Изучение раздела "Инфекционный контроль и профилактика внутрибольничной инфекции"

Формирование у студентов знаний и умений по проведению дезинфекции, предстерилизационной очистки и стерилизации изделий медицинского назначения. Оценка знаний студентов, определение их профессиональной пригодности для дальнейшей медицинской деятельности.

Рубрика Педагогика
Вид контрольная работа
Язык русский
Дата добавления 07.05.2015
Размер файла 217,3 K

Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже

Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.

2. Персонал ЦСО принимает полученные контейнеры, осматривает их, убеждается в их прочности, регистрирует, загружает в автоклав и проводит стерилизацию.

3. По окончании цикла, выемка материала происходит со стороны "чистой" зоны.

В обеих половинах работают разные медицинские работники. При переходе из "грязной" зоны в "чистую" производится смена халата и мытье рук, одевается стерильная маска.

Готовый простерилизованный материал (биксы) укладываются на стеллажи в "чистой" зоне, где хранится определенное время.

При перевозке контейнеры укладываются в стерильные бязевые мешки.

ЦСО, обеспечивающее работу всей больницы, состоит также из двух зон: приемно-подготовительной и "чистой".

Приемно-подготовительная зона, занимающая ѕ территории, делится на несколько подзон, размещенных в отдельных комнатах или разделенных перегородками. При большом объеме работы ряд подзон совмещаются в одной комнате, границы отмечены на полу.

В первую подзону (приемно-сортировочную) через специальное окно поступают из отделений инструментарий, шприцы, иглы и др. предметы, всё сортируется по группам.

Во второй подзоне - моечной - проводится тщательная предстерилизационная очистка (разные предметы отдельно).

Третья подзона - упаковочная. Здесь производится сушка, повторная проверка инструментов и упаковка соответственно принятым в данном учрежеднии правилам. Все укладки маркируются.

Перевязочный материал, белье - поступают в ЦСО в биксах, готовых к стерилизации - поступают сразу в четвертую подзону - стерилизационную.

"Чистая" зона состоит из двух подзон.

Первая - стерильная - производится выгрузка материала из автоклавов, проверка стерильности, закрывание шторок биксов для прохождения пара, сортировка и размещение контейнеров на стелажах (тележках) в соответствии с принадлежностью.

Вторая подзона - экспедиция - предназначена для выдачи стерильного материала.

Помимо двух зон ЦСО, в нем должны быть предусмотрены следующие помещения:

1. комната заведующей отделением, старшей медицинской сестры,

2. комната для персонала

3. комната для хранения инвентаря, используемого при уборке помещений

4. вестибюль с гардеробом

5. кладовая для хранения реактивов и инвентаря

6. санузел

7. душевая для персонала

8. помещение для мойки тележек

Если в ЦСО производится заготовка перевязочного материала и операционного белья - предусматривается помещение для заготовки и хранения нестерильных материалов.

Районные ЦСО - обслуживающие ряд больниц, поликлиник, медпунктов, амбулаторий, расположенных на значительном расстоянии друг от друга. Структура работы та же. Проблема в транспортировке.

Приложение № 3

Профилактика вирусов парентеральных гепатитов и ВИЧ-инфекции.

ВИЧ-инфекция вызывается вирусом иммунодефицита человека, который действует на иммунную систему. Инфекция проявляется разнообразными клиническими состояниями от бессимптомного носительства до тяжелой истощающей и смертельной патологии.

Вирус неустойчив к физическим и химическим воздействиям. Он инактивируется при нагревании до 56*С в течение 10 минут, под влиянием хлорсодержащих препаратов, спирта, перекиси водорода погибает мгновенно. В желудочно-кишечном тракте вирус разрушается пищеварительными ферментами, соляной кислотой. Проявляет устойчивость к УФ и гамма лучам.

Основной путь передачи ВИЧ-инфекции - через зараженную кровь, через сперму инфицированного человека и другие биологические жидкости и секреты желез, так как вирус в них находится в свободном состоянии.

Основные пути передачи парентеральной инфекции.

1) нанесение травм иглами и другими острыми инструментами, загрязненными кровью или жидкими средами организма, инфицированного человека

2) контакт открытых ран с кровью или другими жидкими средами организма инфицированного человека (ВИЧ - инфекция не передается через неповрежденную кожу)

3) попадание крови или жидких сред инфицированного человека на слизистые оболочки или в глаза.

Основные способы передачи ВИЧ-инфекции:

1. половым (при половом контакте)

2. парентеральным (с кровью и ее препаратами)

3. вертикально (от инфицированной матери к ребенку внутриутробно, во время родов или вскоре после них, при кормлении грудью)

4. вирус может быть передан при трансплантации различных органов и искусственном оплодотворении женщин.

Приложение № 3

Общие меры предосторожности при работе с инфицированным материалом.

1. Для предупреждения травм иглами и другим острым инструментарием:

никогда не сгибайте, не ломайте и не надевайте на них колпачки (на иглы), выбрасывайте их сразу со шприцом в толстостенный или картонный, пластмассовый, стеклянный или металлический контейнер, при этом он должен быть расположен как можно ближе к месту использования инструмента;

кладите одноразовый и колющие инструменты в контейнер сразу, после использования. Для мытья и очистки игл перед дезинфекцией или стерилизацией надевайте перчатки.

избегайте ненужных манипуляций с зараженными и колющими инструментами.

2. Для предупреждения контакта открытых ран и слизистых оболочек:

закрывайте поврежденные участки кожи и открытые раны непромокаемыми повязками;

мойте руки водой с мылом сразу же после контакта с кровью или жидкими выделениями организма;

образцы крови и жидкие среды организма должны помещаться в контейнеры с надежными крышками, чтобы предотвратить утечку во время транспортировки;

надевать защитные очки, если возможен контакт с кровью, а также при работе с образцом крови;

испачканное кровью белье следует транспортировать в герметичных мешках или же в свернутом виде - грязной стороной внутрь. Белье следует стирать в горячей воде с моющим средством;

во время оказания помощи при родах медсестра может подвергнуться выделениям большого количества крови. При подготовке к родам в больнице или на дому необходимо приготовить перчатки, передники, мыло, воду;

надевать защитные очки, если возможен контакт с брызгами крови (во время больших хирургических операциях или стоматологических процедурах);

всасывание ртом должно быть заменено механическими пипетками во всех лабораторных, имеющих дело с кровью и жидкими выделениями человека.

3. Передача через зараженные инструменты:

все повторно используемые инструменты, после каждого использования должны пройти дезинфекцию, предстерилизационную очистку и стерилизацию;

по возможности, заменять инъекции пероральным (через рот) приемом лекарственных средств;

информируйте пациента о необходимости избегать делать инъекции у тех медицинских работников, которые небрежно стерилизуют инструменты. Если пациент настаивает на инъекциях, объяснить ему преимущества перорального введения лекарственных средств.

4. Переливание инфицированной крови:

любая кровь для переливания не должна содержать антител ВИЧ. В тех случаях, когда тестирование невозможно, переливание крови следует производить только в случае крайней необходимости;

по возможности, заменяйте переливание крови переливанием других подходящих для внутривенного введения жидкостей;

у пациентов, страдающих анемией, следует выяснить причину и лечить ее. Предпочтительнее устранить причину анемии ("витаминная недостаточность", "недостаточное питание"), чем начать переливание.

5. Нахождение крови и жидких сред организма на поверхности предметов (стола, пола):

удаляйте кровь или жидкие среды организма с помощью бумажных или тканевых полотенец, не испачкав руки, затем обращайтесь с ними, как с зараженным бельем;

мойте загрязненные поверхности предметов горячим моющим раствором;

продезинфицируйте поверхности этих предметов.

6. Удаление отходов:

жидкости (например, кровь) можно сливать в канализацию или выгребную яму только после дезинфекции;

твердые отходы, такие как пропитанные кровью перевязочный материал, санитарные подстилки и прокладки, плацента или взятые для биопсии образцы различных тканей, должны сжигаться или закапываться с соблюдением мер предосторожности;

перевязочный материал со следами крови или после контакта со слизистыми перед утилизацией замачивают в 3% растворе хлорамина в течение 60 минут.

Приложение № 4

Утилизация отходов.

В настоящее время действуют "Правила сбора, хранения и удаления отходов ЛПУ" от 22 марта 1999 г.

Существуют 5 классов опасности отходов:

Класс А - неопасные: отходы, не имеющие контакта с биологическими жидкостями человека, инфицированными больными, нетоксичные отходы. Пищевые отходы всех подразделений ЛПУ, кроме инфекционных (в том числе кожно-венерологических, фтизиатрических). Мебель, инвентарь, неисправное диагностическое оборудование, не содержащие токсичные элементы, неинфицированная бумага, смёт, строительный мусор. Цвет пакета - белый.

Класс Б - опасные, рискованные, потенциально инфицированные отходы. Материалы и инструменты, загрязненные выделениями, в том числе кровью. Выделения пациентов, паталого-анатомические отходы, органические операционные отходы (органы, ткани). Все отходы из инфекционных отделений, в том числе и пищевые. Отходы из микробиологических лабораторий, 3-4 групп патогенности. Биологические отходы виварии. Цвет пакета - желтый.

Класс В - чрезвычайно опасные. Материалы, контактирующие с больными особо опасными инфекциями. Отходы из лабораторий, работающих с микроорганизмами с 1-4 групп патогенности. Отходы физиологических и микробиологических лабораторий. Отходы с анаэробной инфекцией. Цвет пакета - красный.

Класс Г - отходы по составу близкие к промышленным. Просроченные лекарственные средства, отходы от лекарственных и диагностических препаратов, дезинфицирующие средства, не подлежащие использованию, с истекшим сроком годности, цитостатики и другие химические препараты. Ртутьсодержащие предметы, приборы и оборудование.

Класс Д - радиоактивные отходы. Все виды отходов, содержащие радиоактивные компоненты.

Приложение №5

Практические манипуляции.

Задание 1.Приготовить 1 л моющего раствора с Биолотом.

Задание 2.Приготовить 1л моющего раствора с использованием 3% раствора перекиси водорода.

Задание 3.Приготовить 1 л моющего раствора с пергидролем.

Задание 4.Приготовить 2л 3% раствора хлорамина.

Задание 5.Приготовить 2л 1% раствора хлорамина.

Задание 6.Приготовить 0,5% раствор хлорной извести 1л.

Задание 7.Приготовить 0,6% раствор гипохлорита кальция 2л.

Задание 8.Приготовить 2% раствор хлорамина 3л.

Задание 9.Приготовить 1% раствор хлорной извести 1л.

Задание 10.Приготовить 3л моющего раствора с Биолотом.

Задание 11.Провести закладку материала в бикс.

Приложение № 7

ВАРИАНТЫ

тестовых заданий

1. Обязательное использование масок во всех отделениях стационара

1) В период эпидемиологического неблагополучия.

2) На усмотрение администрации.

3) На усмотрение эпидемиолога.

4) Постоянно.

2. Автоклавирование относится к методам стерилизации:

1) физическим

2) химическим

3) радиационным

4) биологическим

3. На социальном уровне обработка рук проводится

1. Перед и после ухода за пациентом.

2. Перед и после ухода за раной.

3. До и после снятия перчаток.

4. После контакта с биологическими жидкостями.

4. Растворы для обработки слизистой глаз при попадании биологической жидкости инфицированного пациента

1) 6% перекись водорода, раствор перманганата калия.

2) 3% перекись водорода, 96° этиловый спирт.

3) 3% перекись водорода, проточная вода.

4) Проточная вода, 1% борная кислота.

5. Раствор для обработки слизистой носа при попадании биологической жидкости инфицированного пациента

1) Проточная вода.

2) Протаргол.

3) Борная кислота.

4) Этиловый спирт.

6. Концентрация рабочего раствора хлорамина для обработки рабочих поверхностей процедурного кабинета в случае загрязнения кровью

1) 3%.

2) 1%.

3) 0,5%.

4) 0,25%.

7. Раствор для обработки полости рта при попадании биологической жидкости ВИЧ-инфицированного пациента

1) 70% этиловый спирт.

2) 96% этиловый спирт.

3) Протаргол.

4) Альбуцид.

8. Срок сохранения стерильности бикса с фильтром:

1) 7 суток.

2) 20 суток

3) 24 часа.

4) В течение рабочего дня

9. Раствор, применяемый для обработки кожи медсестры при попадании крови ВИЧ-инфицированного пациента

1) Этиловый спирт.

2) Сульфацил натрия.

3) Борная кислота.

4) Фурацилин.

10. Режим стерилизации, используемый для резиновых изделий:

1) 2 атм, 132*С,20 минут.

2) 1,1 атм,120*С, 45 минут

3) 1,1 атм, 120*С, 60 минут

4) 180*С, 60 минут

11. Цель хирургической обработки рук медицинского персонала

1) Обеспечение кратковременной стерильности.

2) Обеспечение продолжительной стерильности.

3) Профилактика профессионального заражения.

4) Удаление бытового загрязнения.

12. Срок хранения стерильного материала в крафт-пакетах со скрепками

1) 3 суток.

2) 20 суток.

3) 7 дней.

4) 24 часа.

13. Цель обычного мытья рук медицинского персонала перед осмотром пациента

1) Обеспечение кратковременной стерильности.

2) Создание кратковременной стерильности.

3) Профилактика профессионального заражения.

4) Удаление бытового загрязнения.

14. На социальном уровне обработку рук проводят

1) Перед и после ухода за пациентом.

2) Перед и после ухода за раной.

3) До и после снятия перчаток.

4) После контакта с биологическими жидкостями.

15. На гигиеническом уровне обработку рук проводят

1) Перед и после приема пищи.

2) Перед инвазивными процедурами.

3) При бытовом загрязнении рук.

4) После посещения туалета.

16. Перевязочный материал со следами крови перед утилизацией замачивают в 1% растворе хлорамина

1) да, верно

2) нет, неверно

3) оба ответа правильные

4) в 2% растворе хлорамина

17. Перевязочный материал со следами крови перед утилизацией замачивают в 3% растворе хлорамина на 60 минут

1) да, верно

2) нет, неверно

3) оба ответа правильные

4) в 0,5% растворе хлорамина

18. Уничтожение во внешней среде и с обсемененных объектов пациента возбудителей инфекционных заболеваний - это:

1) стерилизация

2) деконтаминация

3) дезинфекция

4) дезинсекция

19. При попадании крови на слизистую оболочку носа, следует немедленно провести обработку

1) 70 град, спиртом

2) 1% раствором борной кислоты

3) 1 % раствором протаргола

4) 1% раствором хлорамина

20. Инфицирование медработников может произойти при нанесении травм иглами, загрязненными кровью или жидкими средами организма инфицированного ВИЧ человека.

1) да, верно

2) нет, неверно

3) только кровью

4) только полостными жидкостями

Приложение № 8

Тестовый контроль (эталоны ответов).

1 - 1

2 - 1

2 - 3

4 - 4

5 - 2

6 - 1

7 - 1

8 - 2

9 - 1

10 - 2

11-2

12-1

13-4

14-1

15-2

16-2

17-1

18-3

19-3

20-1

Приложение № 9

Тактика медицинского персонала при попадании

биологической жидкости на:

- незащищенную кожу рук

1. протереть руки тампоном, смоченным дезинфицирующим раствором

(70% этиловым спиртом, 3% раствором хлорамина).

2. вымыть руки с мылом двухкратно теплой проточной водой.

3. насухо вытереть индивидуальным полотенцем.

- в глаза

1. промыть глаза под проточной водой.

2. промыть бледно-розовым раствором 1: 10 000 или 1% раствором борной кислоты, или закапать 1% раствор сульфацила натрия.

- в нос

1. промыть носовые ходы проточной водой

2. закапать в нос 1% раствор протаргола.

- в полость рта

прополоскать рот проточной водой, затем прополоскать 70% этиловым спиртом или розовым раствором 1: 5000 перманганата калия.

- при проколе кожи использованной иглой или порезе

1. обработать перчатки дезинфицирующим раствором и снять

2. выдавить кровь из ранки

3. промыть место травмы водой с мылом, не останавливая кровотечение

4. дважды обработать место травмы 5% раствором йода или 70% этиловым спиртом. После каждой обработки дать антисептическому раствору высохнуть.

5. заклеить место укола пластырем или наложить повязку.

Приложение № 10

Правила приготовления дезинфицирующих

хлорсодержащих растворов

Цель: дезинфекция. Проведение обеззараживания предметов ухода за больными, медицинского инструментария, предметов обстановки и помещений.

Оснащение: перчатки, фартук, четырехслойная маска, бутыль из темного стекла, закрытые емкости (из стекла, пластмассы, эмалированные), хлорная известь, хлорамин.

Стандарты деятельности:

1. наденьте фартук, маску, перчатки.

2. приготовьте 10% раствор осветленной хлорной извести (маточный):

- поместите в эмалированное ядро 1 кг измельченной сухой хлорной извести;

- долейте до 10 л холодной воды (небольшими порциями, хорошо помешивая);

- оставьте на 24 часа, закрыв крышкой и перемешивая в течение суток 2-3 раза;

- слейте осветленный раствор хлорной извести, процеживая его через несколько слоев марли, в темную бутыль с плотной крышкой.

3. прикрепите бирку из клеенки, на которой укажите дату приготовления 10% раствора хлорной извести (раствор пригоден в течение 7 дней), концентрацию, название раствора.

Приготовление рабочих растворов хлорной извести

Рабочие растворы хлорной извести готовятся из маточного раствора. При приготовлении соблюдайте следующие пропорции

0,5% раствор - 500 мл 10% раствора на 9,5 л воды

1% раствор - 1000 мл 10% раствора на 9 л воды

2% раствор - 2000 мл 10% раствора на 8 л воды

3% раствор - 3000 мл 10% раствора на 7 л воды

Приготовление рабочих растворов хлорамина.

Рабочие растворы хлорамина готовят непосредственно перед употреблением путем размешивания порошка до полного растворения в воде, лучше подогретой до 50-60* С. готовят в емкости из темного стекла или в эмалированной посуде с крышкой.

1% раствор - 10г хлорамина на 990 мл воды

2% раствор - 20г хлорамина на 980 мл воды

3% раствор - 30г хлорамина на 970 мл воды

5% раствор - 50г хлорамина на 950 мл воды.

Активированные растворы хлорамина и хлорной извести, обладающие значительно большей активностью, готовят, добавляя аммиак или нашатырный спирт (10% раствор аммиака), из расчета 1: 8 или 1: 10. эти растворы не стойкие.

Приложение № 11

7 правил безопасности

для защиты кожи и слизистых оболочек при контакте с кровью или жидкими выделениями организма любого пациента.

1. Мыть руки до и после любого контакта с пациентом.

2. Рассматривать кровь и жидкие выделения всех пациентов как потенциально инфицированные и работать с ними только в перчатках.

3. Сразу после применения помещать использованные шприцы и катетеры в специальный контейнер для утилизации острых предметов, никогда не снимать со шприцев иглодержатели с иглами и не производить никаких манипуляций с использованными иглами.

4. Пользоваться средствами защиты глаз и масками для предотвращения возможного попадания брызг крови или жидких выделений в лицо (во время хирургических операций, манипуляций, катетеризации и лечебных процедур в полости рта).

5. Использовать специальную влагонепроницаемую одежду для защиты тела от возможного попадания брызг крови или жидких выделений.

6. Рассматривать все белье, запачканное кровью или жидкими выделениями, как потенциально инфицированное.

7. Рассматривать все образцы лабораторных анализов как потенциально инфицированное.

Приложение №12

Предстерилизационная очистка инструментария.

Цель: дезинфекция, удаление лекарственных препаратов, загрязнений.

Оснащение: ёмкости с дезинфицирующим раствором, водный термометр, емкость с моющим раствором, ерши, марлевые салфетки, ватно-марлевые тампоны.

В качестве моющего раствора можно использовать:

1) Биолот - 5 г, вода питьевая (используется однократно температура 40-45*С). подогревают воду, затем добавляют Биолот.

2) 3% раствор перекиси водорода 170 мл, вода питьевая 825мл, СМС-5г (Прогресс, Айна, Астра, Лотос). Подогревают до температуры 50-55*С, годен на 6 обработок, пока не порозовеет.

3) 33% пергидроля - 17 мл, вода питьевая 988 мл, СМС 5г температура 50-55*С, на 6 обработок, пока не порозовеет.

Состав моющих средств приведен на 1 литр раствора.

Последовательность действий:

1. промойте в 3% растворе хлорамина инструменты, шприцы, иглы

2. погрузить в 3% раствор хлорамина на 1 час (в другой ёмкости)

3. промыть под проточной водой (30 секунд на каждое изделие)

4. замочить изделие на 15 минут в моющем растворе при полном погружении

5. промыть каждое изделие в моющем растворе при помощи ершей или ватно-марлевых тампонов 30 секунд на каждое изделие

6. промыть под проточной водой каждое изделие

7. провести контроль качества предстерилизационной обработки

8. промыть в дистилированной воде по 30 секунд на каждое изделие или прокипятить в дистилированной воде 5 минут

9. просушить в сухожаровом шкафу шприцы, иглы до обезвоживания при температуре 85*С.

Примечание: дезинфекция изделий, контактирующими со слизистыми и ранами проводится там, где они использовались

Приложение №13

ЗАКЛАДКА МАТЕРИАЛА В БИКСЫ.

Цель: стерилизация в автоклавах.

Оснащение: бикс, хлопчатобумажная ткань или марля, 0,5% раствор нашатырного спирта, клеёнчатая бирка, материал (простыни, полотенце, пеленки, халаты, маски, бинты, салфетки, шарики, перчатки), индикатор стерильности.

Последовательность выполнения:

1. приготовить белье и перевязочный материал: белье, сложенное в форме плоских пакетов, салфетки, сложенные стопками по 10-15 штук, шарики, завязанные в марлевую салфетку.

2. протрите бикс изнутри салфеткой, смоченной 0,5% раствором нашатырного спирта

3. откройте шторки бикса

4. выстелите изнутри бикс хлопчатобумажной тканью или марлевой салфеткой

5. уложите перевязочный материал рыхло, чтобы пар свободно проникал в глубину и обеспечивал надежную стерилизацию

6. уложите в бикс белье, располагая его в вертикальном положении "на ребро", рыхло, чтобы между отдельными предметами свободно проходила ладонь

7. поместите индикатор стерильности в центральную часть бикса

8. заверните материал краями салфетки, выстилающей бикс

9. закройте бикс, прикрепите бирку с указанием отделения, наименования содержимого бикса, дату стерилизации

10. отправьте бикс в ЦСО.

Примечание: количество индикаторов определяется размером бикса и объемом заложенного материала. В большие биксы индикатор закладывается на дно, в центре верхней трети содержимого.

Приложение №13

Стерилизация (обеспложивание) - уничтожение всех микроорганизмов включая их споровые формы на всех объектах с помощью химических и физических средств.

Стерилизация является основой асептики.

В настоящее время действует отраслевой стандарт, определяющий методы, средства и режимы стерилизации. Он обязателен для всех учреждений, пользующихся изделиями медицинского назначения.

Физические методы стерилизации:

1. Автоклавирование - действие на микроорганизмы и их споры водяным паром и давлением.

Подвергаются изделия медицинского назначения: хирургическое белье, перевязочный материал, перчатки, трубки, катетеры, хирургический инструментарий, стекло, изделия из латекса, полимерных материалов.

Существует 2 режима автоклавирования:

1 режим стерилизации - при давлении 2 атмосферы, температура 132 *С, время 20 минут.

2 режим стерилизации - давление 1,1 атмосферы, температура 120*С, время 45 минут.

Стерилизация проводится в стерилизационных коробках, в биксах с фильтроми и без них или двойной бязевой (тканевой) упаковке, в пергаментной бумаге (влагопрочной), одноразовых пакетах с термовременными индикаторами.

Срок стерильности трое суток сохраняется в упаковках:

1) бикс без фильтра

2) бязевая упаковка

3) бумажная упаковка

4) пакеты со скрепками

Срок стерильности 20 суток:

1) в биксах с фильтрами

2) пакеты, заклееные со всех сторон

3) одноразовые пакеты с термовременными индикаторами

Качество стерилизации оценивается по цвету индикатора в сравнении с эталоном.

2. Стерилизация в сухожаровом шкафу - действие на микроорганизмы и их споры высокими температурами. Это воздушный метод стерилизации сухим жаром. Используется для обеспложивания инструментария из металла, стекла, силиконовой резины.

Существует 2 режима:

1 режим стерилизации - температура 180*С, время 60 минут.

2 режим стерилизации - температура 160*С, время 150 минут.

Упаковка: бумага мешочная, крафт бумага, скрепки, клей. Можно стерилизовать инструментарий без упаковок на металлических лотках.

Срок хранения стерильности в пакетах со скрепками 3 суток, в заклеенных пакетах - 20 суток.

Без упаковки - использовать сразу после стерилизации. Инструментарий со стерильного стола можно использовать в течение 6 часов.

3. Ионизирующее излучение - радиационный метод стерилизации.

Используется для перевязочного материала, инструментов, фармационных препаратов, пищевых продуктов.

Предметы, простерилизованные таким способом упаковывают в герметичные полиэтиленовые пакеты.

Срок хранения до нескольких лет.

4. Ультразвук

5. Ультрафиолетовое излучение (с помощью бактерицидных ламп - для обеззараживания воздуха, воды, пищевых продуктов).

Химические методы стерилизации:

1. стерилизация химическими растворами, содержащими хлор, йод, окислители, кислоты. Например,

перекись водорода 6% раствор при температуре 18-20*С в течение 6 часов.

глутаровый альдегид 2,5 % раствор в течение 6 часов.

Сайдекс в течение 4 часов - инструмент, 10 часов полимеры.

Гигасепт 10% раствор в течение 10 часов.

2. стерилизация газовым методом - применение окиси этилена с бромистым этилом, пары растворов формальдегида в этиловом спирте. Применяется для обеспложивания тех предметов, которые нельзя подвергнуть высоким температурам термической обработки (инструменты с зеркальной поверхностью, с радиоэлектронным оборудованием).

Приложение № 14

КОНТРОЛЬ ЭФФЕКТИВНОСТИ СТЕРИЛИЗАЦИИ.

Осуществляется согласно приказу Минздрава РФ Государственного санитарно-эпидемического надзора Московской области от 14.07.2003 г., называется " О контроле качества стерилизации объектов медицинского назначения", и "Методические указания по дезинфекции, предстерилизационной очистке и стерилизации изделий медицинского назначения" №МУ-287-113 от 30.12.1998.

Существует долгосрочный метод контроля стерилизации - бактериологический контроль проводится 1 раз в 7 дней и непосредственный химический контроль стерилизации с использованием термовременных индикаторов.

Термовременные индикаторы одноразового применения типа ИС:

Стериконт

Стеритест

Интест

Срабатывают при комплексном воздействии на них требуемых температур и времени стерилизации. При этом эффективным может считаться тот, который может сочетаться с проводимыми комплексными условиями: количество и уровни места расположения индикатора в стерилизационной камере и внутри стерильной поверхности.

Проверка индикатора выполняется в 2 этапа:

1. при открывании стерилизационной камеры (изменение цвета свидетельствует о завершении цикла);

2. при открывании биксов, упаковок и укладок (изменение цвета - инструментарий и перевязочный материал стерилен)

Приложение № 15

Правила пользования стерильным биксом.

1. осмотр внешнего вида бикса: крышка должна плотно прилегать к корпусу, шторки - закрыты, замки зафиксированы в закрытом положении, проверяется дата стерилизации.

2. перед вскрытием бикса обязательно отмечается дата и время вскрытия на бирке. Внимание! Срок использования стерильного материала 24 часа.

3. процедурная (перевязочная) медсестра, одетая в повседневную рабочую одежду, тщательно моет руки (не менее 1 минуты) проточной водой с двухкратным намыливанием, используя мыло с дозатором, мыльную стружку или мыло в мелкой расфасовке. Вытирает чистым полотенцем или (лучше) одноразовой салфеткой, затем проводит дезинфекцию кожи рук кожным антисептиком, либо 70% этиловым спиртом или 0,5% раствором хлоргекседина диглюконат, Лизонин и др. Путем последовательного протирания двумя марлевыми тампонами с антисептиком в течение 1 минуты на каждую руку.

4. вскрывают крафт-пакет со стерильной рабочей одеждой, которая надевается в следующем порядке:

хирургический халат, медицинская шапочка (косынка),

четырехслойную маску, резиновые (латексные) перчатки.

5. открывают крышку бикса, аккуратно берут один стерильный шарик, лежащим в упаковке стерильным пинцетом. Затем смачивают его 70% спиртом или антисептиком.

Тщательно обрабатывают кисть одной руки и затем повторяют процедуру со вторым шариком и другой кистью.

6. берут стерильный пинцет (карцанг)

7. стерильным инструментом вынимают термовременной индикатор. Цвет индикатора сравнивают с эталоном. Если он соответствует эталону, то приклеивают его на бирку на весь период использования бикса.

Примечание: если цвет индикатора не соответствует эталону, то ставят в известность старшую медицинскую сестру. После выяснения причины, отправляют на повторную стерилизацию.

Размещено на Allbest.ru


Подобные документы

  • Контроль знаний, умений и навыков студентов: виды, методы. Рейтинговая система обучения. Педагогические условия организации эффективного контроля знаний в высших учебных заведениях. Диагностическая, обучающая, развивающая, воспитательная функции контроля.

    реферат [645,6 K], добавлен 06.10.2016

  • Изучение методов учета и контроля знаний студентов по модульно-рейтинговой системе. Характеристика критериев письменного экзамена и принципов получения объективной оценки. Исследование правил построения системы непрерывного контроля знаний студентов.

    курсовая работа [301,9 K], добавлен 27.03.2010

  • Принципы получения объективной оценки знаний студентов. Способы оценивания и контроля результатов их обучения. Методы оценивания практических работ учащихся СПО в дизайн-образовании. Принципы построения системы непрерывного контроля знаний студентов.

    курсовая работа [3,3 M], добавлен 17.12.2012

  • Рейтинговая система контроля и оценки учебных достижений в компьютерных системах обучения. Методика постановки целей обучения и выбора критериев для оценки его качества. Система рейтингового контроля умений и знаний студентов агролицея №59.

    курсовая работа [77,2 K], добавлен 14.02.2007

  • Качество знаний, его главные параметры. Функции и виды контроля знаний в педагогическом процессе. Экспериментальная проверка знаний и умений учащихся. Контроль знаний учащихся как элемент оценки качества знаний. Уровни контроля и проверки знаний по химии.

    курсовая работа [33,0 K], добавлен 04.01.2010

  • Психологическая компетентность спортивного педагога как компонент профессиональной деятельности. Определение уровня сформированности психологических знаний и умений среди студентов - будущих специалистов по физической культуре и спорту и тренеров.

    диссертация [474,9 K], добавлен 13.09.2012

  • Контроль знаний как существенный элемент современного урока. Место контроля знаний и умений учащихся на уроках литературы. Технология контрольно-оценочной деятельности учителя. Традиционные и нетрадиционные формы контроля знаний и умений учащихся.

    курсовая работа [107,4 K], добавлен 01.12.2011

  • Понятие оценки знаний, умений и навыков, дидактические цели и задачи данного процесса. Использование практических заданий при проверке знаний. Значение контрольно-оценочной самостоятельности младшего школьника. Особенности организации контроля достижений.

    курсовая работа [34,2 K], добавлен 16.12.2012

  • Формирование профессионализма личности будущих специалистов. Адаптация к условиям профессиональной деятельности. Информационная модель обучения. Формирование и структура личностной готовности студентов-психологов к профессиональной деятельности.

    реферат [45,8 K], добавлен 30.11.2010

  • Критерии оценки знаний и умений учащихся. Методы контроля и самоконтроля. Методы усвоения знаний, умений и навыков в соответствии с требованиями программами. Рейтинговая и тестовая системы оценки знаний как фактор повышения эффективности обучения.

    курсовая работа [45,3 K], добавлен 28.02.2012

Работы в архивах красиво оформлены согласно требованиям ВУЗов и содержат рисунки, диаграммы, формулы и т.д.
PPT, PPTX и PDF-файлы представлены только в архивах.
Рекомендуем скачать работу.