повышения экологической адекватности технологии искусственного воспроизводства осетровых // Международная конференция «Осетровые на рубеже 21 века»: Тезисы докладов. Астрахань: Изд-во КаспНИРХа, 2000. С. 275-277.

21. Трувеллер К.А. Генетический мониторинг в мероприятиях по сохранению и использованию генофонда осетровых рыб // Рыбное хозяйство. Серия Аквакультура, Вып. 1. - М.: ВНИиПKИЭИиАСУ, 1999. С. 9-16.

22. Чебанов М.С. Осетровые в аквакультуре: перспективы ресурсосберегающих технологий // Ресурсосберегающие технологии в аквакультуре. Краснодар, 1996. С. 102-103.

23. Чебанов М. С. Экологические основы оптимизации воспроизводства осетровых рыб // Рыбоводство и рыболовство. 1996. № 2. С. 9-12.

24. Чебанов М. С. Формирование генетической коллекции осетровых рыб в Южном филиале ФГУП «ФСГЦР» // Генетика, селекция и воспроизводство рыб. Докл. 1-ой Всерос. конф. С.П-б. ФГУП «ФСГЦР». 2002. С. 73-80

25. Чебанов М. С., Галич Е. В. Ультразвуковая диагностика рыб. Краснодар, «Просвещение-Юг», 2010. 135 с.

26. Чебанов М.С., Галич Е. В., Чмырь Ю.Н. Руководство по разведению и выращиванию осетровых рыб. М., ФГНУ «Росинформагротех», 2004. 136 с.

27. Чебанов. М. С., Галич Е. В., Меркулов Я. Г. Формирование и эксплуатация ремонтно-маточных стад осетровых рыб южного филиала Федерального селекционно-генетического центра рыбоводства // Породы и одомашненные рыбы формы осетровых рыб (Acipenseridae). М., ООО «Столичная типография», 2008. С. 52-85.

28. Чебанов М. С., Козырицкая Ю. Е. 229. Белуга. // Красная Книга Краснодарского края (животные) / Адм. Краснодарского края: (науч. ред. А. С. Замотайлов). - Изд. 2-е. Краснодар: Центр развития ПТР Краснодар. края, 2007. С. 315-316.

29. Чебанов М. С., Козырицкая Ю. Е. 230. Шип. // Красная Книга Краснодарского края (животные) / Адм. Краснодарского края: (науч. ред. А. С. Замотайлов). - Изд. 2-е. Краснодар: Центр развития ПТР Краснодар. края, 2007. С. 316-317.

30. Чебанов М. С., Козырицкая Ю. Е. 231. Стерлядь. // Красная Книга Краснодарского края (животные) / Адм. Краснодарского края: (науч. ред. А. С. Замотайлов). - Изд. 2-е. Краснодар: Центр развития ПТР Краснодар. края, 2007. С. 317-318

31. Чебанов М. С., Савельева Э. А. Биотехнология воспроизводства осетровых рыб на основе полициклического использования мощностей рыбоводных заводов в современных экологических условиях. Краснодар, 1996. 24 с.

32. Чебанов М. С., Чмырь Ю. Н. Новые методы оптимизации осетроводства // Рыбоводство и рыболовство. 2002. № 1. С. 20-21.

Размещено на Allbest.ru