Биоразнообразие мицелиальных грибов

У Crenomytilus grayanus в мантии было обнаружено 4 вида (Aspergillus niger, A. versicolor, Cladosporium oxysporum, Penicillium sp. 3), в мускуле 8 видов (Aspergillus janus, A. ochraceus, A. versicolor, Cladosporium sphaerospermum, Eurotium herbariorum, Penicillium citrinum, P. citreonigrum, P. jensenii), в почках 3 вида (Aspergillus candidus, A. ochraceus, Penicillium citrinum), в жабрах 1 вид (Chaetomium megalocarpum), в пищеварительной железе 8 видов (Aspergillus parasiticus, A. versicolor, Penicillium citrinum, P. citreonigrum, P. commune, P. decumbens, P. jensenii, Chaetomium sp.), в женских гонадах 6 видов (Alternaria alternata, Aspergillus ochraceus, A. versicolor, Cladosporium oxysporum, Penicillium citrinum, Penicillium sp. 2).

Наиболее заселёнными грибами органами являются: у Mizuhopecten yessoensis - мантия и пищеварительная железа (по 6 видов), у Modiolus modiolus - мускул (10 видов), у Crenomytilus grayanus - мускул и пищеварительная железа (по 8 видов). Наименьшее количество видов грибов: у приморского гребешка обнаружено в почках (1 вид), у мидии Грея и модиолуса наименее заселёнными оказались жабры (1 вид) (рис. 7).

Мы не можем пока сказать, что вызвало такое распределение, так как нет никаких данных о взаимоотношениях мицелиальных грибов с двустворчатыми моллюсками.

Возможно, что характер распределения мицелиальных грибов во внутренних органах двустворчатых моллюсков свидетельствует о степени иммунной защиты этих гидробионтов (Зверева, Высоцкая, 2005). Согласно этому, моллюск вида Modiolus modiolus, является наименее защищенным к заселению морскими грибами. Одним из наименее устойчивых органов у изученных нами видов моллюсков, является мускул. Самыми неблагоприятными органами для развития морских грибов, являются почки и жабры моллюсков.

Мускул-замыкатель у Mizuhopecten yessoensis имеет меньшее, среди изученных видов моллюсков, количество мицелиальных грибов (5 видов). Хотя нет гарантий, что среди них нет видов, продуцирующих токсины, малое количество видов грибов уменьшает вероятность токсикоинфекций.

Мы не можем точно сказать, из-за чего происходит такое неравномерное распределение по внутренним органам, так как данная группа мицелиальных грибов ещё недостаточно изучена.

мицелиальный гриб двустворчатый моллюск

10.3 Показатели биоразнообразия мицелиальных грибов, ассоциированных с обследованными двустворчатыми моллюсками

Показатели биоразнообразия мицелиальных грибов, ассоциированных с обследованными видами двустворчатых моллюсков, приведены в Таблице 4.

Таблица 4. Показатели биоразнообразия и выравненности комплексов грибов, ассоциированных с двустворчатыми моллюсками

*Данные достоверны при уровне значимости 95%, P<0,05

Среди изученных видов моллюсков самый высокий показатель биоразнообразия наблюдается у комплекса грибов, ассоциированного с моллюском Modiolus modiolus. Однако, этому же виду соответствует наименьшая выравненность грибных сообществ (0,191) и наибольшая степень доминирования (0,395). Это говорит о низкой устойчивости грибных комплексов, ассоциированных с двустворчатым моллюском вида Modiolus modiolus. Наименьшее значение биологического разнообразия соответствует ассоциантам моллюска Mizuhopecten yessoensis. Показатели выравненности и доминирования невысоки, что также свидетельствует о низкой устойчивости сообщества мицелиальных грибов.

Небольшое количество грибов, обнаруженное в моллюске вида Anadara broughtoni (3 вида) не позволяет сделать никаких выводов о биоразнообразии грибных комплексов. Можно только отметить низкую численность грибов, ассоциированных с данным моллюском, о чем говорилось выше.

Возможно, различие показателей биологического разнообразия грибных комплексов обусловлено зависимостью видового состава мицелиальных грибов от вида двустворчатого моллюска.

Расхождения грибных комплексов, ассоциированных с двустворчатыми моллюсками, мы высчитывали в программе STATISTICA 6, по коэффициенту расхождения (Эвклидово расстояние) (рис. 8).

Рис. 8. Дендрограмма расхождения грибных комплексов, ассоциированных с двустворчатыми моллюсками Mizuhopecten yessoensi, Modiolus modiolus Crenomytilus grayanus и Anadara broughtoni

Как видно из дендрограммы, наиболее близки по видовому составу мицелиальных грибов моллюски Modiolus modiolus и Crenomytilus grayanus. Они имеют самый низкий коэффициент расхождения (около 0.81), а, следовательно, самый высокий коэффициент сходства. Это было ожидаемо, так как оба моллюска принадлежат к одному семейству(Mytilidae). Хотя даже это значение довольно высоко, что говорит о значительном расхождении грибных комплексов даже у относительно близких видов.

Полученные данные по соотношению различных групп мицелиальных грибов, их биологическому разнообразию и степени расхождения доказывают, что систематическое положение двустворчатого моллюска и его образ жизни влияют на видовой состав ассоциированных с ним грибных комплексов.

Выводы

1. В ходе проведённого исследования нами было выделено около 200 штаммов, идентифицировано 42 вида мицелиальных грибов.

2. Таксономический состав мицелиальных грибов, ассоциированных с двустворчатыми моллюсками Modiolus modiolus, Crenomytilus grayanus, Mizuhopecten yessoensis и Anadara broughtoni, составляет 42 вида мицелиальных грибов, относящихся к 14 родам, из них - 7 видов сумчатых грибов, 33 вида анаморфных грибов и 2 вида зигомицетов.

3. Наиболее заселёнными грибами органами являются: у Mizuhopecten yessoensis - мантия и пищеварительная железа (по 6 видов), у Modiolus modiolus - мускул (10 видов), у Crenomytilus grayanus - мускул и пищеварительная железа (по 8 видов). Наименьшее количество видов грибов: у приморского гребешка обнаружено в почках (1 вид), у мидии Грея и модиолуса наименее заселёнными оказались жабры (1 вид).

4. Наиболее близкими по видовому составу мицелиальных грибов являются моллюски видов Modiolus modiolus и Crenomytilus grayanus.

5. Грибные комплексы, ассоциированные с двустворчатыми моллюсками, имеют различные показатели биоразнообразия и низкую степень выравненности, что говорит о зависимости этих комплексов от видовой принадлежности двустворчатого моллюска. Возможно, это так же связано с характером грунта (гранулометрическим составом и содержанием органического вещества), или образом жизни моллюска.

Полученные данные по соотношению различных групп мицелиальных грибов, их биологическому разнообразию и степени расхождения доказывают, что систематическое положение двустворчатого моллюска и его образ жизни влияют на видовой состав ассоциированных с ним грибных комплексов.

Список литературы

1. Артемчук Н.Я. Микофлора морей СССР. М.: Наука, 1981. 192 с.

2. Бирюлина М.Г. Современные запасы мидии в заливе Петра Великого // Вопросы гидробиологии некоторых районов Тихого океана. Владивосток: ДВНЦ АН СССР, 1972а.-С. 11-21.

3. Брегман Ю.Э. Взаимосвязь роста и энергетического обмена у некоторых промысловых донных беспозвоночных залива Посьета (Японское море): Автореф. дис. канд. биол. наук. - Владивосток, 1973. - 33 с.

4. Временная инструкция по технологии выращивания приморского гребешка после годичного подращивания в садках, ТИНРО 1987. 11 с.

5. Галышева Ю. А., Христофорова Н. К. Среда и макрозообентос залива Восток Японского моря в условиях рекреационного воздействия // Изв. ТИНРО. -- 2007. -- Vol. 149. -- P.

6. Дудка И.А. Водные несовершенные грибы СССР. Киев: Наукова думка, 1985. 188 с.

7. Дудка И.А., Вассер С.П. Грибы. Справочник миколога и грибника. Киев: Наукова думка, 1987. 535 с.

8. Жюбикас И.И Некоторые данные по биологии Pecten yessoensis Jay в Курило - Сахалинском районе. - Вести. ЛГУ. Сер. Биология, 1969, №21, вып. 4, с. 21 - 32.

9. Зверева Л. В., Щукина Г. Ф., Высоцкая М.А. Мицелиальные грибы - эпибионты двустворчатого моллюска Corbicula japonica. Современная микология в России. Первый съезд микологов России. Тезисы докладов. М.: Национальная академия микологии, 2002

10. Зверева Л.В., Высоцкая М.А. Микобиота ресурсных видов двустворчатых моллюсков российских вод Японского моря// Морские прибрежные экосистемы. Материалы второй Международной научно-практической конференции. М.: Изд-во ВНИРО, 2005. С. 42-44.

11. Лоция северо-западного побережья Японского моря от реки Туманная до мыса Белкина. ГУНио НО. М., 1981. - 319 с

12. Михайлов В.В., Кузнецова Т.А., Еляков Г.Б. Морские микроорганизмы и их вторичные биологически активные метаболиты. Владивосток: Дальнаука, 1999. 132 с.

13. Мотавкин. П.А. Приморский гребешок. - Владивосток: ИБМ ДВО АН СССР, 1986. - 244 с.

14. Мэгарран Э. Экологическое разнообразие и его измерение: пер. с англ. М.: Мир, 1992. 184 с.

15. Пивкин М.В., Алешко С.А., Красохин В.Б., Худякова Ю.В. Комплексы грибов губок южного побережья острова Сахалин // Биол. моря. 2006.

16. Правила рыболовства для Дальневосточного рыбохозяйственного бассейна, ТИНРО 2007.

17. Скалкин В.А. Биология и промысел приморского гребешка. Владивосток: Дальневосточное книжное издательство, 1966. 30 с.

18. Скарлато О.А. Двустворчатые моллюски дальневосточных морей СССР (отряд Dysodonta). Определитель по фауне СССР. - Л.: ЗИН АН СССР, 1960, т. 71. - 150 с.

19. Скарлато О.А. Двустворчатые моллюски умеренных широт западной части Тихого океана. - Л.: Наука, 1981. - 479 с.

20. Христофорова Н. К., Наумов Ю.A., Арзамастев И.С. Тяжелые металлы в донных осадках залива Восток (Японское море) // Изв. ТИНРО. -- 2004. -- Vol. 136. -- P.

21. Явнов С. В. Атлас двустворчатых моллюсков дальневосточных морей Росси.// Атласы промысловых и перспективных для промысла гидробионтов дальневосточных морей России. - Владивосток: «Дюма», 2000. - 168 с.

22. Alderman D.J. Fungal diseases of marine animals // Recent Advances in Aquatic Mycology / ed. E.B.G. Jones, ed. N. Y.: Wiley, 1976. P. 223-260.

23. Alderman D.J. Fungal infe'ction of crawfish (Palinurus elephas) exoskeleton // Trans. Brit. mycol. Soc. 1973. V. 61. P. 595-597.

24. Alderman D.J. Fusarium solani causing an exoskeletal pathology in cultured lobsters, Homarus vulgaris// Trans. Brit. Mycol. 1981. Vol. 76. pp. 25-27.

25. Barlocher F, Kendrick B. Fungi in the diet of Gammarus pseudolimnaeus (Amphipoda) // Oikos. 1973. V. 24. P. 295-300.

26. BarlocherF., KendrickB. Leaf-conditioning by microorganisms//Oecologia. 1975b. V. 20. P. 359-362.

27. Becker G. Biological investigations on marine borers in Berlin-Dahlem // Marine Boring and Fouling Organisms / ed. D.L. Ray. / Univ. of Washington Press. Seattle, 1959. P. 62-83.

28. Becker G., Kampf W.-D., Kohlmeyer J. Zur Ernahrung der Holzbohrasseln der Gattung Limnoria II Naturwissenschaften. 1957. Bd 44. S. 473-474.

29. Biirlocher F., Kendrick B. Assimilation efficiency of Gammarus pseudolimnaeus (Amphipoda) feeding on fungal mycelium or autumn-shed leaves // Oikos. 1975a. V. 26. P. 55-59.

30. Blant J., Сорр В., Munro M., Northcote P., Prinsep M. Marine natural products // Nat. Prod. Rep. 2004. V. 21. P. 1-49.

31. Blaylock R.B., OverstreetR.M., Klich M.A. Mycoses in red snapper {Lutjanus campechanus) caused by two deuteromycete fungi (Penicillium corylophilum and Cladosporium sphaerospermum) II Hydrobiologia. 2001. V. 460. P. 221-228.

32. Corte A.M. Osservazioni sul genere Lulworthia Suth. E sui suoi rapporti con Limnoria Menzies e segnalazioni di alter specie // Bot. Ital. 1975. V. 109. P. 227-237.

33. Cuomo V., Palomba I., Guerriero A., D'Ambrosio M., Pietra F. Antimicrobial activities from marine fungi //J. Mar. Biotechnol. 1995. V. 2. P. 199-204.

34. Geiser DM., Taylor J. W., Ritchie K.B., Smith, G. W. Cause of sea fan death in the West Indies // Nature. 1998. V. 394. P. 137-138.

35. Gessner R. V., Goos R.D., Sieburth J.M. The fungal microcosm of the internodes of Spartina altermflora II Mar. Biol. 1972. V. 16. P. 269-273.

36. Hohnk W. Ober die submersen Pilze an der rumanischen Schwarzmeerkiiste nahe Constanza // Veroff. Inst. Meeresforsch. Bremerh. 1967. Suppl. 10. P. 149-158.

37. Hohnk W. Uber den pilzlichen Befall kalkiger Hartteile von Meerestieren // Ber. Dtsch. Wiss. Komm. Meeresforsch. 1969. Bd. 20. S. 129-140.

38. Holler U., Wright A.D., Matthee G.F., Konig G.M., Draeger S., Aust H.J., Schulz B. Fungi from marine sponges: diversity, biological activity and secondary metabolites// Mycological research.2000. Vol. 104. pp. 1354-1365.

39. Hyde K.D., Jones E.B., Leano E., Pointing S.B., Poonyth A.D., Vrijmoed L.P. Role of fungi in marine ecosystems// Biodiversity and Conservation. 1998. Vol. 7. pp. 1147-1161.

40. Johnson P.T., Charman F.A. Infection with diatoms and other microorganisms in sea urchin spines (Strongilocentrotus franciscanus)// J. Invertebr. Pothol. 1970. Vol.17. pp. 94-106.

41. Johnson T.W., Sparrow F.K. Fungi in Oceans and Estuaries. N.Y.: Weinheim, 1961. 668 p.

42. Kim, K., Kim P.D., Alker A.P., Harvell C.D. Chemical resistance of gorgonian corals against fungal infections// Marine Biol. 2000.Vol.137. pp. 393-401.

43. Kira T. Shells of the western Pacific in color. Hokusha, Japan. 1962, 224 p., 72 pl

44. Kobayashi M., Uehara H., Matsunami K., Aoki S., Kitagawa I. Trichoharzin, a new polyketide produced by the imperfect fungus Tricoderma harzianum separated from the marine sponge Mycale Cecillia //Tetrahedron Lett. 1993. V. 34. P. 7925-7928.

45. Kohlmeyer J. Beobachtungen iiber mediterrane Meerespilze sowie das Vorkommen von marinen Moderfaule-Erregern in Aquariumszuchten holzzerstorender Meerestiere // Ber. Dtsch. Bot. Ges. 1958. V. 71. P. 98-116.

46. Kohlmeyer J. Halophile Pilze von den Ufern Frankreichs // Nova Hedwigia. 1962a. V. 4. P. 389-20.

47. Kohlmeyer J. Marine fungi deteriorating chitin of hydrozoa and keratin-like annelid tubes // Mar. Biol. 1972a. V. 12..P. 277-284.

48. Kohlmeyer J. New genera and species of higher fungi from the deep sea (1615-5315 m) // Rev. Mycol. 1977. V. 41. P. 189-206.

49. Kohlmeyer J. The role of marine fungi in the penetration of calcareous substances // Am. Zool. 1969d. V. 9. P. 741-746.

50. Kohlmeyer J. Uber Pleospora gandefroyi Patouillard // Willdenowia. 1962b. V. 3. P. 315-324.

51. Kohlmeyer J., Becker G, Kampf W. D. Versuche zur Kenntnis der Emahrung der Holzbohrassel Limnoria tripunctata und ihre Beziehung zu holzzerstorenden Pilzen // Z. Angew. Zool. 1959. V. 46. P. 457-89.

52. Kohlmeyer J., Kohlmeyer E. Marine mycology. N.Y.: Academic Press, 1987, 690 p.

53. Kohlmeyer J., Kohlmeyer E. On the life history of marine Ascomycetes: Halosphaeria mediosetigera and H. circumvestita //Nova Hedwigia. 1966. V. 12. P. 189-202.

54. Kohlmeyer J., Volkmann-Kohlmeyer B. New species of Koralionastes (Ascomycota) from the Caribbean and Australia// Canadian Journal of Botany 1990. Vol. 68, pp. 1554-1559.

55. KohlmeyerJ., Kohlmeyer E. Marine mycology, The Higher Fungi. N.Y., 1979. 690 p

56. KohlmeyerJ., Volkmann-Kohlmeyer В. Two Ascomycotina from coral reefs in the Caribbean and Australia // Cryptogamic Botany. 1992. V. 2. P. 367-374.

57. Kolliker A. On the frequent occurence of vegetable parasites in the hard tissues of the lower animals // Q. J. Microasc. Sci. 1860a. V. 8. P. 171-187.

58. Kolliker A. On the frequentocurence of vegetable parasites in the hard stucture of animals. - Proc. Roy. Soc. London, 1860, pp. 95-99.

59. Kolliker A. Uber das ausgebreitete Vorkommen von pflanzlichen Parasiten in den Hartgebilden niederer Thiere // Z. Wiss. Zool. 1860b. V. 10. P. 215-232.

60. Lane C.E. The teredo // Sci. Am. 1961. V. 204. P. 132-142.

61. Meyers S.P, Feder W.A., Tsue K.M. Studies of relationships among nematodes and filamentous fungi in the marine environment // Dev. Ind. Microbiol. 1964. V. 5. P. 354-364.

62. Meyers S.P, Hopper B.E. Attraction of the marine nematode, Metoncholaimus sp., to fungal substrates // Bull. Mar. Sci. 1966. V. 16. P. 142-150.

63. Meyers S.P, Hopper B.E. Studies on manne fungal nematode associations and plant degradation // Helgol. Wiss. Meeresunfers. 1967. V. 15. P. 270-281.

64. Molitoris H.P, Schaumann K. Physiology of marine fungi: a screening programme for growth and enzyme production // The biology of marine fungi. Cambridge: Cambridge University Press, 1986. P. 34-47

65. Mortensen T. A monograph of the Echinoidea. Part 3. Aulodonta. Copenhagen.: C.A. Reitzel, 1940, 205 p

66. Namikoshi M., Akano K., Kobayashi H., Koike Y., Kitazawa A., Rondonuwu A.B., Pratasik S.B. Distribution of marine filamentous fungi associated with marine sponges in coral reefs of Palau and Bunaken Island, Indonesia// Journal of Tokyo University of Fisheries 2002. Vol. 88, pp. 15-20.

67. Newell S. Y, Fell J. W. Preliminary experimentation in the development of natuial food analogues for culture of detritivorous shrimp // Univ. Miami Sea Grant. Tech. Bull. 1975. V. 30. Pt 1-9. P. 1-115.

68. Pivkin M.V. Filamentous fungi associated with holothurians from the sea of Japan, of the Primorye coast of Russia// Biol. Bull. 2000, Vol. 198. pp. 101-109.

69. Pivkin M. V. Filamentous fungi associated with holothurians from the Sea of Japan, off the Primorye coast of Russia // Bioligical Bulletin. 2000. V. 198. P. 101-109.

70. Ritchie D. A fungus flora of the sea // Science. 1954. V. 120. P. 578-579.

71. Sallenave C., Pouchus Y.F.,. Bardouil M., Lassus P., Roquebert M.F., Verbist J.F. Bioaccumulation of mycotoxins by shellfish: Contamination of mussels by metabolites of a Trichoderma koningii strain isolated in the marine environment// Toxicon 1999. Vol.37. pp. 77-83.

72. Sallenave-Namont C., Pouchus Y.F., Robiou du Pont T., Lassus P., Verbist J.F. Toxigenic saprophytic fungi in marine shellfish farming areas// Mycopatol. 2000. Vol.149. pp.21-25.

73. Sterflinger K., Hain M., Scholz J., Wasson K. Fungal infections of a colonial marine invertebrate: diversity and morphological consequences// Facies №45. - Erlangen, 2001. pp. 31-38.

74. Stipanovic R., Howell C. The structure gliovirin, a new antibiotic from Gliocladium virens II J. Antibiot. 1982. V. 35. P. 1326-1330.

75. Tubaki K. Studies on the Japanese marine fungi. Lignicolous group. Annu. Rep. Inst. Ferment. №4. - Osaka, 1969. - pp. 12-41.

76. Turner R.D. Identification of marine wood-boring mollusks // Marine Borers, Fungi and Fouling Organisms of Wood/ eds E.B.G. Jones, S.K. Eitringham. Org. Econ. Coop. Dev. P., 1971. P. 17-64.

77. Vishwakiran Y, Thakur N.L., Raghukumar S., Yennawar P.L., Anil A. C. Spatial and Temporal Distribution of Fungi and Wood-Borers in the Coastal Tropical Waters of Goa, India // Botanica Marina. 2001. V. 44. P. 47-56.

78. Vitellaro-Zuccarello L. infrastructure of the byssal apparatus of Mytilus galloprovincialis. Associated fungal hyphae // Mar. Biol. 1973. V. 22. P. 225-230.

Размещено на Allbest.ru