Углеводородокисляющие микроорганизмы – перспективные объекты экологической биотехнологии

Особенности использования углеводородокисляющих микроорганизмов для решения экологических проблем. Современные методы борьбы с нефтяными загрязнениями воды и почвы. Трансформации, осуществляемые спорами грибов и актиномицетов. Соокисление и кометаболизм.

Рубрика Биология и естествознание
Вид курсовая работа
Язык русский
Дата добавления 02.01.2012
Размер файла 2,7 M

Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже

Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.

Причем степень биодеструкции нефти и нефтепродуктов консорциумом на 10-15% выше по сравнению с монокультурой Rhodococcus erythropolis AC-1339 Д.

Вышеуказанный консорциум способен утилизировать углеводороды нефти и в жидкой полной минеральной среде. В зависимости от количества инокулята и условий культивирования степень биодеструкции будет отличаться. Данные отражены в таблице 3.

Таблица 3 - Степень биодеструкции нефти

№ опыта

Нефтешлам

Количество инокулята

Условия

Степень биодеструкции

11

1% масс.

3% от общего объёма массы

Культивирование - в течение четырех суток на термостатированной качалке при температуре 25-30 0С и 90 об/мин. Экстракция органическим растворителем.

72%

22

1% масс.

После экстракции ксилолом нефтешлама вносили 3% от общего объёма массы.

Экстракция нефтешлама ксилолом. Биодеструкция в течение четырех суток на термостатированной качалке при температуре 25-30 0С и 90 об/мин

91%

33

1% масс.

без внесения микроорганизмов после экстракции ксилолом

Экстракция ксилолом

57%

44

1% масс.

без внесения микроорганизмов

-

-

Очистка нефтешлама при применении консорциума на 15% больше, чем при экстракции ксилолом, и составляет 72%. Наибольшая степень очистки, более 91%, наблюдается после предварительной экстракции нефтепродуктов из нефтешлама ксилолом и использовании подобранного консорциума. В процессе культивирования консорциума наблюдается прирост гетеротрофных микроорганизмов.

Такая тенденция отражена на рисунке 22.

НАЗАРОВ и др.

Размещено на http://www.allbest.ru/

36

Биотехнология, 2005, >

Рисунок 20 - Рост гетеротрофных микроорганизмов в полной минеральной среде

Биоочистку нефтешлама можно осуществлять путем послойного расположения. Для этого между слоями можно закладывать песок, чернозем и перфорированные трубы для аэрации. С целью уменьшения испарения нефтепродуктов дно и поверхность установки герметизируют покрытием.

Для увеличения эффективности биодеструкции углеводородов нефти в нефтешлам добавляют опилки, а в качестве биостимулятора - спиртовую барду, фосфогипс.

Доочистка нефтешлама подобранным консорциумом с внесением биодобавок (спиртовой барды, фосфогипса) и опилок значительно интенсифицирует процесс очистки нефтешлама. Так, уже на 180-240 сутки степень биодеструкции нефти и нефтепродуктов с консорциумом на 10-15% выше, чем с монокультурой Rhodococcus erythropolis AC-1339 Д. Зависимость содержания нефти в почве и времени показана на рисунке 23. Фосфогипс 1-5 % масс. и спиртовая барда 1-5 % масс. являются активными стимуляторами роста нефтеокисляющих микроорганизмов.[1]

Рисунок 23 - Динамика содержания нефти и нефтепродуктов в нефтешламе на протяжении всего процесса биоочистки

Доочистка с применением подобранного консорциума, отходов спиртового производства и фосфогипса позволяет снизить содержание нефти и нефтепродуктов в нефтешламе до 0,2 мг/г почвы за 450 сут. В случае с монокультурой содержание нефти и нефтепродуктов в нефтешламе составило 0,2 мг/г почвы только на 540 сут.

Таким образом, данный способ доочистки нефтешлама биологическим методом позволяет снизить содержание нефти и нефтепродуктов до нормативно допустимого и может быть рекомендован к промышленному применению.[1]

4.2 Биоремедиация нефтешламов компостированием

В Казанском государственном университете была оценена эффективность обезвреживания и переработки концентрированного нефтехимического шлама путем компостирования в опытно-полевых условиях с помощью комплексного токсико-биологического и химического мониторинга. Компостирование нефтешлама осуществляют на огражденной барьером бетонной площадке с фильтрованием и сбором избыточной жидкости. В качестве разрыхляющего агента использовали отработанный сорбент биофильтра слоем 0,3 м на подготовленной площадке. Извлеченный из шламонакопителя нефтешлам распределяли поверх разрыхлителя с последующим отведением избыточной жидкости. Компостируемые смеси формировали методом послойной укладки. Соотношение шлама и разрыхлителя составляло около 1:2 (по объему). Аэрацию компостируемых смесей обеспечивали с помощью полиэтиленовых перфорированных труб.

Процесс биоремедиации нефтехимического шлама в опытно-полевых условиях можно разделить на две фазы: активную, характеризующуюся высокой скоростью деструкции загрязнений (0--4 мес), и более медленную, отличающуюся низкой скоростью деградации остаточных в основном труднодоступных компонентов нефтяного загрязнения (5--18 мес).

Снижение содержания нефтяных углеводородов при компостировании нефтешлама в комбинации с другими промышленными отходами (какие) представлено в таблице 3. Наибольшее снижение загрязнения происходит при компостировании с добавлением ОПЛ (таблица 3, вариант В).

При компостировании происходит увеличение суммарной концентрации гуминовых и фульвовых кислот. При этом лапрол стимулирует накопление кислот в компосте (таблица 3, вариант В).

Таблица 3 - Химический состав нефтешлама в процессе компостирования

Добавки

Показатели

A (NPK)

Б (NPK+дизельное топливо)

В (NPK+ твердый отход производства лапрола)

Длительность компостирования, месс

0

3

18

0

3

18

0

3

18

Углеводороды нефти, г/кг

54,7

34,0

22,3

61,2

36,5

24,5

56,7

27,0

12,3

Сумма восьми испытанных ПАУ, мг/кг

454,4

77,5

28,6

462,1

82,1

35,6

449,9

76,1

25,5

Сумма гуминовых и фульвовых кислот, г/кг

16,7

19,8

30,6

18,7

19,4

32,8

16,2

18,7

34,5

рН

7,2

7,5

7,0

7,2

7,2

6,8

7,1

7,0

6,7

При компостировании нефтепродуктов численность спорообразующих бактерий в начальный период, соответствующий активной фазе ремедиации, снижалась на порядок.(рисунок 24, б. В соответствии с характером используемого метода этот факт может отражать как снижение содержания собственно спор, так и переход данной части микробиоценоза в вегетативную форму со сниженной токсико-резистентностью. [7]

В конце теплого сезона количество бактерий в состоянии спор обычно восстанавливается до начального уровня и в дальнейшем не претерпевает резких изменений (рисунок 24, б), что свидетельствует об устойчивости спор, в том числе в условиях неблагоприятного температурного режима.

Число актиномицетов в процессе компостирования нефтешлама увеличивается на первом этапе. В нефтешламе численность микромицетов изменяется в широких пределах.

Такая динамика может отражать как избирательную токсичность углеводородов и/или их метаболитов, так и конкурентные или антагонистические отношения с другими представителями биоценоза.

Деградация загрязнений является результатом активной жизнедеятельности микробного сообщества, обитающего в нефтешламе, о чем свидетельствует, в частности, повышение числа деструкторов. При создании относительно благоприятных условий собственная микрофлора нефтешламом загрязненных объектов способна к разложению умеренной дозы контаминирующих агентов (5--10 % углеводородов нефти) в результате увеличения численности и повышения активности эндогенного микробного сообщества. Во втором ремедиационном периоде наблюдается уменьшение доли ПАУ-деструкторов, что свидетельствует об исчерпании доступных ростовых субстратов соответствующей химической структуры и о снижении биодоступности остаточного загрязнения.

Рисунок 24 - Динамика роста различных физиологических групп микроорганизмов в процессе компостирования: а -- аэробные гетеротрофы; б -- спорообразующие бактерии; е -- актиномицеты; г -- микромицеты; А, Б, В -- варианты пилотно-полевого компостирования

Снижение биоразлагаемости может являться также результатом связывания продуктов метаболизма нефтяного загрязнения с компонентами гумуса и гумусоподобными веществами, количество которых существенно увеличивалось при компостировании нефтешлама.[8]

Изучение численности микробных популяций в процессе компостирования нефтешлама позволяет выявить следующие закономерности. В течение первого трехмесячного этапа в первую очередь возрастает численность аэробных гетеротрофных бактерий, к которым принадлежат и специфические деструкторы нефтяного загрязнения, что характерно и для нефтешламо-загрязненных почв, не подвергающихся очистительным процедурам. Для весенне-летнего сезона второго ремедиационного периода наиболее показательно увеличение числа актиномицетов, что объясняется их экологической стратегией, а именно, ростом количества этих спорообразующих прокариот на поздних стадиях деструкции труднодоступных субстратов.

При компостировании происходит снижение нефтяного загрязнения до 90%. Полученный грунт не токсичен для растений и инфузорий. [7]

4.3 Биоремедиации почв и водной среды

Еева, Е.К. Емельянова, ОН. Загребельный, СЕ. Олькин, И.К. Резникова, В.Е. Репин в венном научном центре вирусологии и биотехнологии "Вектор" выделяли психрофильные и галотолерантные микроорганизмы-нефтедеструкторов, способных эффективно деградировать нефть и нефтепродукты в климатических условиях северных регионов с перспективой их использования в целях биоремедиации.

Исследователями был проведён скрининг штаммов по признаку нефтепоглощающей активности. В ходе исследования природных субстратов были выделены мезофильные и психрофильные микроорганизмы и была доказана их нефтеокисляющая способность.

Полученные группой учёных штаммы-нефтедеструкторы идентифицированы как представители родов Arthrobacter, Bacillus, Pseudomonas, Rhodo:cus, Mycobacterium, Actinomyces, Nocardia и выделены также утилизирующие нефть штаммы дрожжей (в том числе Yarrowia lipolylicd) и плесневых грибов. При различных условиях микроорганизмы-деструкторы утилизировали нефть с разной эффективностью. Отличительной чертой -значительной части штаммов коллекции является способность к росту и окислению нефтепродуктов при пониженных температурах.

Для ряда штаммов (Bacillus sp. 282, Arthrobacter sp. 283, штаммов дрожжей NF 4-2 и NF 5-1) степень биодеградации нефти была выявлена весовым методом. Учёные показали, что за 7 суток культивирования исследованные штаммы утилизировали от 69 до 84 % от исходного содержания нефти. Групповой состав компонентов нефти позволил им выявить соотношение углеводородов к смолам и асфальтенам после биодеградации. Наибольшая деструкция смол и асфальтенов, относящихся к наиболее трудно утилизируемым микроорганизмами фракциям нефти, обнаружена в образцах со штаммами дрожжей NF 4-2 и NF 5-1.

Исследователями было выяснено, что штаммы микроорганизмов-деструкторов Y. lipolytica NF5-1 я Pseudomonas sp. KL-1, входящие в состав ассоциации (исходное соотношение 1:1), способны расти и утилизировать нефтепродукты в широком диапазоне температур (4--35°), рН среды (4--8,5) и при повышенных концентрациях соли (NaCl до 7 %).

При повышенных концентрациях соли, ассоциация штаммов Pseudomonas sp. KL-1 и Y. lipolytica NF5-1 достаточно активно окисляла нефть При 5% NaCl степень утилизации достигала 78 %, а при 7% NaCl -- 73 % за 6 сут. Эта же ассоциация достаточно эффективно утилизировала. [9]

4.3.1 Использование психротолерантных штаммов-нефтедеструкторов для биоремедиации почв и водной среды

Исследования показали, что при совместном использовании штаммы-нефтедеструкторы Pseudomonas sp. KL-1 и Y. lipolytic; NF5-1 обладают высокой биоэмульгирующей и нефтеокисляющей активностью, а также устойчивостью к неблагоприятным факторам окружающей среды (способны утилизировать нефть в условиях значительных колебаний температуры и рН среды, а также при ее засоленности).,а также выявлена высокая степень утилизации нефти разного фракционного состава выделенными штаммами-деструкторами. Эффективными углеводород-утилизирующими культурами являются Pseudomonas sp. KL-1, Y. lipolytica NF5-1, Candida sp. Nb 2, Arthrobacter sp. Ja 285p, и Arthrobacter sp. Ja 269p., Они перспективны для биотехнологических разработок. Штаммы являются также психротолерантными и солеустойчивыми (до 5--10% NaCl). Это предполагает возможность их использования в засоленных природных субстратах при пониженных температурах.[17]

Было показано, что ассоциация штаммов Pseudomonas sp. KL-1 и Y. lipolytica NF5-1 является эффективной в широком интервале температур (в том числе пониженных); составляющие ее штаммы не проявляют антагонизм по отношению друг к другу и к представителям эндогенной микрофлоры почв, что позволяет рекомендовать данную ассоциацию для дальнейшей разработки комплексных препаратов биоремедиации в условиях северных регионов. [18]

4.3.2 Биоремедиация почв в условиях северных регионов России

Н.Н. Волченко и Э.В. Карасёва в Кубанском государственном университете провели скрининг штаммов -- продуцентов биоПАВ среди нефтеокисляющих бактерий. Объектом исследования являлись изоляты углеводородокисляющих бактерий, полученных из коллекции культур.

Сущность метода заключается в колориметрической оценке количества клеток, находящихся между гидрофильной и гидрофобной фазами.

Для определения эффективности смеси используется индекс эмульгирования (ИЭ). ИЭ представляет собой показатель, характеризующий эмульгирующую активность микробной культуры. Принцип определения заключается в оценке объема эмульсии, образовавшейся в результате встряхивания образца культуры-эмульгатора с гидрофобной жидкостью. ИЭ вычисляют по формуле

ИЭ = (УЭП) * 100%,

где V3 -- объем эмульсии,

Vn -- полный объем жидкости, включающий в себя объем водный фазы (культура или супернатант) + объем углеводородной фазы (в нашем случае -- дизтопливо) + объем образовавшейся эмульсии.

Первичному скринингу на наличие поверхностно-активных свойств подверглись 39 изолята углеводородокисляющих бактерий, большая часть которых принадлежала к группе нокардиоморфных актиномицетов. Клетки некоторых штаммов, выращенные на питательном агаре, обладали поверхностно-активными свойствами -- эмульгировали дизельное топливо, но не снижали уровень поверхностного натяжения среды. Исследуемые изоляты были проверены на способность к деградации нормального гексадекана в жидкой минимальной среде. В результате были отобраны 10 культур, продемонстрировавшие разную интенсивность роста.

Наиболее активными являлись культуры F2, В2, J8, в то время как культуры S6, Z5 и HI не проявили активного роста на среде МС-С16. Кроме того, ПН последних культур слабо изменилось по сравнению с ПН при росте на исходной неинокулированной среде. Гидрофобность клеток бактерий также значительно различалась у разных изолятов: максимальной гидрофобностью (87--96 %) обладали бактерии штаммов J8, F2, В2, а минимальной (4--13 %) -- штаммы S6 и Z5.

Важным биотехнологическим свойством культур-продуцентов является локализация синтезируемых клетками биоПАВ вне клетки, в цитоплазме или оболочке. Сравнение величин ПН и ИЭ жидких культур и их супернатантов свидетельствует о том, что у большинства изолятов поверхностно-активные свойства связаны с биомассой бактерий, а не с супернатантом КЖ. Процесс биоремедиации лучше проводить при инокуляции нефтешлама коллекционными культурами -- продуцентами биоПАВ и аборигенными углеводородокис-ляющими бактериями, активированными in vitro. Этот метод является самым эффективным и диаграммы рисунка 26 свидетельствуют об этом.[14]

Рисунок 26 - Концентрация нефтепродуктов в нефтешламе при различных вариантах обработки

При внесении аборигенных штаммов процент деградации нефти аборигенными штаммами был несколько выше. В таблице 5 представлены данные деградации нефти гетеротрофными и нефтеокисляющими микроорганизмыми при добавлении различных агентов. [15]

Таблица 5 - Микрофлора нефтезагрязненного чернозема и уровень деградации нефти в модельном эксперименте при обработке различными агентами (время обработки -- 30 суток)

Вносимые агенты

Гетеротрофные бактерии, КОЕ/г

Нефтеокисляющие бактерии, КОЕ/г

Деградация нефти, %

1

2

Коммерческие ПАВ

Гидробрейк

БОК-3

7,4*107

1,8*108

8,85*107

2,3*108

57

56

3

Минеральный стимулятор

NH4S2O8

5,0*107

4,66*107

55

4

5

6

Коллекционные культуры - продуценты биоПав

Rhodococcus sp. F2

Rh. erythropolis

Rhodococcus sp.J8

2,6*108

3,0*108

1.8*108

1,0*108

2,43*108

1.21*108

61

61

63

7

Контроль

Вода

1,1*108

5,06*108

58

При сравнении результативности бактериальных культур были получены данные, проиллюстрированные в таблице 6.

Таблица 6. Концентрация микрофлоры в процессе биоремедиации нефтешлама

Физиологическая группа бактерий

Вносимые бактериальные культуры

На 15-е сутки инкубации, КОЕ/г

На 30-е сутки инкубации, КОЕ/г

Коллекционные

9,5 * 107

1,3 * 10s

Гетеротрофные

Аборигенные

5,2 * 107

1,0- 107

Углеводородокисляющие

Коллекционные Аборигенные

3,9 * 107 7,4 * 10s

3,9 * 106 4,9 * 105

Таким образом, результатом ремедиации нефтезагрязненной почвы с использованием ПАВ-продуцирующих бактерий является уменьшение концентрации нефтепродуктов, увеличение содержания микрофлоры, снижение токсичности по отношению к высшим растениям. При этом указанные процессы осуществлялись не менее, а иногда и более активно при использовании коллекционной микрофлоры по сравнению с аборигенной. [16]

4.4 Биодеструкция углеводородов нефти методом непрерывного культивирования

В Институте биохимии и физиологии микроорганизмов им. Т.К. Скрябина РАН А.Н. Шкидченко и Е.С. Иванова изучили возможность восстановления нефтедеструктивной активности микроорганизмов в процессе непрерывного культивирования.

В качестве объектов исследования использовали психрофильные штаммы Pseudomonas sp. 22 ,Rhodococcus erythropolis 21, Microbacterium tefaciens 6 и Pseudomonas sp. 9.

В качестве источника углерода использовали дизельное топливо. Культивирование осуществляли в батареи реакторов непрерывного действия. Впервом реакторе осуществяли получение эмульсии и деструкцию легких фракций углеводородов нефти. Во второй реактор подавали нефть в виде 20%-ной водной эмульсии. Третий реактор служил для дополнительного окисления трудно-разлагаемых фракций углеводородов нефти.

Выделенные из нефтезагрязненных регионов психротрофные штаммы обладали достаточно высокой исходной нефтедеструктивной активностью при культивировании в жидкой питательной среде с нефтью в качестве единственного источника углерода . Влияние длительного хранения микроорганизмов на их нефтедеструктивную активность отображено на рисунке 27.

Рисунок 27 - Влияние длительного хранения микроорганизмов на их нефтедеструктивную активность: / -- исходная активность; 2 -- активность после 8 лет хранения

Десятидневная инкубация культур при 4--6° сопровождалась биодеструкцией до 50% внесенной нефти. Однако после 8 лет хранения культур на агаризованных средах с периодическими пересевами на среды с нефтью активность штаммов существенно изменилась. Так, для Pseudomonas sp. 9 она снизилась на 67,8%, для Pseudomonas sp. 22 -- на 61%, а для Rh. erythropolis 21 -- на 50% от исходной величины.

Для проточного культивирования исследуемые штаммы нефтедеструкторов выращивали раздельно и смешивали перед внесением в биореактор. В таблице 7 приведены данные об исходном соотношении интродуцированных в инокуляте штаммов-нефтедеструкторов.

В результате длительного непрерывного культивирования интродуцированных штаммов микроорганизмов не только возросла их нефтедеструктивная активность, но также была селекционирована устойчивая ассоциация микроорганизмов-нефтедеструкторов, конкурентоспособная в открытой системе.

Для проверки устойчивости полученной ассоциации почву, содержавшую 5% нефти инкубировали при 4--6° в течение длительного времени. Через 90 сут инкубации содержание углеводородов нефти в почве снизилось на 29% от исходной. Полученные в модельном эксперименте данные подтверждают устойчивость созданной ассоциации микроорганизмов-нефтедеструкторов в открытых системах. [12]

Таблица 7 - Содержание интродуцированных штаммов-нефтедеструкторов при проточном культивировании

Штаммы

Соотношение штаммов-нефтедеструкторов

в инокуляте

после периодического культивирования в течение 48 ч

в результате проточного культивирования, ч

300

800

Pseudomonas sp. 22

36

17

0,5

2

Rh. erythropolis 21

14

2

94

94

M. liquefaciens 6

32

29

0,5

3

Pseudomonas sp.9

18

24

1

0

Аборигенная микрофлора

-

28

4

1

4.5 Биоремедиация черноземной почвы, загрязненной нефтью

В. Карасёва, И.Е. Гирич. А.А. Худокормов и их коллеги в Кубанском государственном университете города Краснодар создали метод эффективной биоремидиации чернозёмной почвы после реального нефтяного загрязнения с использованием аборигенной микрофлоры, азотно-фосфатных удобрений и препарата микроорганизмов.

За время проведения эксперимента из образцов нефтезагрязненной почвы выдели культуры аборигенных микроорганизмов, cпособных снижать концентрацию нефти более чем на 70%. В процессе идентификаи были обнаружены представители следующих родов: Arthrobacter, Tsukamuriella, Rhodococc Gordonia, Bacillus и Pseudomonas. Динамика численности гетеротрофов в нефтезагрязненной почве подчинялась закономерностям, выявленным в ходе экспериментальной работы в лаборатории. Рост плотности популяции микробных клеток в течение первых ста дней очистки сопровождался наиболее быстрой деструкцией углеводородов.

За семь месяцев биоремедиационных работ содержание углеводородов в нефтезагрязненном черноземе было снижено на 98,2%, и при концентрации нефтепродуктов 0,48 г/кг земля была возвращена в сельскохозяйственный оборот. [13]

Заключение

Способ утилизации нефтешламов микроорганизмами очень перспективен, т. к. нефтяные загрязнения являются серьёзной экологической проблемой. Работа является актуальной т.к. представляет собой системный анализ методов использования углеводородокисляющих микроорганизмов.

В ходе проведения работы были сделаны следующие выводы:

1. Существуют различные способы переработки и утилизации отходов нефтеперерабатывающей промышленности с помощью механических, физико-химических, химических и биологических методов. При выборе способа утилизации приоритет в основном отдается способам, направленным на извлечение из нефтешламов углеводородного сырья.

2. Для биоремедиации земель используют следующие микроорганизмы-деструкторы: Pseudomonas sp., Rhodococcus sp, Microbacterium sp, Bacillus sp., Arthrobacter sp., Y. lipolytica NF5-1, Fusarium species, Candida sp.

3. На основе литературных данных изучены культуральные, морфологические и биохимические свойствами углеводородокисляющих микроорганизмов

4. Анализ литературных данных показал, что для биоремедиации почвы лучше всего использовать консорциум микроорганизмов. Ассоциация микроорганизмов позволяют деструктировать не только легкие фракции нефти, но и тяжелые, такие как дизельное топливо, мазут, нафталин.

5. Для увеличения степени биодеструкции углеводородов нефти в почве необходимо использовать не только биохимическую активность селекционных культур, но и стимулировать углеводородокисляющую аборигенную микрофлору. Проведенный анализ практических результатов свидетельствует о том, что источники фосфора и азота влияют на скорость деструкции углеводородов нефти в почве.

Список использованных источников

1. Головцов, М.В. Переработка нефтешламов с последующей доочисткой до экологически безопасного уровня: автореферат дис. [Электронный ресурс]/М.В.Головцов.-Электрон.дан.-[Б.м.], 2008.-Режим доступа: http//www.disert.info/golovcov_3442167.html

2. Прутенская, Е.А. Основы биотехнологии / Прутенская Е.А., Ожимкова Е.В..- Тверь: ТГТУ. -2009.- 115с.

3. Абдрахманов, Т.А. Роль нефтеокисляющих бактерий при очистке нефтезагрязнённых лугово-аллювиальных почв. [Электронный ресурс]/ / Т.А. Абдрахманов, З.А.Жаббаров, А.Х.Вахабов.- Электрон.дан.- [Б.м.], 2006.-Режим доступа: http//ej.kybagro.ru/2006/01/pdf/14.pdf

4. Определитель бактерий Берджи / Под ред. Дж.Хоулта, Н.Крига, П.Снита, ДЖ. Стейли. -М.: Мир.- Т. 2. - 1994.- 368 с.

5. Микроорганизмы [Электронный ресурс] / - Электрон. дан. - Режим доступа к дан.: http://www. wikipedia.ru/

6. Биоремедиация черноземной почвы, загрязненной нефтью / В.Карасёва, Н. Гирич, И. Худокормов, Н. Алешина, С. Карасёв// Биотехнология.- 2006.-№1.-С.27-34

7. Волченко,Т.И. Скрининг углеводородокисляющих бактерий -- продуцентов поверхностно-активных веществ биологической природы и их применение в опыте по ремедиации нефтезагрязненной почвы и нефтешлама/ Н.Н. Волченко, Э.В. Карасёва // Биотехнология.- 2008.-№6.-С.

8. Назаров, А.В. Потенциал использования микробно-растительного взаимодействия для биоремедиации// А.В. Назаров, С.А. Иларионов // Биотехнология, -2007.- № 3.-C.56-64

9. Пырченкова И.А, Гафаров А.Б., Пунтус И.Ф. и др. // Прикл. биохим. микробиол. -- 2006. -- Т. 42. --№ 3. -- С. 298--305.

10. Evans, C.G.T., Herbert, D., Tempest, D.B. //Methods in Microbiology. -- 1970. -- V. 2. -- P. 277--327.

11. Carhart, G., Hegeman, G. II Appl. Microbiol. -- 1975. -- V. 30. --P. 1046.

12. Методы общей бактериологии /Под ред. Герхарда и др. Т.З. -- М: Мир, 1984 -- 264 с.21-26

13. Голубев,А.В. Потенциал использования микробно-растительного взаимодействия для биоремедиации // А.В. Назаров, С.А. Иларионов // Биотехнология, -2005, -№ 2/-C.23-28

14. Пат. 2145419 Российская федерация, МПК G 01К 11/24, 11/36. Bacillus sp. 282/ С.П. Иванов .-№98769834/06, заявл. 13.03.2003, опубл.15.11.2005, Бюл.№23.- 3с.

15. Шкидченко, Л.Н. Влияние длительности хранения суспензии микроорганизмов-нефтедеструкторов на их физиологическую активность// Л.Н. Шкидченко // Биотехнология, -2006, -№ 2,-C.51-55

16. Гафаров А.Б. Деградация нефтешламов аборигенными и продуцированными микроорганизмами // А.Б. Гафаров // Биотехнология, -2008, -№ 6, С. 80-85

17. Коронелли Т.В. Принципы и методы интенсификации биологического разрушения углеводородов в окружающей среде (Обзоры /Прикладная биохимия и микробиология. 1996. Т. 32. №6. С.579-585

18. Ившина И.Б. Ассимиляция-углеводородов бактериями рода Rhodococcus // Экология и популяционная генетика микроорганизмов: труды УрО РАН. Ин-т Экологии и генетики микроорганизмов. Свердловск. УНЦ АН СССР, 1987. С. 41-46.

19. Влияние нефтяного загрязнения на некотрые компоненты агросистемы / Хазиев Ф.Х., Тишкина ЕИ., Киреева Н.А., Кузахметов Г.Г. // Агрохимия.- 1988.- № 2. С. 56-61.

20. Оценка эффективности некоторых приемов воздействия на разложение нефти в почве /Усачева Г.М., Самосова С.М.,Мартынов А.А., Фильченков В.И., Петрова Л.М. // Усп. газовой хромотографии. - Казань.- 1982. Вып. 6. С. 105-114.

21. Волченко, Н.Н. Скрининг углеводородокисляющих бактерий -- продуцентов поверхностно-активных/ Н.Н. Волченко. Э.В. Карасёва / /Биотехнология,- 2006,- № 2, С. 45-60

22. Назаров А.В. Потенциал использования микробно-растительного взаимодействия для биоремедиации/ А.В. Назаров, С.А. Иларионов//Биотехнология,- 2005,- №5. С.75-84

23. Есикова,Т.Е. Деградация нефтешламов продуцированными микроорганизмами/ Т.Е.Есикова // Биотехнология.- 2004.-№3.-С.4-13

Размещено на Allbest.ru


Подобные документы

  • Систематика - распределение микроорганизмов в соответствии с их происхождением и биологическим сходством. Морфология бактерий, особенности строения бактериальной клетки. Морфологическая характеристика грибов, актиномицетов (лучистых грибов) и простейших.

    реферат [27,2 K], добавлен 21.01.2010

  • Физиолого-биохимические особенности галофильных микроорганизмов. Галофильные микроорганизмы и их применение в промышленности. Выделение из проб воды озера Мраморное галофильных микроорганизмов, определение их численности. Результаты исследования.

    курсовая работа [82,0 K], добавлен 05.06.2009

  • Характеристика основных показателей микрофлоры почвы, воды, воздуха, тела человека и растительного сырья. Роль микроорганизмов в круговороте веществ в природе. Влияние факторов окружающей среды на микроорганизмы. Цели и задачи санитарной микробиологии.

    реферат [35,7 K], добавлен 12.06.2011

  • Санитарно-показательные микроорганизмы для почвы. Требования, предъявляемые к водопроводной воде. Микрофлора полости рта взрослого. Санитарно-гигиеническое состояние воздуха. Микроорганизмы промежности. Химические факторы, действующие на бактерии.

    тест [29,4 K], добавлен 17.03.2017

  • Приоритетные загрязнители окружающей среды и их влияние на почвенную биоту. Влияние пестицидов на микроорганизмы. Биоиндикация: понятие, методы и особенности. Определение влажности почвы. Учет микроорганизмов на различных средах. Среда Эшби и Гетчинсона.

    курсовая работа [7,6 M], добавлен 12.11.2014

  • История применения дрожжей. Традиционные биохимические процессы, протекающие с применением дрожжей. Дрожжи в современной биотехнологии. Выделение чистых культур дрожжевых грибов. Техника безопасности при работе в лаборатории экологической биотехнологии.

    дипломная работа [713,4 K], добавлен 30.11.2010

  • Микроорганизмы как мельчайшие организмы, различаемые только под микроскопом. Способы рекомбинирования генов. Механизм селекции микроорганизмов. Технология синтеза гена искусственным путем и введения в геном бактерий. Отрасли применения биотехнологии.

    презентация [4,1 M], добавлен 22.01.2012

  • Обзор способов размножения бактерий, актиномицетов, дрожжей, плесневых грибов. Влияние лучистой энергии и антисептиков на развитие микроорганизмов. Роль пищевых продуктов в возникновении пищевых заболеваний, источники инфицирования, меры профилактики.

    контрольная работа [21,2 K], добавлен 24.01.2012

  • Особенности грибов, участвующих в разрушении древесины. Основные представители ксилотрофных базидиальных грибов, их лигнолитический и целлюлолитический ферментативные комплексы. Практическое применение ферментов дереворазрушающих грибов в биотехнологии.

    курсовая работа [1,4 M], добавлен 07.06.2011

  • Микробно-растительные взаимодействия при росте растений. Симбиоз актиномицетов и растений. Грибо-растительный симбиоз, микориза. Паразитизм микроорганизмов на растениях. Численность микроорганизмов различных физиологических групп в различных типах почвы.

    курсовая работа [2,9 M], добавлен 28.03.2012

Работы в архивах красиво оформлены согласно требованиям ВУЗов и содержат рисунки, диаграммы, формулы и т.д.
PPT, PPTX и PDF-файлы представлены только в архивах.
Рекомендуем скачать работу.