Стрептококкоз протекает молниеносно или остро. У больной птицы наблюдают сонливость, взъерошенность перьевого покрова, депрессию, диарею, анемичность гребня и сережек, иногда - паралич конечностей. Патологоанатомические изменения характеризуются серозно-геморрагическим отеком подкожной клетчатки, серозно-фибринозным воспалением серозных покровов, гиперплазию селезенки. Печень находится в состоянии зернистой дистрофии с милиарными очажками некроза.

Патологоанатомический диагноз:

Цианоз видимых слизистых оболочек и кожи.

Серозно-геморрагический отек подкожной и межмышечной клетчатки.

Венозная гиперемия, зернистая и жировая дистрофия печени, очаги некроза в ней.

Увеличение селезенки.

Острая венозная гиперемия и отек легких.

Острая венозная гиперемия, зернистая дистрофия и серозный гломерулонефрит почек.

Острый катаральный энтерит.

Серозно-фибринозный перитонит, перикардит, периспленит, овариосальпингит (при подостром и хроническом течении).

Гиперемия яичника, деформация яйцевых фолликулов и кровоизлияния в них.

Проводят лабораторные исследования: микроскопию мазков- отпечатков органов, выделение чистой культуры возбудителя, определение его вирулентных свойств.

При пастереллезе кур у больных птиц наблюдают вялость, жажду, повышение температуры, угнетение, диарею, синюшность гребня и сережек, а при хроническом течении - дифтеритическое воспаление бородок. При вскрытии павших и вынужденно убитых цыплят обнаруживают признаки септицемии, крупозную пневмонию. При гистоисследовании в бурсе Фабрициуса регистрируют выраженную атрофию и делимфотизацию лимфоидных узелков с одновременным утолщением межфолликулярных соединительно-тканных перегородок.

Патологоанатомический диагноз:

острое течение

Цианоз гребня и сережек.

Крупозная плевропневмония.

Серозно-фибринозный перикардит.

Геморрагический диатез.

Зернистая дистрофия и милиарные некрозы в печени и миокарде.

Острый катаральный, катарально-геморрагический дуоденит.

Увеличение селезенки (не всегда).

хроническое течение

Фибринозно-некротическое воспаление бородок, иногда отпадение их.

Крупозная, некротическая пневмония.

Зернистая дистрофия печени, почек и миокарда.

Фибринозно-гнойные артриты.

Истощение.

Гисто: атрофия лимфоидных узелков бурсы Фабрициуса, утолщение интерстиции. Для уточнения диагноза проводят бактериологическое исследование и ставят биопробу на цыплятах.

Колибактериоз характеризуется повышением температуры, угнетением, диареей, нарастающим истощением. При вскрытии обнаруживают: катаральное воспаление тонкого кишечника, серозно-фибринозное воспаление серозных покровов, воздухоносных мешков. Микроскопией срезов бурсы Фабрициуса выявляют очаговые кровоизлияния, гиперемию и отек интерстиции, атрофию лимфоидных узелков. Отмечают обеднение лимфоидными элементами корковой и мозговой зон узелков, набухание цитоплазмы ретикулярных клеток.

Патологоанатомический диагноз:

Серозно-фибринозный перигепатит, периспленит, перикардит, перитонит, аэросаккулит.

Точечные и пятнистые кровоизлияния в паренхиматозных органах, слизистых и серозных оболочках.

Острый катаральный энтерит.

Увеличение селезенки.

Зернистая дистрофия и милиарные очаги некроза в печени.

Серозно-фибринозный полиартрит (при хроническом течении).

Гисто: кровоизлияния в бурсе Фабрициуса, атрофия лимфоидных узелков, гиперемия и отек интерстиции.

Проводят дополнительные исследования: выделение культуры возбудителя, определение его вирулентности.

Эймериозом болеют цыплята до 80-ти дневного возраста. У больной птицы отмечают угнетение, скученность, диарею (фекалии коричневатые, с примесью крови). При вскрытии трупов павших и вынужденно убитых цыплят регистрируют катарально-геморрагический, эрозивно-язвенный энтерит и тифло-колит, паразитарные узелки в стенке толстого кишечника.

При гистоисследовании узелков обнаруживаются очаговые некрозы, скопления ооцист паразита, окруженные мощной соединительнотканной капсулой. В бурсе Фабрициуса обнаруживают делимфатизацию и атрофию (за счет миграции лимфоцитов за пределы органа), отек интерстиция, микро- и макрофагальную реакцию.

Патологоанатомический диагноз:

Катарально-геморрагический эрозивно-язвенный тифлит и проктит.

Катарально-геморрагический энтерит, паразитарные узелки в слизистой оболочке толстого кишечника.

Зернистая дистрофия печени, почек и миокарда.

Истощение.

Гисто: атрофия лимфоидных узелков бурсы Фабрициуса, отек межфолликулярной соединительной ткани, скопление гистиоцитов, псевдоэозинофилов и эозинофилов в ней.

Для постановки окончательного диагноза проводят микроскопию фекалий или соскобов слизистой оболочки кишечника для выявления ооцист эймерий.

Простогонимоз протекает в виде энзоотических вспышек, чаще на фермах, расположенных вблизи водоемов. У больных птиц наблюдают угнетение, сонливость, диарею (фекалии белого или зеленоватого цвета), снижение яйценоскости, живот увеличен. При вскрытии павших или вынужденно убитых птиц обнаруживают овариит, гнойно-фибринозный сальпингит и перитонит, гиперемию и отек бурсы Фабрициуса. При микроскопии срезов бурсы выявляют серозно-воспалительный отек интерстиции, инфильтрацию псевдоэозинофилами и эозинофилами.

Патологоанатомический диагноз:

Овариит, деформация и разрыв фолликулов.

Гнойно-фибринозный перитонит.

Гнойно-фибринозный сальпингит, яйцевые конкременты в просвете яйцевода.

Острый катаральный энтерит.

Зернистая дистрофия печени, почек, миокарда.

Гиперемия и отек бурсы Фабрициуса.

Истощение, эксикоз.

Гисто: Серозно-воспалительный отек и микрофагальная инфильтрации межузелковой соединительной ткани в бурсе Фабрициуса.

Проводят дополнительные лабораторные исследования - микроскопирование помета больных птиц для обнаружения яиц гельминтов.

Гиповитаминоз А регистрируют у цыплят, а также продуктивной птицы. Симптомы: малоподвижность, отставание в росте, коньюнктивит, ларингит, общая анемия. На слизистой оболочке глотки и пищевода при вскрытиии обнаруживают милиарные серо-желтые узелки (гиперплазия и ороговение эпителия слизистых желез), в почках - зернистую дистрофию и отложение уратов.

Патологоанатомический диагноз:

Гиперкератоз кожи, тусклость и ломкость перьев.

Фибринозный коньюнктивит, ксерофтальмия, кератомаляция, панофтальмит.

Катаральный ринит, ларингит, трахеит.

Просовидные узелки в слизистой оболочке глотки и пищевода.

Висцеральный мочекислый диатез и подагра.

Истощение и общая анемия.

Для установления окончательного диагноза проводят биохимическое исследование печени, крови, желтков яиц, кормов на содержание витамина А и каротина.

Алиментарная дистрофия, чаще наблюдаемая у цыплят 15-20-дневного возраста, характеризуется депрессией, диареей, истощением птицы. При вскрытии регистрируют отсутствие жира в жировом депо, атрофию скелетных мышц и внутренних органов. При гистологическом исследовании срезов тимуса и бурсы Фабрициуса обнаруживают раннюю инволюцию органа, сопровождающуюся атрофией и опустошением лимфоидных узелков.

Патологоанатомический диагноз:

Отсутствие жира в жировом депо.

Атрофия скелетных мышц и внутренних органов.

Серозные отеки в подкожной и межмышечной клетчатке.

Общая анемия, эксикоз.

Гисто: акцидентальная инволюция бурсы Фабрициуса и тимуса.

Проводят химико-токсикологическое исследование кормов. Выявляют повышение кислотного и перекислотного чисел.

Радиотоксикоз регистрируют у птиц всех возрастов. У больных цыплят и кур отмечается анорексия, жажда, отеки в области головы. При вскрытии обнаруживают геморрагический диатез, серозную инфильтрацию подкожной клетчатки, а при гистоисследовании - атрофию, некрозы лимфоидной ткани в центральных и периферических органах иммунной системы.

Патологоанатомический диагноз:

Геморрагический диатез.

Серозные отеки подкожной клетчатки в области головы.

Подострый или хронический катаральный, эрозивно-язвенный энтерит.

Атрофия бурсы Фабрициуса, тимуса, селезенки, железы Гардера.

Общая анемия, истощение, эксикоз.

Гисто: очаговые некрозы или атрофия лимфоидной ткани в тимусе, бурсе Фабрициуса, железе Гардера, селезенке, эзофагальной и цекальных миндалинах.

Проводят радиологическое исследование кормов.

Профилактика и меры борьбы

С целью охраны птицефабрик от заноса возбудителя, ветеринарные специалисты обязаны: использовать для инкубации яйца из благополучных по инфекционной бурсальной болезни птицефабрик; комплектовать птичники одновозрастной птицей; соблюдать межцикловые технологические перерывы с проведением тщательной очистки, дезинфекции, дезинсекции и дератизации; проводить дезинфекцию проводимых яиц и тары; обеспечивать необходимые зооветеринарные требования по содержанию и кормлению птиц.

При установлении диагноза на ИББ на хозяйство накладывают ограничения, по условиям которых запрещается: вывоз яйца для инкубации, молодняка и взрослой птицы, кормов, инвентаря и оборудования в благополучные по ИББ хозяйства и для продажи населению; комплектование стад переболевшей птицей.

Разрешается реализация яиц для пищевых целей, после дезинфекции их парами формальдегида.

После клинического исследования всех больных и подозрительных по заболеванию цыплят подвергают убою и утилизации. Оставшихся здоровых цыплят подвергают вакцинации с последующим убоем всей птицы, достигшей убойных кондиций, из помещений, где регистрировалось заболевание. Прекращают инкубацию яиц и прием молодняка на выращивание. Проводят дезинфекцию инкубатора. Закладку яиц на инкубацию возобновляют не ранее, чем через 10 дней после вывода последней партии инкубируемых яиц.

За каждым птичником закрепляют отдельный обслуживающий персонал. Спецодежду ежедневно дезинфицируют в пароформалиновой камере.

Убой птицы проводят с полным потрошением тушек. При отсутствии патологоанатомических изменений в тушках их используют после проваривания при t=100⁰С (в течение 90 минут). Тушки с внутримышечными геморрагиями, отеками, отложениями мочекислых солей направляют вместе с внутренними органами на техническую утилизацию.

Для влажной дезинфекции используют 4%-ный раствор натрия гидроокиси, осветленный раствор хлорной извести (содержащей не менее 3% активного хлора), 2%-ный водный раствор формальдегида при экспозиции не менее 6-ти часов.

Помет и глубокую подстилку обеззараживают биотермически.

Ограничения снимают после проведения заключительных ветеринарно-санитарных мероприятий и при отсутствии клинических и патологоанатомических изменений не менее чем в 3-х партиях вновь выращенного до 60-ти дневного возраста молодняка после профилактического перерыва.

Специфическая профилактика

По наблюдению ряда исследователей общие ветеринарно-санитарные мероприятия не обеспечивают полного оздоровления хозяйств от инфекционной бурсальной болезни. Поэтому в комплексе мероприятий по профилактике и ликвидации этой инфекции основное место уделяется специфической профилактике с использованием живых и инактивированных вакцин.

Защита цыплят от заражения вирусом ИББ достигается путем создания высокого уровня пассивных антител у молодняка иммунизацией ремонтного молодняка кур инактивированными вакцинами и применением живых вирус-вакцин по мере снижения трансовариального иммунитета.

Для иммунизации цыплят используют живые вирус-вакцины. Птиц прививают перорально, в 7-14-ти дневном возрасте (в зависимости от уровня пассивного иммунитета и эпизоотической ситуации), а ревакцинируют спустя 14 дней. За 6 часов до проведения иммунизации в птичниках прекращают подачу воды и корма. Вакцину растворяют в теплой воде и выпаивают цыплятам с таким расчетом, чтобы на одну голову приходилась одна доза вакцины (10-15 мл). Подачу воды и корма возобновляют не ранее, чем через 2 часа после выпаивания вакцины. Устанавливают клиническое наблюдение за состоянием птицы.

Недостатком большинства живых вирус-вакцин против инфекционной бурсальной болезни является то, что вакцинные штаммы вируса наряду с иммуногенностью обладают выраженными иммунодепрессивными свойствами. Поэтому живые вакцины в зависимости от степени реактогенности делят на умеренно-, слабо- и апатогенные с высокой иммунногенной активностью. Эффективность реактогенных штаммов установлена при вакцинации цыплят с высоким уровнем материнских антител, они неприемлемы для восприимчивых цыплят.

Одним из показателей реактогенности вакцинных штаммов при болезни Гамборо служит снижение уровня антигемагглютининов у птицы, вакцинированной против ньюкаслской болезни. Установлена коррелятивная связь между иммуногенной активностью вакцинных штаммов вируса, его повреждающим действием на морфологическую структуру бурсы и снижением бурсального индекса. Наиболее иммуногенные штаммы вызывают более выраженные поражения Фабрициевой бурсы. Снижение бурсального индекса установлено при введении реактогенных вакцин слабоиммунной птице раннего возраста. Поэтому перед проведением вакцинации цыплят против ИББ мы рекомендуем определять у них иммунный статус и фоновые показатели уровня специфических антител. Для этого в лабораторию болезней птиц и пчел БелНИИЭВ или на кафедру болезней мелких животных ВГАВМ на исследования сыворотку крови и органы иммунитета от 10-20 цыплят.

Показано, что даже слабопатогенные вакцины против ИББ способны вызывать патоморфологические изменения в органах иммунной системы, тем самым обуславливая развитие у птиц иммунодефицитного состояния. Например, однократная иммунизация цыплят сухой живой вирус-вакциной “Бурсин-2” приводит к резкому уменьшению размеров лимфоидных узелков за счет процессов делимфотизации их коркового слоя. В мозговом слое регистрируется фагоцитоз разрушенных клеток с образованием множества округлых полостей типа пчелиных сот. У дважды привитых данной вакциной цыплят поражения бурсы Фабрициуса усиливаются. Наблюдается почти полное исчезновение лимфоцитов, атрофия и деструкция лимфоидных узелков, фиброплазия и превращение органа в железистую структуру. В тимусе отмечается атрофия коркового вещества.

Двукратная вакцинация цыплят аттеинуированными вакцинами “Гамбовак” и “Гумборал-СТ” (производства Франции) вызывает почти полную атрофию бурсы Фабрициуса с утратой ее функциональной части.

Результаты наших исследований показали, что при пероральном введении сухой живой вирус-вакцины из шт. “Д 78” (производства Голландии) у иммунных цыплят развиваются процессы атрофии и делимфатизации в тимусе, бурсе Фабрициуса и слепокишечных миндалинах, приводящие к иммуносупрессии.

Нами также установлено, что пероральная иммунизация птиц против болезни Гамборо сухой живой вирус-вакциной из шт. “Винтерфильд 2512” (производства ВНИИЗЖ, г. Владимир) сопровождается активной иммуноморфологической перестройкой в органах иммунной системы и не вызывает иммунодефицитного состояния. В костном мозгу цыплят, иммунизированных данной вакциной, мы регистрировали увеличение количества клеток миелобластического ряда, повышение показателей лейкоэритробластического индекса, а также костномозгового индекса созревания эозинофилов и псевдоэозинофилов. В тимусе иммунных цыплят отмечалось увеличение удельного объема лимфоидной ткани, а в бурсе Фабрициуса - гиперплазию лимфоидных узелков. В селезенке и слепокишечных миндалинах цыплят, иммунизированных данной вакциной, нами выявлено повышение плотности узелковой лимфоидной ткани, увеличение размеров лимфоидных узелков, а также активное накопление плазматических клеток. В связи с этим использование сухой живой вирус-вакцины из шт. “Винтерфильд 2512” (производства ВНИИЗЖ) для иммунизации цыплят против болезни Гамборо наиболее предпочтительно, учитывая высокую иммуногенность, и низкую реактогенность данного биопрепарата.

В БелНИИЭВе разработана живая эмбриональная вирус-вакцина против болезни Гамборо из штамма «КМИЭВ-15». В настоящее время проводятся ее широкие производственные испытания. Изучение эффективности данного биопрепарата представляет особый интерес, учитывая антигенное родство вакцинного и эпизоотических штаммов вируса, циркулирующих в Республике Беларусь.

В возрасте 110-120 суток ремонтному молодняку применяют инактивированные вакцины. Их вводят однократно, внутримышечно, в область грудной мышцы в дозе 0,5 мл. Место введения вакцины обрабатывают 70%- ным этанолом. Установлено, что введение инактивированных вакцин повышает титр антител у птицы, иммунизированной ранее живыми вакцинами. Иммунизирующий эффект при этом более выражен, чем позже была использована инактивированная вакцина. Иммунизация ремонтного молодняка кур инактивированными вакцинами создает более напряженный и длительный иммунитет, чем при использовании живых вакцин.

Несмотря на иммунизацию ремонтного молодняка кур, часто наблюдается значительная вариабельность пассивных антител в стаде цыплят, что создает условия для заболевания птиц со слабым уровнем трансовариального иммунитета. Это обуславливает необходимость стимулирования поствакцинального иммунного ответа путем применения иммунотропных средств.

Нами проведены исследования по изучению влияния ряда иммуностимуляторов (натрия тиосульфат, тималин, АСД-2, левамизол) на иммуногенные свойства жидкой сорбированной инактивированной вакцины ВНИИЗЖ против инфекционной бурсальной болезни (производства г. Владимир, Россия). Установлено, что иммунизация ремонтного молодняка кур совместно с натрия тиосульфатом и тималином способствует созданию более напряженного противовирусного иммунитета, чем при использовании одной вакцины. Препараты АСД-2 и левамизол существенно не влияли на иммуногенность указанной вакцины.

Способ иммунизации ремонтного молодняка кур против ИББ жидкой сорбированной инактивированной вакциной ВНИИЗЖ совместно с натрия тиосульфатом:

Птицу вакцинируют в 110- 120- дневном возрасте. Предварительно готовят свежий 35%-ный раствор натрия тиосульфата. Полученный раствор стерилизуют кипячением в течение 30 минут, и, после остывания 50 мл 35%-ного водного раствора натрия тиосульфата смешивают с 200 мл (флакон - 400 доз) вакцины. Полученную смесь (содержащую 7% натрия тиосульфата) вводят однократно, внутримышечно, в область грудной мышцы, в дозе 0,6 мл (таким образом, объем вводимой вакцины увеличивается на 0,1 мл). Место введения обрабатывают 70%- ным этанолом.

Нами установлено, что иммунизация ремонтного молодняка против болезни Гамборо жидкой сорбированной инактивированной вакциной (производства ВНИИЗЖ, г. Владимир) совместно с иммуностимулятором натрия тиосульфатом (в 7%-ной водной концентрации) активизирует процессы иммуноморфологической перестройки в центральных (красный костный мозг, тимус, бурса Фабрициуса) и периферических (селезенка, кровь) органах иммунной системы птиц, что способствует повышению уровня специфических антител на 20-50%., созданию более напряженного поствакцинального иммунитета у маточного поголовья, и тем самым усилению иммунной защиты у цыплят за счет высокого уровня трансовариального иммунитета.

Способ иммунизации ремонтного молодняка кур против ИББ жидкой сорбированной инактивированной вакциной ВНИИЗЖ совместно с тималином:

Птицу иммунизируют в 110-120- дневном возрасте. В день проведения вакцинации проводят выборочное взвешивание 10-20 голов ремонтного молодняка кур для установления средней массы птиц. Тималин вводят совместно с вакциной в дозе 1 мг/кг тела птиц. Препарат выпускают в виде порошка во флаконах по 10 мг.

Пример. Средний вес птиц составляет 2 кг. Следовательно, 1 доза вакцины должна содержать 2 мг тималина. Во флаконе вакцины (200 мл - 400 доз) растворяют 800 мг (80 флаконов) тималина. Полученную смесь вводят однократно, внутримышечно, в область грудной мышцы, в дозе 0,5 мл. Место введения обрабатывают 70%-ным этанолом.

Наши исследования показали, что иммунизация птиц совместно с тималином способствует возрастанию специфических антител в крови в 1,5-4,4 раза по сравнению с применением вакцины без иммуностимулятора.

Вместе с тем, натрия тиосульфат является более дешевым и доступным препаратом. Поэтому его применение в период иммунизации ремонтного молодняка кур предпочтительнее.

Оценка напряженности поствакцинального иммунитета. Для оценки напряженности иммунитета при болезни Гамборо используют серологические методики: РИД, ВИЭФ, РН, РНГА и ИФА. У всех цыплят, привитых живыми вирус-вакцинами, антитела в сыворотке крови обнаруживаются, начиная с 20- 30- ти дневного возраста. Специфические противовирусные антитела у ремонтного молодняка кур, вакцинированного в возрасте 110-120 суток, выявляются у кур до 46-недельного возраста. Материнские антитела обнаруживаются у цыплят до 17- 20- ти дневного возраста.

Литература

инфекционная бурсальная болезнь птица

Алиев А.С. Специфическая профилактика инфекционного бурсита кур // Ветеринария-1991.-№ 3.-С.36- 39.

Бакулин В.А. Патоморфогенез и патоморфологическая диагностика инфекционной бурсальной болезни птиц: Автореф. дисс… док. вет. наук, Санкт- Петербург. - 1992. - 35с.

Бирман Б.Я., Голубничий В.П., Литвяк В.С., Насонов И.В., Захарик Н.В. Методические указания по диагностике инфекционной бурсальной болезни. - Минск, 1998. - 46 с.

Борисов А.В., Кузнецов В.Н., Кузнецов Ю.В., Гусев А.А., Смоленский В.Н., Коркина С.Н. Иммуногенность различных живых вакцин против инфекционной бурсальной болезни птиц // Вирус. болезни с.- х. животных: Тез. докл. Всерос. науч.- практ. конф., Владимир, 17- 21 апр. 1995 г. - Владимир, 1995. - С. 233.

Борисов А.В., Кузнецов В.Н., Харин В.М. Оценка эффективности различных живых вакцин против инфекционной бурсальной болезни птиц // Вирус. болезни с.- х. животных: Тез. докл. Всерос. науч.- практ. конф., Владимир, 17- 21 апр. 1995 г. - Владимир, 1995. - С. 232.

Вскрытие животных и дифференциальная патоморфологическая диагностика болезней: Учеб. пособие / Жаков М.С., Прудников В.С., Анисим И.А. и др. - Мн.: Ураджай, 1998. - 263с.

Герман В.В., Ольховик Л.А., Берхане И.И. О специфической профилактике инфекционной бурсальной болезни птиц (болезнь Гамборо) // Вирус. болезни с.- х. животных: Тез. докл. Всерос. науч.- практ. конф., Владимир, 17- 21 апр. 1995 г. - Владимир, 1995. - С. 252.

Дудников Л.А., Сарбасов А.Б., Федосеев К.Ю., Борисов А.В. Оптимальные условия определения антител к вирусу инфекционной бурсальной болезни в реакции встречного иммуноэлектрофореза // Вирус. болезни с.- х. животных: Тез. докл. Всерос. науч.- практ. конф., Владимир, 17- 21 апр. 1995 г. - Владимир, 1995. - С. 240.

Красников Г.А., Герман В.В., Берхане И.И., Ольховик Л.А. Гистологические исследования Фабрициевой бурсы при болезни Гамборо // Ветеринария. - 1996. - № 2. - С. 21- 25.

Кудрявцев Ф. С., Барышников С. А., Радчук Л. А. Ингибирующее действие вируса болезни Гамборо // Ветеринария. - 1981. - № 3. - С. 36- 37.

Меркулов Г.А. Курс патологогистологической техники. - Л., 1969. - 432 с.

Михалишина З.Я., Борисов А.В., Кузнецов Ф.Н., Федосеев К.Ю., Гусев А.А. Иммунологическая активность экспериментальных образцов инактивированной сорбированной вакцины против ИББ птиц // Вирус. болезни с.- х. животных: Тез. докл. Всерос. науч.- практ. конф., Владимир, 17- 21 апр. 1995 г. - Владимир, 1995. - С. 252.

Мудрак Н.С., Федосеев К.Ю., Оковытая Т.В., Кузнецов В.Н., Борисов А.В. Сравнительная оценка ИФА и РДП в диагностике ИББ // Вирус. болезни с.- х. животных: Тез. докл. Всерос. науч.- практ. конф., Владимир, 17- 21 апр. 1995 г. - Владимир, 1995. - С. 246.

Новиков В. Б., Дмитриенко В. В. Влияние вируса болезни Гамборо на формирование иммунитета у цыплят против ньюкаслской болезни // Вопр. вет. вирусол. микробиол. и эпизоотол.: Матер. науч. конф. ВНИИ вет. вирусологии и микробиологии, окт. 1992 г.- Покров, 1992. - С. 166- 167.

Щербакова Л.О., Колосов С.Н., Щербаков А.В., Дрыгин В.В., Борисов А.В., Гусев А.А. Антигенная вариабельность штаммов вируса инфекционной бурсальной болезни птиц (ИББ), использующихся в качестве вакцин // Вирус. болезни с.- х. животных: Тез. докл. Всерос. науч.- практ. конф., Владимир, 17- 21 апр. 1995 г. - Владимир, 1995. - С. 237- 238.

Allan W. H., Faragher J. T., Gullen G. A. Immunosupression the infectious bursal agent in chickens immunized against Newcastle disease // Vet. Rec.. - 1972. - Vol. 90. - P. 511- 512.

Asakawa J., Tsiagbe V.K., Thorbecke G.J. Protection against apoptosis in chicken bursa cells by phorbol ester in vitro // Cellular Immunology. - 1993. - Vol. 147. - P. 180- 187.

Auttti M. M. Infectious bursal disease (Gumboro) and vaccinations // Poultry Guide. 1987. - Vol. 24. - № 11-12. - P. 217-219.

Bayyary G.R., Story J.D., Beasley J.N., Skeeles J.K. Antigenic characterization of an Arkansas isolate of infectious bursal disease virus // Avian Dis. - 1996. - Vol. 40. - № 3. - P. 588- 599.

Burkhart E., Muller H. Susceptibility of chicken blood lymphoblasts and monocytes to infectious bursal disease virus (IBDV) // Archives of virology. - 1987. - Vol. 94. - P. 297- 303.

Chandravanshi R.R. Strategic planning of IBD control // Poultry Adviser. - 1993. - Vol. 26. - P. 25- 27.

Cloud S.S., Lillehoj H.S., Rosenberger J.K. Immune disjunction following infection with chicken anemia agent and infectious bursal disease virus: kinetic alterations of avian lymphocyte subpopulations // Veter. Immunol. Immunopathol. - 1992. - Vol. 34. - № 3/4. - P. 337- 352.

Cohen J.J. Programmed cell death in the immune system // Advances in Immunology. - 1991. - Vol. 50. - P. 55- 85.

Goddard R.D., Wyeth P.J., Varney W.C. Vaccination of commercial layer chicks against infectious bursal disease with maternally derived antibodies // Vet. Rec. - 1994. - Vol. 135. - № 12. - P. 273- 274.

Hassan M.K., Al- Natour M.Q., Ward L.A., Saif Y.M. Pathogenicity, attenuation, and immunogenicity of infectious bursal disease virus // Avian. Dis. - 1996. - Vol. 40. - № 3. - P. 567- 571.

Hassan M.K., Saif Y.M. Influence of the host system on the pathogenicity, immunogenicity, and antigenicity of infectious bursal disease virus // Avian Dis. - 1996. - Vol. 40. - № 3. - P. 553- 561.

Hassan M.K., Saif Y.M., Shawky S. Comparison between antigen- capture ELISA and conventional methods used for titration of infectious bursal disease virus // Avian Dis. - 1996. - Vol. 40. - № 3. - P. 562- 566.

Lam K.M. Lysis of chicken lymphocytes by infectious bursal disease viruses // Avian Dis.. - 1988. - Vol. 32. - P. 818- 821.

Lam K.M. Morphological evidence of apoptosis in chickens infected with infectious bursal disease virus // J.- comp.- pathol. - 1996. - Vol. 116. - № 4. - P. 367- 377.

Lasher H.N., Davis V.S. History of infectious bursal disease in the U.S.A - the first two decades // Avian-dis. - 1997. - Vol. 41. - № 1. - P.11- 19.

Lucio B., Hitchner S.B. Infectious bursal disease emulsified vaccine: effect upon neutralizing antibody levels in the dam and subsequent protection of the progeny // Avian Dis. - 1979. - Vol. 23. - P. 466- 468.

Lucio B. Why infectious bursal disease (Gumboro) vaccines fail // Cornell Poultry Pointers. - 1994. - Vol. 44. - N. 3. - P. 18- 19.

Lukert P.D., Saif Y.M. Infectious bursal disease // Diseases of Poultry. - 1991. - Vol. 9. - P. 648- 663.

McCabe M.J., Orrenius S. Deletion and depletion : the involvement of viruses and environmental factors in T- lymphocyte apoptosis // Laboratore Investigation . - 1992. - Vol. 66. - P. 403- 406.

Motyka B., Reynolds J.D. Apoptosis is assotiated with the extensive B cell death in the sheep ileal Peyer's Patch and the chicken bursa of Fabricius : a possible role in B cell selection // European Journal of Immunology. - 1991. - Vol. 21. - P. 1951- 1958.

Nieper H., Muller H. Susceptibility of chicken lymphoid cells to infectious bursal disease virus does not correlate with the presence of specific binding sites // J.- gen.- virol. - 1996. - Vol. 77. - № 6. - P. 1229- 1237.

Nunoya T., Otaki Y., Tajima M. Occurrence of acute infectious bursal disease with high mortality in Japan and pathogenicity of field isolates in specific- pathogen- free chickens // Avian Dis. - 1992. - Vol. 36. - № 3. - P. 597- 609.

Ojeda F., Scardova i., Guarda M.I., Ulloa J., Folch H. Proliferation and apoptosis in infection with infectious bursal disease virus: a flow cytometric study // Avian Dis. - Vol. 41. - № 2. - P. 312- 316.

Rosenberger J.K., Cloud S.S., Metz A. Use of infectious bursal disease virus variant vaccines in broilers and broiler breeders // Proc. 36 th Western Poultry Dis. Conf. - P. 105.

Tham K.M., Moon C.D. Apoptosis in cell cultures induced by infectious bursal disease virus following in vitro infection // Avian Dis. - 1996. - Vol. 40. - № 1. - P. 109- 113.

Размещено на Allbest