Витамин Е

История открытия витамина Е. Строение токоферолов, их физическо-химические свойства. Биологическая активность витамина Е. Методы выделения токоферолов из природных объектов. Промышленные методы синтеза триметилгидрохинона из псевдокумола сульфированием.

Рубрика Химия
Вид контрольная работа
Язык русский
Дата добавления 07.12.2013
Размер файла 26,7 K

Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже

Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.

Размещено на http://www.allbest.ru/

1. История открытия

Открытие витамина Е произошло в 1922 году Гербертом Эвансом и Кэтрин Скотт Бишоп. В своих экспериментах они показали, что крысы, которые питались лишь смесью казеина, сала, молочного жира, соли и дрожжей были бесплодными. Репродуктивную функцию можно было восстановить добавив листья салата или масло из зародышей пшеницы. Добавление рыбьего жира или муки не приводило ни к каким улучшениям. Из этого был сделан вывод, что «фактор X», содержащийся в определённых растительных маслах, был очень важным составляющим пищи. Так был обнаружен жирорастворимый витамин Е.

В 1931 году Маттилл и Олкотт описали антиоксидантную функцию витамина Е. В том же году было выяснено, что недостаток витамина Е вызывает мышечную недостаточность и энцефаломаляцию (поражение головного мозга).

В 1936 году ?-токоферол был впервые выделен Эвансом. Название токоферол (от греч. tokos - потомство, phero - несу) было предложено Джорджем Калхауном, профессором греческого языка Калифорнийского университета.

В 1938 году была описана химическая структура ?-токоферола, а Пауль Каррер смог его синтезировать.

Первое терапевтическое использование витамина Е был проведено в 1938 году Виденбауэром, который использовал масло зародышей пшеницы как добавку для 17 недоношенных новорожденных младенцев, страдающих от нарушений роста. Одиннадцать из них выздоровели и смогли возобновить нормальные темпы роста.

2. Строение

Витамин Е - группа природных и синтетических соединений - производных токола. Важнейшими соединениями этой группы являются токоферолы и токотриенолы. Последние значительно менее активны, чем токоферолы, и отличаются от них тремя двойными связями в положениях 3', 7' и 11'. Все асимметрические центры молекул природных токоферолов (положения 2, 4' и 8') имеют R-конфигурацию.

Токол является производным хромана (бензо [b] дигидропиран или бензо [b] оксинан) и представляет собой 6-гидрокси-2-метил-2 - (4', 8', 12'-триметилтридецил) - хроман.

В пищевых продуктах обнаружены ?-, ?- и ?-токоферолы, наиболее активным из них является ?-токоферол. В настоящее время выделены из природных источников или получены синтетическим путем 7 химических аналогов ?-токоферола, обладающих витаминной активностью.

Строение токоферолов

№ п/п

Соединение 1

R(C5)

R' (с7)

R» (С8)

1

Токол

Н

Н

Н

2

?-токоферол

СН3

СН3

СН3

3

?-токоферол

СН3

Н

СН3

4

?-токоферол

Н

СН3

СН3

5

?-токоферол

СН3

СН3

Н

6

?-токоферол

Н

Н

СН3

7

?-токоферол

СН3

Н

Н

8

?-токоферол

Н

СН3

Н

В молекуле токола и, следовательно, всех токоферолов имеются три асимметрических атомов углерода в положениях 2, 4' и 8'. В природном ?-токофероле все асимметрические атомы имеют D (R) - конфигурацию. При химическом синтезе его получают смесь всех возможных стереоизомеров (2-Д L-, 4'-DL-, 8'-DL-), которую принято называть D, L-?-токоферол, или полный рацемат ?-токоферола. Естественно, что природный и синтетический витамины, как по физическим, так и по биологическим свойствам несколько отличаются.

В настоящее время все перечисленные химические аналоги ?-токоферола выделены в очищенном виде из растительных масел или получены синтетически. Установлено, что количество метильных групп, а также конфигурация асимметрических центров оказывают существенное влияние на биологическую активность токоферолов. Биологическая активность синтетического D, L-?-токоферола составляет 40% от активности природного a-токоферола, а ?-, ?- и ?-токоферолов - соответственно 20-30, 10 и 1%. С уменьшением метильных групп в молекулах токоферолов их витаминная активность снижается, однако антиоксидантная эффективность - увеличивается.

3. Физические свойства

Токоферолы представляют собой светло-желтые вязкие жидкости, не растворимые в воде, хорошо растворимые в большинстве органических растворителей: хлороформе, эфире, гексане и др., хуже - в ацетоне и этаноле, разлагаются при облучении УФ-светом, устойчивы при нагревании до 100 °С в атмосфере инертного газа. Растворы интенсивно флуоресцируют (максимум возбуждения 295 нм, излучения - 320-340 нм). Устойчивы к действию минеральных кислот и щелочей. При взаимодействии с O2 и другими окислителями превращаются в хиноны (сложные эфиры витамина значительно более устойчивы к окислению). Разлагаются при действии ультрафиолета. В атмосфере инертного газа стабильны при нагревании до 100 °С.

4. Химические свойства

Важнейшие соединения группы витамина Е: токоферолы и токотриенолы. Последние значительно менее активны и отличаются от них тремя связями в положениях 3', 7' и 11'. Все асимметричные центры природных токоферолов имеют R-конфигурацию. Натуральный токоферол обозначают как RRR-?-токоферол (раньше также использовалось d-?-токоферол), а полученный синтетически - all-rac-?-токоферол (он является смесью восьми стереоизомеров, 7 из которых в природе не найдены). Если для синтеза используется фитол, то получается смесь RRR-?-токоферола и 2S, 4'R, 8'R-?-токоферола (2-epi-?-токоферола) называется 2-ambo-?-токоферол (раньше dl-?-токоферол). Все формы являются активными антиоксидантами, однако только изомеры с 2R-конфигурацией имеют высокую биологическую активность.

Все токоферолы легко окисляются, но устойчивы к восстановителям. В зависимости от природы окислителя образуют производные хинонов или продукты расщепления хроманового цикла:

Токоферолы легко образуют сложные и простые эфиры.

С изоформой циановой кислоты (изоциановой кислотой HN=C=0) токоферолы образуют так называемые аллофанаты, которые хорошо кристаллизуются и служат для идентификации витамина Е.

Кислоты и щелочи не оказывают разрушающего действия на токоферолы. Витамин Е содержится главным образом в липопротеиновых мембранах клеток и субклеточных органелл, где локализован благодаря межмолекулярному взаимодействию с жирными ненасыщенными кислотами.

Витамин Е находится практически во всех пищевых продуктах. Наиболее богаты витамином Е растительные масла, особенно кукурузное (40-80 мг в 100 г.), подсолнечное (40-70 мг), хлопковое (50-100 мг) и масло из пшеничных зародышей (100 - 400 мг).

5. Значение и применение

Биологическая активность витамина обусловлена его способностью образовывать устойчивые свободные радикалы за счет отщепления атома водорода от гидроксильной группы, которые могут взаимодействовать со свободными радикалами, участвующими в образовании органических пероксидов. Тем самым витамин Е предотвращает окисление ненасыщенных липидов (а также витамина А) и предохраняет от разрушения биологические мембраны. ?-Токоферол является антикоагулянтом и предотвращает свертывание крови в сосудах. При недостатке витамина Е возникают мышечная дистрофия, некроз печени и др.

В медицинской практике витамин Е применяется в виде ?-токоферилацетата («А-токоферола ацетата») для лечения мышечной дистрофии, при угрозе выкидыша, нарушении функций половых желез, сердечных заболеваний, сосудистых расстройствах, ревматоидных артритах и др. В последнее время витамин Е находит применение в косметике, пищевой промышленности и животноводстве.

Существует мнение, что витамин Е является эликсиром молодости, так как имеются данные о взаимосвязи между витамином и старением организма.

6. Методы выделения токоферолов из природных объектов

Существуют разные методы выделения витамина Е из природных объектов. Наибольшее значение имеют:

1. Экстракция неомыляемого остатка масел органическими растворителями. После отгонки растворителя и отделения стеринов кристализацией из спирта, витамин Е очищают высоковакуумной перегонкой (молекулярной дистилляцией).

Более чистые концентраты витамина получают, применяя адсорбционную хроматографию. Для стабилизации концентрата используют антиоксиданты - гидрохинон или аскорбиновую кислоту.

2. Прямая молекулярная дистилляция растительных масел. При 200-240°С (0,004 мм рт. ст.) отбирают нужную фракцию. Двойная дистилляция позволяет получить продукт с концентрацией токоферолов до 60%.

7. Промышленные методы синтеза ?-токоферола и «?-токоферола ацетата»

В промышленных масштабах производят в основном наиболее активный из соединений группы витамина Е ?-токоферол и продукт его ацетилирования. Важнейшие методы синтеза ?-токоферола заключаются в конденсации триметилгидрохинона с фитолом или его производными - изофитолом, фитилхлоридом или фитилбромидом, углеродный скелет которых состоит из четырех конденсированных частично гидрированных изопреновых фрагментов.

Существует несколько схем синтеза триметилгидрохинона (ТМГ).

1. Получение триметилгидрохинона из м-крезола. При метилировании м-крезола образуется смесь продуктов, из которой выделяют 2,3,6 - триметилфенол, окисляют, а затем восстанавливают, что приводит к образованию ТМГ.

2. Получение триметилгидрохинона из нитромезитилена путем избирательного восстановления его в мезитилгидроксиламин, который превращают в тримегилги - дрохинон с использованием реакции Бамбергера:

3. Получение триметилгидрохинона из псевдокумола с использованием методов сульфирования (бромирования), нитрования, восстановления, окислительного замещения аминогруппы на оксогруппы и их восстановления.

Псевдокумол является продуктом коксохимического производства и входит в состав одной из выделяемых фракций при переработке каменноугольной смолы. Сульфирование фракции позволяет не только ввести в молекулу псевдокумола сульфогруппу, но и выделить продукт в чистом виде. К сожалению метод многостадийный, отличается большой трудоемкостью, пожаро- и взрывоопасностью.

Технология получения триметилгидрохинона из псевдокумола

Сульфирование ведут в реакторе с мешалкой и обратным теплообменником. Из мерника в аппарат сливают концентрированную серную кислоту, нагревают ее до 50 °С и при этой температуре загружают псевдокумол. Реакционную массу выдерживают 1 - 1,5 ч при 50 °С и передают в нитратор, где ее охлаждают до 15 °С подачей рассола в рубашку аппарата.

Для нитрования используют концентрированную азотную кислоту, которую сливают из мерника при температуре 15-25 °С, и нитрат калия, который загружают через люк аппарата. Реакционную массу перемешивают до тех пор, пока она полностью не загустеет, после чего в нитратор загружают воду, не допуская повышения температуры более 80?С, и образовавшуюся массу передают в кристаллизатор, где охлаждают до 2-4?С. Выпавший осадок 3,6 - динитропсевдокумол-5-сульфокислоты фильтруют на центрифуге, промывают водой до слабокислой реакции и направляют на гидрирование.

Процесс гидрирования проводят в водной среде в присутствии никель-хромового катализатора. Для этого в реактор загружают воду и 3,6 - динитропсевдокумол-5-сульфокислоту, реакционную массу нагревают до кипения и выдерживают до полного растворения субстрата. Затем отключают мешалку и раствор отстаивают 20-30 мин, охлаждая до 70-75?С, после чего его передают в автоклав, куда затем загружают водную суспензию никель-хромового катализатора. Автоклав продувают азотом, после чего подают водород, создавая давление до 6 МПа. Реакционную массу нагревают до 70-80 °С и ведут гидрирование до прекращения поглощения водорода (ок. 1,5 ч). По окончании процесса давление водорода сбрасывают через «воздушку», реакционную массу охлаждают до 60-70 °С и передают на нутч-фильтр. Водный раствор 3,6 - диаминопсевдокумола передают на окисление.

Окисление амина проводят оксидом марганца (IV) в присутствии серной кислоты. В реактор загружают водный раствор 3,6 - диаминопсевдокумола, из мерника сливают концентрированную серную кислоту и через люк аппарата загружают оксид марганца (IV). Реакционную массу перемешивают 2-3 ч при 18-20 °С, после чего передают в аппарат для отгонки триметил-n-бензохинона с водяным паром, при этом продукт собирают в сборнике с толуолом. Образовавшийся толуольный раствор передают на стадию восстановления.

Восстановление триметил-n-бензохинона осуществляют дитионитом натрия. Раствор триметил-n-бензохинона в толуоле промывают водой, загружают в реактор, добавляют воду и дитионит натрия и перемешивают 1 ч. Реакционную массу отстаивают и делят слои. Верхний слой - раствор триметилгидрохинона в толуоле - дважды промывают водой, фильтруют от примесей, «упаривают» и продукт кристаллизуют при 5-10 °С. Осадок фильтруют на центрифуге и сушат в вакуум-сушилке при 60-70 °С в токе азота.

Выход триметилгидрохинона 40% на псевдокумолсульфокислогу, содержание основного вещества не ниже 96%.

4. Синтез триметилгидрохинона из фенола через основание Манниха, метизол и хинол считается наиболее совершенным и широко используется за рубежом.

5. Синтез триметилгидрохинона из диэтилкетона и кротонового альдегида или из метилвинилкетона через триметилциклогексанон. В производство эта схема внедрена за рубежом. В России она опробована на опытно-промышленной установке, но из-за дефицита сырья в промышленности этот метод не применялся.

Изофитол или фитилгалогенид (хлорид, бромид), как уже указывалось, производятся на смежных предприятиях.

Конденсация триметилгидрохинона с изофитолом (фитолом, фитилбромидом или фитилхлоридом) идет в присутствии катализаторов.

Технология получения триметилгидрохинона из кротонового альдегида

Производство триметилгидрохинона из кротонового альдегида включает следующие стадии:

1. очистка кротонового альдегида;

2. конденсация кротонового альдегида с диэтилкетоном - получение триметилциклогексенона (ТМЦГ);

3. получение 2,4,6 - триметилфенола (ТМФ);

4. синтез триметил-n-бензохинона (ТМБХ);

5. получение триметил-n-гидрохинона.

Очистка кротонового альдегида проводится на ректификационной колонне с ситчатой гофрированной насадкой (насадка Зульценра), что позволяет получить кротоновый альдегид с содержанием основного вещества не менее 99,5%.

Конденсацию кротонового альдегида с диэтилкетоном проводят в реакторе, снабженном мешалкой и обратным теплообменником. В аппарат загружают твердый гидроксид калия и диэтилкетон, массу нагревают при перемешивании до 94 «С и медленно в течение 2 ч сливают смесь кротонового альдегида и диэтилкетона. После завершения загрузки реактивов реакционную массу выдерживают 20 мин, охлаждают до 25 °С и делят слои. Органический слой, содержащий 2,5,6 - триметил-2-циклогексен-1-он (ТМЦГ) и диэтилкетон, нейтрализуют соляной кислотой до рН 6-7 и продукт выделяют с использованием роторно-пленочного испарителя и ректификационной колонны. Выход ТМЦГ 51,6% (в расчете на кротоновый альдегид) с содержанием основного вещества 98%.

2,4,6 - Триметилфенол (ТМФ) получают ароматизацией 2,5,6 - триметил-2-циклогексен-1-она в присутствии палладия на активированном угле. В реактор загружают приготовленную суспензию катализатора в толуоле и из мерника сливают ТМГЦ. При работающем обратном теплообменнике в токе азота реакционную массу нагревают и кипятят 5-8 ч, до тех пор, пока содержание ТМГЦ в ней будет не более 7%. После этого реакционную массу охлаждают, добавляют метиленхлорид и передают на друк-фильтр. Фильтрат собирают в сборник и передают на отгонку метиленхлорида. Технический ТМФ очищают на ректификационной колонне. Выход продукта 69% в расчете на ТМЦГ.

Синтез триметил-п-бензохинона (ТМБХ) осуществляют окислением 2,4,6 - триметилфенола в аппарате колонного типа непрерывного действия. Окислительную смесь (азотная и соляная кислоты) подают сверху. Толуольный раствор ТМФ закачивают в нижнюю часть колонны с помощью насоса. Окислы азота, образующиеся в результате реакции, отводятся через воздушную линию и улавливаются в специальных установках. Отработанные кислоты отводятся из нижней части колонны. Органический слой, содержащий продукт реакции и ТМФ, отводят из верхней части колонны, нейтрализуют 5%-ным раствором соды (также непрерывным способом в аппарате колонного типа) и передают на ректификационную колонну насадочного типа, а затем на роторно-пленочный испаритель для выделения триметил-n-бензохинона. Выход ТМБХ 53,7% в расчете на ТМФ.

Триметилгидрохинон (ТМГ) получают гидрированием триметил-n-бензохинона водородом с использованием в качестве катализатора палладия на активированном угле. В автоклав загружают суспензию катализатора в толуоле, из мерника сливают толуольный раствор ТМБХ и ацетон, подают водород и процесс гидрирования ведут при 65±5 °С, 0,6 МПа, постоянном перемешивании и работающим обратном теплообменнике 4-6 ч до содержания ТМБХ в реакционной массе менее 0,03%. По окончании процесса катализатор отфильтровывают на друк-фильтре и промывают ацетоном. Из фильтрата на ректификационной колонне отгоняют ацетон, и после охлаждения до 20 °С из толуола кристаллизуют ТМГ. Осадок отфильтровывают на центрифуге и сушат в вакуум-сушилке при 60?С. Выход продукта 90% в расчете на ТМБХ, содержание основного вещества 97%.

При наличии сырья приведенная выше технология более совершенна, чем технология получения триметилгидрохинона из псевдокумола.

За рубежом применяют в основном реакцию триметилгидрохинона с фитилбромидом или фитилхлоридом в присутствии кислот Льюиса (чаще всего BF3 в виде комплексов с эфиром или уксусной кислотой):

Выход а-токоферола ацетата 65-69% на фитилбромид.

В отечественной промышленности применяют методы, основанные на конденсации триметилгидрохинона с фитилхлоридом в присутствии BF3·2AcOH и с изофитолом В присутствии небольших количеств НВг и НС1, микроколичеств H2S04 либо ZnCl2. Перечисленные методы внедрены в производство и имеют свои достоинства и недостатки.

Конденсацию триметилгидрохинона с фитилхлоридом с использованием BF3·2AcOH в качестве катализатора проводят при 115-118 ?С до полного выделения хлороводорода. Полученный технический токоферол ацилируют уксусным ангидридом при 120-130 °С с отгонкой избытка уксусного ангидрида и выделившейся уксусной кислоты. Из реакционной массы продукт экстрагируют толуолом, который затем отгоняют под вакуумом, а технический «?-токоферола ацетат» очищают перегонкой в глубоком вакууме. Выход продукта в расчете на фитилхлорид 65-69%.

К недостаткам этой технологии следует отнести: а) большую длительность процесса (25-45 ч); б) применение токсичного и дефицитного BF3; в) большое количество кислых отходов; г) использование толуола.

Конденсацию триметилгидрохинона с изофитолом в присутствии небольших количеств НВr или НС1 ведут в уксусной кислоте при 80-85 °С в течение 2-2,5 ч с последующей отгонкой уксусной кислоты при 95-100 °С. Ацилирование ?-токоферола ведут уксусным ангидридом при 120-130 °С в присутствии ацетата натрия в течение 3-3,5 ч с последующей отгонкой уксусного ангидрида и выделившейся уксусной кислоты под вакуумом. Технический ?-токоферилацетат промывают водой до рН 6,5-7,0 и очищают вакуумной перегонкой. Выход «?-токоферола ацетата» 74 - 75% в расчете на изофитол.

Преимуществами этого метода являются: а) более простая технология; б) более высокий выход; в) сокращение количества кислых отходов; г) сокращение длительности процесса; д) исключение толуола из технологии.

Конденсацию триметилгидрохинона с изофитолом в присутствии микроколичеств концентрированной серной кислоты и ацетилирование токоферола проводят в реакторе при перемешивании и работающем обратном теплообменнике. В реактор загружают уксусную кислоту, триметилгидрохинон, изофитол и катализатор. Смесь нагревают в атмосфере азота до 80-85 °С и выдерживают при этой температуре 1 ч, затем в течение часа увеличивают нагрев до 100-115 °С и далее до 115-120 ?С, после чего делают анализ на окончание процесса конденсации. При положительном анализе отгоняют уксусную кислоту, реакционную массу охлаждают до 80-85?С и в аппарат сливают уксусный ангидрид. По мере загрузки ацетилирующего агента реакционную массу нагревают до 120-125 °С, выдерживают 15 мин и определяют концентрацию ?-токоферола, которая должна быть не более 0,5%. После окончания процесса ацилирования реакционную массу охлаждают до 20 °С, серную кислоту (катализатор) нейтрализуют раствором аммиака, температуру доводят до 90-110 °С и отгоняют остатки уксусной кислоты и уксусного ангидрида, после чего ее охлаждают до 60-65 °С. Полученный технический ?-токоферилацетат очищают фракционной вакуумной перегонкой, собирая основную фракцию при 120-130 °С и остаточном давлении 0,5-0,7 мм рт. ст. Выход витамина Е ацетата 83-84%, содержание основного продукта 98%.

Основной недостаток метода - образование ди-О-ацетил-триметилгидрохинона.

Конденсация триметилгидрохинона с изофитолом в присутствии ZnCl2 дает витамин Е ацетат более высокого качества. Реакцию проводят в различных растворителях (карбоновые кислоты, бутилацетат, о-ксилол и др.).

Наилучшие результаты были получены при использовании бутилацетата с добавлением небольших количеств Na2S203*5Н-, 0 и о-ксилола. Выход «а-токоферола ацетата» в этом случае 87-88% в расчете на изофитол, однако процесс сопровождается частичным гидролизом бутилацетата.

Основными химическими стадиями синтеза являются: С-алкилирование триметилгидрохинона изофитолом в присутствии катализатора ZnCl2 (реакция электрофильного замещения в бензольное кольцо) с одновременным замыканием гидропиранового цикла (образование простой эфирной связи - О-алкилирование), и О-ацилирование фенольного гидроксила.

Технология получения «?-токоферола ацетата»

В реактор с мешалкой и обратным теплообменником, соединенным с водоотделителем, загружают ТМГ, хлорид цинка и о-ксилол. Массу нагревают до 135 - 140 °С и при постоянном перемешивании, постепенно в течение 1 ч из мерника сливают изофитол, в который добавляют раствор 0,01-0,1 г йода в о-ксилоле. Процесс сопровождается азеотропной отгонкой воды и заканчивается через час после окончания загрузки изофитола. Полученную реакционную массу в делительной воронке промывают смесью уксусной кислоты и спирта (для удаления хлорида цинка и йода), и в вакуум-отгонном аппарате отгоняют о-ксилол. Оставшийся в аппарате после отгонки ксилола а-токоферол сжатым азотом передают на ацетилирование, которое проводят уксусным ангидридом в присутствии серной кислоты при 130-138 °С в течение 0,5 ч до остаточного содержания ?-токоферола в реакционной массе не более 0,5%. Образовавшуюся массу охлаждают до 20-25 °С и из мерника сливают водный раствор аммиака для нейтрализации серной кислоты. Затем ее нагревают до 90-140 °С и отгоняют уксусную кислоту и уксусный ангидрид до прекращения погона, после чего остатки уксусной кислоты и уксусного ангидрида отдувают из реакционной массы азотом. Остаток охлаждают до 63-66 °С и передают на вакуум-перегонку. Выход фармакопейного продукта 91-93,5%.

Преимуществами этой схемы являются высокий выход витамина Е ацетата и возможность осуществления процесса непрерывным методом.

Список литературы

триметилгидрохинон витамин токоферол синтез

1. Морозкина Т.С., Мойсеёнок А.Г. Витамины. - Минск: Асар, 2002. - С. 66-72.

2. http://ru.wikipedia.org/wiki/Е308

3. Кнунянц И.Л. и др. Т. 1 А-Дарзана // Химическая энциклопедия. - М.: Советская энциклопедия, 1988. - С. 386-387. - 100 000 экз.

Размещено на Allbest.ru


Подобные документы

  • Химическое строение, свойства и биологическое значение витамина С. Суточная потребность в нем. Экспериментальное йодометрическое определение, количественные и химические методы анализа содержания витамина в пищевых продуктах и витаминных препаратах.

    курсовая работа [1,0 M], добавлен 18.03.2013

  • Физико-химические свойства витамина В3. Процесс соединения бета-аланина, пантолактона и их конденсация как основные стадии синтеза пантотеиноиновой кислоты. Способы асимметрического гидрирования и биосинтеза - пути получения медицинского витамина В3.

    курсовая работа [1,3 M], добавлен 09.12.2010

  • Химическая природа витамина Р (флавоноиды), его свойства и распространение в природе. Роль и значение витамина Р для нормальной работы человеческого организма. Хроматографические методы идентификации флавоноидов. Окисление дубильных веществ KMnO4.

    курсовая работа [643,8 K], добавлен 16.04.2014

  • Изучение информации о свойствах и содержании витамина С и антивитамина аскорбатоксидазы в овощах и фруктах. Анализ данных о строение молекул витамина и антивитамина; механизм их взаимодействия. Разработка рекомендаций по сохранению витамина С в продуктах.

    реферат [251,9 K], добавлен 28.09.2014

  • Значение витамина С для организма человека. Строение и физико-химические свойства аскорбиновой кислоты, химическая схема производства. Характеристика стадий технологической схемы производства аскорбиновой кислоты. Выбор рационального способа производства.

    курсовая работа [2,9 M], добавлен 12.12.2010

  • Химическая природа витамина С. Обмен веществ. Авитаминоз. Гипоавитаминоз. Кулинарная обработка продуктов, содержащих витамин С. Потребность в поступлении извне готовых молекул витаминов. Содержание витамина С в некоторых продуктах и потребность в нем.

    реферат [51,5 K], добавлен 29.09.2008

  • Характеристика витамина Q - жирорастворимого витаминоподобного вещества, находящегося в клеточных структурах - митохондриях. Биохимизм действия и полезные функции убихинона. Содержание витамина в различных тканях организма. Симптомы гиповитаминоза.

    реферат [33,6 K], добавлен 01.12.2012

  • Химическое строение, кислотный и щелочной гидролиз витамина В12, роль в синтезе нуклеиновых кислот. Участие кобаламина в биохимических восстановительных процессах, клиническое применение. Противотоксическое действие витамина В15 (пангамовая кислота).

    реферат [62,6 K], добавлен 11.01.2010

  • Классификация альдегидов, строение, нахождение в природе, биологическое действие, применение. Номенклатура кетонов, история открытия, физические и химические свойства. Реакции нуклеофильного присоединения. Химические методы идентификации альдегидов.

    презентация [640,8 K], добавлен 13.05.2014

  • Химическая структура витамина В12, его источники и действие в организме. Описание и применение биологических и физико-химических (колориметрический, спектрофотометрический, хроматография) методов определения цианокобаламина в биологических организмах.

    курсовая работа [544,2 K], добавлен 06.07.2011

Работы в архивах красиво оформлены согласно требованиям ВУЗов и содержат рисунки, диаграммы, формулы и т.д.
PPT, PPTX и PDF-файлы представлены только в архивах.
Рекомендуем скачать работу.