Возрастные изменения компактной части черной субстанции мозга человека при физиологическом старении

Болезнь Паркисона как нейродегенеративное заболевание. Оценка морфологических особенностей, количественных показателей и пространственного распределения нейронов и нейроглии в компактной части черной субстанции среднего мозга человека в пожилом возрасте.

Рубрика Медицина
Вид дипломная работа
Язык русский
Дата добавления 27.01.2018
Размер файла 4,1 M

Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже

Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.

87

Размещено на http://www.allbest.ru/

Возрастные изменения компактной части черной субстанции мозга человека при физиологическом старении

Содержание

  • Список сокращений
  • Введение
  • Глава 1. Обзор литературы
  • 1.1 Цитоархитектоника черной субстанции среднего мозга человека
  • 1.2 Связи черной субстанции
  • 1.3 Нейрохимические особенности дофаминовых нейронов: функции железа и нейромеланина
  • 1.4 Старение и проблема нейродегенеративных заболеваний
  • 1.5 Возрастные изменения черной субстанции
  • 2. Материалы и методы
  • 2.1 Характеристика материала
  • 2.2 Подготовка материала для гистологического исследования
  • 2.3 Метод окрашивания нервной ткани по Нисслю
  • 2.4 Гистохимические методы выявления железа
  • 2.5 Иммуногистохимическое выявление тирозингидроксилазы и кислого глиофибриллярного белка
  • 2.6 Методы компьютерной морфометрии
  • 2.7 Статистическая обработка результатов
  • 3. Результаты
  • 3.1 Особенности морфологии компактной части черной субстанции
  • 3.2 Внутриклеточные включения в нейронах и глиальных клетках компактной части черной субстанции
  • 3.3 Количественная оценка распределения нейронов и нейроглии компактной части черной субстанции у мужчин и у женщин
  • 3.4 Особенности физиологической нейродегенерации компактной части черной субстанции
  • 4. Обсуждение
  • Заключение
  • Список литературы

Список сокращений

БП - болезнь Паркинсона

НСНС - нигрострионигральная система

ДА - дофамин

ТГ - тирозингидроксилаза

АТ - антитела

ЦНС - центральная нервная система

НДЗ - нейродегенеративные заболевания

VTA - вентральная область покрышки RRF - ретрорубральное поле

ЧС - черная субстанция

ЧСр - ретикулярная часть черной субстанции

ЧСк - компактная часть черной субстанции

L-ДОФА - 3,4-дигидроксифенилаланин

АФК - активные формы кислорода

LC - locus coeruleus, голубое пятно

Введение

В структуре неврологической патологии нейродегенеративные заболевания всегда занимали одно из первых мест, являясь основной причиной когнитивных нарушений и различных нарушений двигательных функций разной степени тяжести [1]. Болезнь Паркисона (БП) является вторым по распространенности нейродегенеративным заболеванием, и ее доля в популяции составляет около 0,3%, а среди людей старше 60-65 лет - 1% - 2% [2]. В связи с увеличением продолжительности жизни в экономически развитых странах растет и число людей, страдающих БП и другими нейродегенеративными заболеваниями той же группы - деменцией с тельцами Леви, мультисистемной атрофией и т.д. [3; 4]. По данным Всемирной Организации Здравоохранения, во всем мире почти 1,6 миллиона человек ежегодно получают инвалидность по причине БП. Так как распространенность БП увеличивается с возрастом, то ожидаемый прирост инвалидизации может достигнуть 25% к 2040 году [5].

Все случаи БП связаны с прогрессирующей дегенерацией и гибелью дофаминовых нейронов, что приводит к дисбалансу в синтезе и выделении нейромедиаторов, таких как дофамин (ДА), норадреналин, ацетилхолин и др. Следствием этих изменений являются нарушения памяти, координации движений и когнитивных способностей человека. Гибель более 60% ДА нейронов в компактной части черной субстанции (ЧСк) и в голубом пятне (locus coeruleus) среднего мозга приводит к выраженному снижению концентрации ДА в страитуме и возникновению экстрапирамидной симптоматики, например: тремору рук в покое, снижающемуся при целенаправленных движениях, общей скованности мышц, замедленности движений, неустойчивости позы. У пациентов отмечаются шаркающая неуверенная походка, тихий немодулированный голос, скудность мимики и застывшее маскообразное лицо. Почерк становится неразборчивым, пациент не может выполнять операции, требующие тонкой моторики пальцев рук [6].

По мере прогрессирования БП, повреждаются также дофаминергические (ДА) нейроны и связи других структур: миндалины, срединного ядра таламуса, ядер гипоталамуса, вентральной тегментальной области (VTA). На поздних стадиях дегенерация захватывает так же структуры гиппокампа, лобной коры и некоторые другие корковые зоны.

Черная субстанция (Substantia nigra) - одно из ядер среднего мозга, которое некоторые авторы относят ретикулярной формации. Основные связи ЧС образует со стриатумом, что дает основание для выделения нигрострионигральной системы мозга (НСНС) [7]. В ЧС выделяются две основные части: компактная - pars сompacta (ЧСк) и ретикулярная - pars reticulata (ЧСр). Эти области различаются функционально и морфологически, т.к. большинство клеток ЧСр являются ГАМК - ергическими, а в ЧСк расположены преимущественно дофаминергические (ДА) нейроны. Аксоны клеток ЧС в составе медиального переднемозгового пучка образуют мощный дофаминергический "вход" в стриатум (хвостатое ядро - nucleus caudatus и чечевицеобразное ядро - nucleus lentiformis). Наличие прямых путей от ЧС к стриатуму было продемонстрировано в экспериментах с ретроградной меткой [7], а также при разрушении структур базальных ядер нейротоксинами [8].

Помимо патологической нейродегенерации при БП имеет место и физиологическое снижение числа нейронов с возрастом, наблюдаемое многими исследователями у неврологически здоровых лиц пожилой и старческой возрастных групп, при чем как в области ЧС, так и в других образованиях головного мозга (голубое пятно, стриатум, красное ядро) [9].

Формируя связи с базальными ядерами, ретикулярной формацией, таламусом и другими структурами мозга, обладая сложным строением, ЧС является важной структурой среднего мозга, участвующей в обеспечении как двигательной активности, так и в когнитивных процессах. Несмотря на прогресс в исследовании молекулярных механизмов БП, причины повышенной уязвимости дофаминовых нейронов ЧСк при БП неизвестны, следовательно, патогенез заболевания по прежнему выяснен не достаточно. Сложность своевременного установления диагноза при БП определяется поздним развитием характерной экстрапирамидной симптоматики, тогда как на ранних этапах заболевания страдают вегетативные и сенсорные (обоняние и зрение) функции, что создает трудности как для дифференциальной диагностики, так и для подтверждения диагноза вцелом.

Как следует из цитируемых выше источников, рассмотренные особенности ЧС и особенности течения БП, вызывают существенный интерес исследователей, обусловленный также и высокой социальной значимостью заболевания. Однако, несмотря на серь?зные достижения в области изучения нигростриатной системы мозга и морфологической основы нейродегенеративных заболеваний, остаются исследованными явно недостаточно следующие аспекты:

1) Факторы, вызвающие гибель нейронов при старении, и взаимосвязь старения с нейродегенеративными заболеваниями (в литературе отмечены как сходство, так и различия между ними).

2) Влияние биологического пола на дифференцировку, клеточный состав и структурно-функциональную организацию черной субстанции, в том числе - при нейродегенеративных заболеваниях и старении.

3) Морфологическая и нейрохимическая гетерогенность популяции нейронов ЧС установлена не полностью, в связи с этим, неясны причины их избирательной уязвимости при болезни Паркинсна и старении.

Цель работы:

Оценить морфологические особенности, количественные показатели и пространственное распределение нейронов и нейроглии в компактной части черной субстанции среднего мозга человека в зрелом и пожилом возрасте.

Задачи:

1. Охарактеризовать особенности клеточной организации компактной части черной субстанции мозга человека на основании морфологичсеких и нейрохимических показателей нейронов и нейроглии;

2. Оценить размеры тел и ядер нейронов, нейроглиальные соотношения в разных отделах компактной части черной субстанции, а так же соотношение дофаминергических и не-дофаминергических нейронов.

3. Сопоставить исследованные количественные параметры компактной части черной субстанции с учетом ее возрастной инволюции и фактора пола.

ХУДОЕРКОВУ РУДОЛЬФУ МИХАЙЛОВИЧУ, д. м. н., зав.

лаборатории функциональной морфохимии ФГБНУ "НЦН".

паркинсон нейродегенеративное заболевание

Глава 1. Обзор литературы

1.1 Цитоархитектоника черной субстанции среднего мозга человека

Черная субстанция (ЧС), иначе - черное вещество, substantia nigra [10,11], locus niger [12] располагается на всем протяжении среднего мозга и представлена билатеральными скоплениями нервных клеток, расположенных между основаниями ножек мозга и их покрышкой [13,14].

Располагается ЧС вентральнее покрышки среднего мозга (tegmentum mesencephali), и отделяет ее от пучков вентральной части ножки мозга (crus cerebri). Из-за чего некоторые авторы включают ЧС в состав основания ножки мозга (basis pedunculi), другие же относят ее к компонентам покрышки среднего мозга, однако, согласно международной анатомической терминологии, ЧС включена в состав ножки мозга. Вслед за Felix Vicq d`Azyr описавшим ЧС в 1786 под названием "locus niger", она была охарактеризована Sфmmering. Название свое ЧС получила вследствие отложения в нейронах темного пигмента - нейромеланина, из-за чего на срезе среднего мозга она четко выделяется в виде вытянутого в медиолатеральном направлении тяжа (Рис.1). В 1906 В.М. Бехтерев с соавторами, выделил в ЧС две основные зоны: густоклеточную компактную зону - zona compacta (pars compacta) - ЧСк и редкоклеточную ретикулярную - zona reticulata (pars reticulata) - ЧСр [15]. В 1919 г.К.Н. Третьяков впервые предположил, что причиной паркинсонизма является поражение ЧС и выявил значительную потерю ее пигментации [16].

Рисунок 1 а-h. Черная субстанция и паранигравльное ядро на различных уровнях в ростро-каудальном направлении. Точки представляют накопление пигмента в пределах нервных клеток, MB - маммилярные тела,, СР - мозговые ножка, SN - pars reticulata, RN - красное ядро, CD-перекрест верхних мозжечковых ножек. [W R G Gibb, A J Lees, 1991].

Еще в 1927 году Morgan описал в ЧСк медиальную моторную и центрально-латеральную группы клеток. Позже, в компактной зоне были описаны латеральная, интермедиальная, дорсальная, вентральная и парамедиальная группы клеток. Позднее, описывая архитектонику ЧС человека Браак [17] выделяет три основные области - густоклеточную (pars compacta), редкоклеточную (pars reticulata) и лежащую между ними диффузную часть (pars diffusa).

При анализе результатов полученных разными авторами, обращает на себя внимание высокая морфологическая гетерогенность и неодинаковая пространственная плотность нейронов на разных уровнях как в ростро-каудальном, так и в медио-латеральном направлении. В одной из ранних работ Hassler [18], выделяет в ЧС более 20 отделов, на основании расположения групп клеток (Рис.2). По Hassler ЧС состоит из трех клеточных тяжей (tiers), примыкающих к мозговой ножке и ориентированных вентро-медиально. В мозге человека имеет место сложная организация нейронов в ЧС в двух из трех нейрональных тяжей, представленных 21 группой, по классификации Hassler [18].

Рис. 2. Пространственная дифференциация черной субстанции по Hassler (1938).

Wakabayashi выделял в ЧСк следующие зоны: медиальное паранигральное ядро, медиальную и дорсальную центральные группы и вентро-латеральную часть [19]. При подобной дифференциации клеточных групп, он опирался не только на плотность распределения, но и на количество нейромеланина, форму и число отростков (рис.3).

Рис.3. Дифференциация компактной части черной субстанции на зоны по Wakabayashi. PN- паранигральное ядро, MG- медиальная группа, DG- дорсальная группа, VL- ветро-латеральная группа.

Gao [20] разделяет ЧС на три сегмента в ростро-каудальном направлении: ростральный (близ медиального терминального ядра зрительного тракта), интермедиальный (промежуточный) и каудальный (между каудальной частью медиального терминального ядра и межпучковым ядом. Такое деление изначально применялось для грызунов, но впоследствии было использовано и при оценке нейродегенрации зон ЧС человека, вследствие чего были сделаны выводы о выраженном поражении ростральной области (Рис.4).

Следовательно, разные авторы предлагают отличающиеся подходы для выделения отделов ЧС. Так, Hassler рассматривает клеточную организацию основываясь на анализе клеточных скоплений, Классификация Wakabayashi основана на анатомических ориентирах, но недостаточно детальна, работы же Jin Gao и Gibb, по сути, демонстрируют различия в ростро-каудальном распределении групп клеток ЧС у крысы и человека. Интересно отметить, что в Международной анатомической терминологии от 2003 года принято иное деление - кроме ЧСк, ЧСр и латеральной части (pars lateralis), к ЧС относят также ретрорубальное поле (Pars retrorubralis).

Рис. 4. Пространственная дифференциация ЧС в кранео - каудальном направлении - ростральная, интермедиальная и каудальная области. [20].

Исследование развития ЧС человека в эмбриогенезе необходимо для понимания влияния морфогенетических факторов определяющих дифференцировку ДА нейронов, а также в связи с потенциальной возможностью методов клеточной терапии БП. Еще в 1934 году А.П. Сурикова исследовала филогенетическую последовательность закладки и развития подкорковых ядер, которая, как впоследствии оказалось, имеет место и в онтогенезе, по этой схеме на 14 неделе эмбрионального развития появляется ЧС и медиальная группа клеток ЧСк, а на 17 неделе дифференцируются интермедиальная и латеральная группы клеток ЧСк. Полностью оформленная дифференциация обеих зон ЧС, наблюдается к

22 неделе и в дальнейшем в них идет созревание клеток, рост и миелинизация волокон. Флигельман [21] описывает у зародыша человека 2 см длиной на границе среднего и промежуточного мозга клеточную массу, определяемую им как очаг образования ЧСк и Льюисова тела, отделение их друг от друга происходит лишь на стадии 10 см. У зародыша длиной в 3 см он описывал уже закладку ЧСр, а у зародыша 14 см он описал три дифференцированные зоны ЧС - наружную, внутреннюю и среднюю, где уже хорошо определяются формы нейронов, характерные для ЧСк - крупные, веретенообразные, пирамидные.

Между 8 и 10 неделями развития, область ЧС заполнена небольшими, недифференцированными круглыми клетками. Клеточная дифференциация ЧС имеет место уже внутриутробно-внутренняя зона уже на 12 неделе становится более богата клетками, чем наружная редкоклеточная зона, что определяет первую как ЧСк, хотя, в этом периоде это деление еще весьма условно, так как при дальнейшем развитии плода имеет место перегруппировка клеточных структур. Между 10 и 13 неделями упаковка клеток становится разреженной, и в течение следующей недели ЧСк и ЧСр дифференцируются, при этом клеточная плотность ЧСр уменьшается с 14 по 20 неделю, так что достигает нормальной плотности, характерной для ЧСр взрослого человека к 22 неделям [22].

Согласно Отеллину, нейроны ЧС различаются расположением и типами дендритных полей, так, некоторые дендриты ЧСр достигают длины 1000-1600 мкм в рострокаудальном направлении, т.е. занимают около 60% всего ядра, а по медиалотеральной оси - 600-700 мкм (40% протяженности ядра) и в дорсовентральном направлении - 350-400 мкм (50% ядра) [7]. Дендриты клеток каудальных отделов ЧСк идут в рострокаудальном направлении, и их профильные поля перекрываются полями дендритов ЧСр. Дендриты же остальных отделов ЧСк ориентированы в дорсовентральном направлении, при этом отростки ЧСк ветвятся в меньшей степени, но доходят до ЧСр, тогда как дендриты клеток ЧСр ветвятся только в пределах этой части ЧС [23].

Очевидно, что гетерогенность ЧС связана с функциональными особенностями групп нейронов и избирательностью их нейродегенерации при БП, но в то же время недостаточная проработанность классификаций усложняет морфологический анализ и трактовку литературных данных. Уточнение цитоархитектоники ЧС позволит приблизиться к пониманию патогенеза БП, и разработке эффективных путей ее лечения.

1.2 Связи черной субстанции

К основным дофаминергическим ядрам мозга относят компактную часть ЧС, вентральное поле покрышки среднего мозга (VTA ventral tegmental area), и дугообразное ядро гипоталамуса [24]. Основные ДА системы включают: нигростриатный, мезолимбический, мезокортикальный и тубероинфундибулярный пути [24]. Нейроны ЧС в основном формируют нигростриатный путь, VTA - в мезолимбический и мезокортикальный пути. Нигростриатный путь участвует в двигательном акте в отличие от мезолимбического и мезокортикального, участвующих в когнитивных и эмоциональных реакциях (Рис.6) [25]. Черная субстанция - важнейшая часть нигрострионигральной системы мозга, входящей в двигательную петлю базальных ядер и имеет многочисленные связи с другими подкорковыми структурами, обеспечивая точность произвольных движений и тонус скелетной мускулатуры [26].

Прямые и обратные связи ЧС и стриатума были подтверждены всеми нейроанатомическими методами. В результате многочисленных работ [27,28] показано сходство распределения нейронов нигростриатного пути в ЧС человека и других приматов. Описаны связи ЧС другими подкорковыми структурами: зрительным бугром, бледным шаром, красным ядром, Льюисовым телом и ретикулярной формацией [29]. В исследованиях с применением диффузионной тензорной томографии, имеющей уникальные преимущества в оценке хода волокон и структуры белого вещества, ЧС показала основные связи с красным ядром, таламусом, бледным шаром, мозолистым телом, областью вентральной покрышки и с задней долей мозжечка (Рис.7A, 9B) [30]. Как видно из рисунка 9В, выраженность связей (%) ЧС с другими областями мозга составляет более чем 70% (мозолистое тело, хвостатое ядро, скорлупа, прилежащее ядро, основание моста, передняя доля мозжечка, внешняя капсула), в то время как VTA показала выраженность связей менее чем 70%.

Рис. 6. Из работы H. J. Donkelaar [29]. Показаны связи подкорковых ядер, нервные пути, проходящие через таламус, красное ядро, голубоватое пятно, ретикулярную формацию, стриатум, и идущие к ЧС.

Нигростриатный путь - лишь часть связей базальных ядер, образующих сложную систему контроля движений, называемую двигательная петлей. Стриарный комплекс получает информацию из трех входов - кортикостриатного, таламостриатного и нигростриатного [31], которая обрабатывается базальными ядрами, и поступает в зрительный бугор, откуда опять направляется в неокортекс, в том числе, в ассоциативные области коры [32,33]. Показано, что проекционные нейроны стриатума формируют два пути: прямой (полосатое тело - ЧС) и непрямой (полосатое тело - бледный шар - субталамическое ядро - ЧС) [34,35]). Показано, что дофамин возбуждает стрионигральные нейроны прямого пути, действуя на D1 рецепторы и ингибирует стриопаллидарные нейроны непрямого пути через D2 рецепторы. Активация стрионигральных нейронов начинает движение, а стриопаллидарных - тормозит его и обеспечивает контроль над фазами. Эта модель подтверждается многими нейроанатомическими и физиологическими исследованиями [36,37]. Входы в ЧСр сформированы проекциями стриатных и паллидарных нейронов, имеющих значительно ветвящиеся аксоны, образующие коллатерали в нескольких ядрах базальных ганглиев (Рис.8) [38]. Таким образом, дофаминергические афферентные пути из ЧС модулируют поток информации, поступающий от коры через полосатое тело к таламусу и далее, в премоторные зоны и другие ассоциативные области коры.

Рис.7A. ЧС: результаты диффузионной тензорной томографии (DTI).

а: уровень коры головного мозга, б: верхний уровень лучистой коры, с: верхний уровень внутренней капсулы, d: нижний уровень внутренней капсулы, е: комиссуральный уровень: уровень среднего мозга, г: верхний уровень Варолиева моста, ч: нижний уровень Варолиева моста.

а - b: первичная моторная кора, первичная соматосенсорная кора, премоторная кора, префронтальная кора, мозолистое тело.

с - е: хвостатое ядро, скорлупа, бледный шар, прилежащее ядро, таламус, внешняя капсула.

F - h: красное ядро, миндалина, медиальная височная, основание моста, покрышка моста, передняя доля мозжечка, задняя доля мозжечка.

Рис. 7В. Сравнение соединений (в процентах) между ЧС и областью вентральной покрышки с другими областями мозга.

Рис.8. Реконструкция аксона и сомы и дендритов нейронов бледного шара (GP) по рострокаудальной оси. Эти нейроны дают начало как локальным аксонам, так и проекциям в энтопедункулярное (EP) и субталамическое ядра (STN) и черную субстанцию (SNr).

1.3 Нейрохимические особенности дофаминовых нейронов: функции железа и нейромеланина

Дофамин (ДА) (3,4-дигидроксифенилэтиламин) был первоначально синтезирован в 1910 году Манниху и Якобсон. Тем не менее, лишь в 1950 году этот амин обнаружили в тканях млекопитающих, Гудолл выявил ДА в сердечной мышце и в надпочечниках. Методы флюоресцентной гистохимии позволили выявить роль ДА как нейромедиатора, что было подтвержено в 1950-х годах [39,40]. В 1959 году, Bertler и Rosengren, Сано и др. показали, что ДА в высоких концентрациях присутствует в полосатом теле. Позднее ДА выявили в других базальных ядрах и лимбической области, в прилежащем ядре (наибольшй уровень составил 3,38 мкг / г ткани). В настоящее время показано, что синтез ДА осуществляется нейронами ЧС и вентральной области покрышки среднего мозга, а также в обонятельных луковицах, гипоталамусе [41]. Кроме того, существует малочисленная собственная популяция нейронов стриатума, экспрессирующих тирозингдроксилазу - фермент синтеза ДА, и, по - видиомому являющихся дофаминергическими [42].

87

Размещено на http://www.allbest.ru/

Особенность ДА как нейромедиатора заключается в том, что при его катаболизме, включая неферментативное аутоокисление, образуются токсинные для клетки хиноны. Нейромеланин - пигмент, накапливающееся в ДА нейронах ЧС и других катехоламинерических структур является продуктом обмена биогенных аминов, и вероятно играет защитную роль, переводя токсичные продукты обмена ДА в нерастворимую форму. Наличие темнопигментированных гранул в некторых нейронах человека было обнаружено еще в 1930 году (Рис.9) [43]. Наиболее пигментированными областями являются два образования среднего мозга - ЧС и голубое пятно (locus coeruleus). Пигментацию катехоламинергических нейронов обнаруживается как у человека, так и других млекопитающих: шимпанзе, гиббона, бабуина, лошади и козы. [44]. Friede и Stilling обнаружили что в мозге детей до года пигментация клеток ЧС отсутствует, и начинает развиваться в период от 12 месяцев до 3 лет [45,46], хотя отложения гранул пигмента, аналогичные наблюдаемым у взрослых, формируются лишь к 10-18 годам. Гистохимические исследования ЧС и голубого пятна обнаружили, что нейромеланин имеет стабильный свободный радикал и структуру хелатирующую металлы [47]. При помощи аналитической электронной микроскопии и масс-спектрометрии [48] было выявлено высокое содержание железа, меди и серы в гранулах нейромеланина. Нейромеланин связывает и другие неорганические и органические соединения. Гранулы нейромеланина располагаются вокруг ядра нейрона и окружены двойными мембранами гистохимически были показаны ассоциации гранул нейромеланина с липофусцином, в ЧС [49,50].

87

Размещено на http://www.allbest.ru/

Сродство нейромеланина к неорганическим и органическим токсинам согласуется с его защитной ролью [51]. Помимо этого, Zecca указывает на физиологическое накопление гранул нейромеланина в клетках мозга, содержащихся в органеллах вместе с липидными каплями [50]. Так же, в разных областях мозга меланиновые гранулы синтезируется неодинаково, так, например, в ЧС его предшественником является цистеинил-дофамин, а в других областях мозга цистеинил-3,4 - дигидроксифенилаланин (рис 10). Неясно, синтезируется нейромеланин ферментативно или в результате аутоокисления. Показано, что нейромеланин накапливается в нейрональных культурах крысы под воздействием L-ДОФА (Sulzer D., 2000), при этом синтезируемый пигмент, как и предполагалось, идентичен нейромеланину человека. В этих экспериментах, при введении хелаторов Fe2+ синтез нейромеланина подавлялся, вследствие чего был сделан вывод о возможном участии железа в синтезе нейромеланина [52].

Железо участвует во многих метаболических процессах, в том числе в транспорте кислорода, синтезе ДНК, транспорте электронов при внутриклеточном дыхании и в качестве кофактора для ферментов. Содержание Fe2+ / Fe3+ в тканях организма должно быть жестко урегулировано, поскольку чрезмерная концентрация железа приводит к повреждению тканей, в результате образования свободных радикалов [53]. Железо как кофактор ферментов необходимо для синтеза биогенных аминов, включая ДА и играет важную роль в поддержании уровня МАО (фермента катаболизма ДА). Ионы Fe2+ также участвуют в функционировании рецепторов серотонина и дофамина. В метаболизме клеток ЧС играют не менее важную роль и ионы меди. Снижение концентрации меди, наряду с увеличением содержания железа, было обнаружено в ЧС и хвостатом ядре пациентов с БП. Медь может оказывать влияние на содержание железа в головном мозге через ферроксидазную активность церулоплазмина, поэтому, снижение уровня меди в головном мозге приводит к накоплению железа и, как следствие - окислительному стрессу. Накопление железа в базальных ганглиях представляет собой большую проблему, так как хорошо известно, что Fe2+ участвует в образовании и распространении реактивных форм кислорода (АФК) [54]. В биологических системах железо вступает в реакцию с кислородом, катализируя образование токсичного гидроксильного радикала. Медь, как и железо, вовлечена в реакции образования свободных радикалов в качестве катализатора разложения перекисей, что особенно важно для областей мозга, где метаболизируются дофамин, так как пероксид водорода является побочным продуктом активности моноаминоксидаз [55]. Нарушения метаболизма железа характеризуются различными клиническими проявлениями, начиная от железодефицитной анемии и заканчивая нейродегенеративными заболеваниями. Накопление железа в базальных ядрах, приводящее к нейродегенерации наблюдается при генетически обусловленных патологиях, называемых в англоязычной литературе NBIA-заболеваниями (Neurodeheneration with Brain Iron Accumulation) [56]. Также и при хронической железодефицитной анемии, была показана связь неврологической симптоматики с нарушением работы ДА-систем [57]. В экспериментах с нокаутом регуляторных генов обмена железа показано, что накопление железа может приводить к демиелинизации [56]. При нормальном старении, повышение концентрации железа обнаруживают структурах бледного шара, красном ядре, зубчатом ядре и черной субстанции [56]. До сих пор неясно, почему железо накапливается в тканях головного мозга избирательно. Выявлено, что уровень ферритина, связывающего Fe2+ у пациентов с БП снижен в скорлупе, бледном шаре, коре головного мозга и мозжечке [58]. Метод транскраниальной эхографии выявляет повышенную эхогенность ЧС, вызванную накоплением железа, что может быть использовано при диагностике БП [59]. Помимо БП, обмен железа нарушен и при болезни Галлервордена-Шпатца со схожей клинической картиной, связанной с мутацией в гене пантотенат киназы. При этом заболевании в базальных ядрах отмечают избыточное накопление цистеина, связывающего Fe2+. В результате индуцируются реакции образования АФК, вызывая апоптоз нейронов бледного шара, что дает клиническую картину экстрапирамидных нарушений [60].

Как следует из приведенных данных, изучение связывания железа с нейромеланином имеет важное значение для понимания роли меланина и железа в патогенезе оксидативного повреждения в клеток черной субстанции при нейродегенерации [61].

1.4 Старение и проблема нейродегенеративных заболеваний

Известно, что пожилой возраст является значимым фактором риска для развития БП. Ряд авторов высказывает предположение, что клеточные механизмы, которые определяют убыль ДА нейронов среднего мозга при старении и дегенерацию при БП не связаны между собой [62]. Действительно, в настоящее время БП вместе с некоторыми другими нейродегенеративными заболеваниями, относят к синуклеинопатиям - и связывают гибель нейронов ЧС с образованием в них агрегатов белка б-синуклеина [63]. Причем само заболевание начинается со структур периферической нервной системы задолго до появления двигательной симптоматики и сопровождается накоплениеми нерастворимого б-синуклеина в ЦНС [64]. Патологические фибриллы б - синуклеина, вызывающие его агрегацию, передаются от нейрона к нейрону, в чем наблюдается определенное сходство с прионными заболеваниями [65]. Однако, причины формирования патологических фибрилл не выяснены. Предполагают, что нарушения сборки и деградации белков в ДА нейронах могут происходить в под действием мутаций, средовых токсинов, окислительного стресса, неизвестного инфекционного агента и пр [/66/].

С другой стороны, "нормальное старение" и гибель ДА нейронов при БП все же имеют общую молекулярную природу, поскольку молекулярные маркеры клеточной патологии накапливаются с возрастом в тканях схожим образом, как и при БП. В качестве причин функциональных изменений при старении называют различные факторы, приводящие к повреждению структуры и функций молекул, клеток, органов. К ним, по данным литературы в основном относят: окислительный стресс, усиленное гликозилирование, укорочение теломер, накопление повреждений ДНК, агрегацию белков, и др. Одно из последних исследований, опубликованное в Cell Research сообщает о роли в процессе старения SIRT6 деацетилазы, контролирующей окислительный гомеостаз в мезенхимных стволовых клетках человека [9]. В последнее время активно развиваются гипотезы о значении изменений микробиома при старении, также высказано предположение о влиянии иммунных реакций к бактериальным белкам в развитии нейродегенеративных процессов [67].

Уже давно исследователи сосредоточили свое внимание на участии окислительного стресса в качестве ключевого регулятора при хроническом патологическом состоянии и старения [68]. Окислительный стресс определяется как дисбаланс между образованием АФК и антиоксидантными защитными механизмами. Согласно гипотезе феноптоза [70] повреждение органов и гибель организма при старении - эволюционно закрепленный, генетически детерминированный процесс, который реализуется в том числе за счет окислительного стресса.

В то же время, ряд авторов отводит свободным радикалам и окислительному стрессу в процессе старения незначительную роль [70; 71], предполагая в качестве определяющих старение причин не процессы неконтролируемого накопления повреждений в органах и тканях, а продолжение работы во взрослом организме молекулярных каскадов, определявших его эмбриогенез (таких как mTOR-сигнальный каскад), что приводит к гипертрофии, гиперфункции и избыточной активации метаболических процессов и, в итоге - к развитию патологий. Теория "гиперфункции" в настоящее время находит экспериментальные подтверждения [72].

Обобщая разные представления, инволютивные изменения при старении можно определить как прогрессирующее повреждение структур и функций вследствие комплексных негативных воздействий внешних и внутренних факторов.

Прогрессирующие нарушения памяти, когнитивных функций и поведения наблюдающиеся при старении получили многочисленные морфологические подтверждения в работах второй половины XX века - выраженное снижение числа нейронов и развитие глиоза было выявлено в различных областях мозга [73,74,75]. С развитием более точных стереологических методов оценки плотности клеток гипотеза прогрессирующей нейродегенерации подверглась критике, так, в ряде работ было выявлено не столь значимое, как предполагалось ранее уменьшение плотности нейронов коры, или вообще не было обнаружено снижения их количества [76,77,78]. В то же время, большинство авторов сходятся в оценках снижения количества олигодендроглии [79,80] с возрастом. В работе Fu у мышей [81] оценивали количество нейронов и глии более точными методами (вычисляя число ядер на объем гомогенизированной ткани структур мозга) и выявили значимое снижение числа нейронов и рост числа глии в разных отделах мозга. Однако, противоречивые результаты наблюдаются и в исследованиях возрастных изменений базальных ядер в мозге человека и грызунов, так Santos-Lobato не выявил изменений в плотности и морфологии нейронов в стриатуме и субталамическом ядре человека [9], однако, предыдущее исследование тех же авторов посвященное сравнению этих показателей у молодых и старых крыс показало существенные отличия.

1.5 Возрастные изменения черной субстанции

Следует отметить, что большинство исследований возрастных изменений плотности нейронов и глии в мозге человека проведены на гиппокампе или разных областях неокортекса, а данные по ЧС немногочисленны. Для ЧС человека снижение числа нейронов отмечено в ряде морфометрических исследований, где показаны потери от 36% до 48% нейронов ЧСк в возрасте от 20 до 90 лет (Рис.11) [82]. При этом, в мозге долгожителей (106 лет), число нейронов ЧС было выше, чем в других возрастных группах, что автор объясняет генетическими причинами [83]. При старении отмечен глиоз и усиление реактивных изменений глиальных популяций - астроцитов и микроглии в ЧС [84]. В частности в черной субстанции выявлено увеличение числа пролиферирующих глиальных клеток, по-видимому астроцитов [81], однако отмечается снижение плотности олигодендроцитов, что свидетельствует о демиелинизации [84]. Астроглия активно участвует как в провоспалительных процессах, так и в нейропротекции, а в онтогенезе наблюдается рост ее числа на фетальном этапе и при старении - что связывают с ответом на дегенеративные изменения [84]. Однако, до сих пор не выяснена роль астроицтов в нейродегенрации, в том числе, при БП, неясно, является ли активация астроглии причиной или следствием повреждения нейронов [85].

Рис. 11. ЧС - региональные потери клеток при физиологическом старении и при разнообразных патологиях, характеризующихся нейродегенерацией. А - нормальная анатомия. В - физиологическое старение. С - патология с наличием телец Леви. D - БП. E - стрионигральная дегенерация. F - синдром Стила-Ричардсона - Ольшевского (прогрессирующий супрануклеарный парез взора).

Снижение содержания дофамина в черной субстанции и других базальных ядрах при старении, благодаря снижению плотности рецепторов ДА было показано Keyser [86]). Методом позитронно - эмиссионной томографии показано снижение плотности D2/D3 дофаминовых рецепторов в стриатуме людей в пожилом возрасте, однако, в ЧС плотность D3 рецепторов не снижалась [87]), что подчеркивает региональные особенности изменений структур нигростриатной системы при старении. Дефицит ДА и нарушение ДА - нейротрансмиссии, по-видимому, способствует снижению двигательной функции, которое наблюдается при старении.

С возрастом, число пигментированных нейронов, содержащих нейромеланин уменьшается на 5% за десятилетие и в общей сложности может достигать 33% к 91 году [88] С другой стороны, исследования возрастных изменений ЧС зачастую противоречивы, так, Ohno указывает на отсутствие изменения соотношения пигментированных и не пигментированных нейронов в ЧС при старении, при общем снижении их числа, и выдвигает гипотезу "сбалансированной депопуляции различных нейронов" [83]. Одновременно со снижением уровня нейромеланина в клетках ЧС, его уровень при нормальном физиологическом старении снижается и в других подкорковых структурах, содержащих котехоламинергические нейроны - в хвостатом ядре на 13% за десятилетие [89]. Вместе с тем, значение нейромеланина для избирательной уязвимости дофаминовых нейронов ЧС, как при физиологическом старении, так и при патогенезе БП остается невыясненной [49].

Неоднозначным является исследование, проведенное в 2009 году на материале среднего мозга в популяции азиатских индийцев, в ходе которой авторы пришли к выводу, что данная популяция фактически не имеет физиологической потери ДА нейронов ЧС, что, возможно, является причиной низкой распространенности БП среди этой расы [90]. Дегенерацию нейронов ЧС как в норме, так и при БП, связывают также с воздействием средовых факторов, например с поступлением пестицидов в организм [91]. В одной из работ на азиатской популяции было выявлено, что плотность нейронов ЧС постмортально, у неврологичсеки здоровых некурящих и потреблявших значительное количество молока [92] была значимо ниже. Авторы связывают этот факт с обнаруженными ими повышенным содержанием производных инсектицида гептахлора в образцах. Интересно, что это исследование отмечает негативную корреляцию возрастного снижения числа нейронов ЧС с курением, которое, как отмечается в ряде эпидемиологических исследований, снижает риск БП и Альцгеймера [93,94]. В других работах было показано развитие атрофических изменений серого и белого вещества мозга, ввиду многочисленных ишемических и оксидативных отрицательных эффектов курения, рассматриваемых как "ускорители старения" [94].

Таким образом, в потерю нейронов при физиологическом старении и БП по-видимому вносить свой вклад сходные факторы, относящиеся как к внешним, так и внутренним механизмам повреждения и дисфункции клеток.

Влияние пола на нейродегенерацию в черной субстанции,

Влияние пола на течение нейродегенративных заболеваний в настоящее время получает новые подтверждения [95]. Эпидемиологичсекие исследования демонстрируют, что не только пожилой возраст, но и мужской пол являются важными факторами риска. У женщин БП диагностируется не только реже, но и в более позднем возрасте. При БП у женщин чаще выявляют нарушения настроения и когнитивную дисфункцию. Данные о половых отличиях в отношении когнитивных функций у пациентов с БП изучаются редко, например, показано, что при БП снижение словесной памяти у женщин сильнее, чем у мужчин [96]. Риском для развития немоторных нарушений является как ранний возраст начала заболевания, так и женский пол [96]. Предполагают, что половые особенности течения и симптоматики нейродегенерации при БП, обусловлены структурными и функциональными различиями нигростриатных образований. В работе Kritzer [97] показаны не только сходные различия в плотности дофаминовых нейронов среднего мозга, но и выявлены более выраженные мезокортикальные связи у самок крыс, что интересно сопоставить с более выраженным нарушением когнитивных функций при БП у женщин. У грызунов также отмечены физиологические, и нейроанатомические половые различия ЧС [98; 99]. Показано влияние половых гормонов на развитие ЧС, вероятно обусловленное разным уровнем экспрессией рецепторов эстрогена на нейронах [97,100]. Так, Ma и соавторы обнаружили меньшую плотность дофаминовых нейронов в ЧС у интактных самцов крыс, по сравнению с интактными самками и отсутствие этих различий с овариоэктомированными самками [98].

Помимо половых гормонов, на дофаминовые нейроны ЧС напрямую могут влиять продукты генов половых хромосом, например - ген SRY (sex determining region), локализованный на Y хромосоме. Выявлено, что SRY экспрессируется субпопуляцией дофаминовых нейронов ЧСк, в том числе - у человека, и связан с регуляцией синтеза и катаболизма дофамина [101]. Кроме того, показаны половые различия в обратном захвате дофамина, что также может иметь значение для повреждения дофаминовых нейронов, поскольку скорость оборота медиатора напрямую связана с продукцией АФК [95]. В экспериментах показано, что гибель дофаминовых нейронов ЧС у самцов крыс по действием нейротоксинов происходит не только быстрее, но и более выражена [95]. Эти данные согласуются с тем, что у женщин выявлена более низкая скорость накопления железа в структурах базальных ядер с возрастом [102], что может снижать интенсивность реакций окислительного стресса.

Как следует из представленного обзора литературы, клеточная организация черной субстанции человека и особенности морфологии дофаминовых нейронов, зависимость структурно-функциональных характеристик ЧС от пола, динамика возрастных изменений ЧС при старении и их связь с нейродегенеративным процессом, остается недостаточно изученной, а на материале ЧС человека выполнены единичные работы.

2. Материалы и методы

2.1 Характеристика материала

Исследование проводилось на аутопсийном материале людей, не имевших в истории болезни анамнестических сведений о заболеваниях нервной системы, и умерших от интеркуррентных заболеваний (табл.1). Для работы, в течении первых суток с момента смерти осуществляли забор аутопсийного материала среднего мозга и фиксировали в 4% растворе формалина.

Таблица 1. Характеристика аутопсийного материала

Номер

пол

Возраст

Дата смерти

Патолого-анатомический диагноз

HM1

муж

87 лет

04.02.2013

Пневмония, обострение ХОБЛ

HM2

жен

74 года

06.02.2013

Цирроз печени, хронический панкреатит.

HM5

муж

52 года

14.05.2013

Инфаркт, ожирение, сердечная недостаточность

HM6

муж

84 года

14.05.2013

Аневризма дуги аорты, пневмосклероз, бурая индурация легких

HM7

жен

74 года

18.05.2013

ХИБС, фиброз печени

HM9

жен

73 года

16.12.2013

Бурая индурация печени и легких, ИБС, ОСН

HM10

муж

78 лет

17.12.2013

ХИБС, ГБ, гипостатическая пневмония, эктазия просвета аорты

HM11

муж

76 лет

21.12.2013

Рак поджелудочной железы, ХОБЛ

HM12

муж

84 года

21.03.2014

ХОБЛ

HM13

муж

55 лет

16.12.2014

Обширный инфаркт миокарда, ОСН

Поскольку предполагалось сравнительное исследование плотности распределения нейронов при физиологическом старении организма, исследуемый материал был разбит на три возрастные группы, согласно возрастной периодизации, принятой на 7 Всесоюзной конференции по проблемам возрастной морфологии, физиологии и биохимии от 1965 года:

II период зрелости (36-60 лет мужчины и 36-55 лет женщины) - HM5, HM13.

Пожилой возраст (61-74 года мужчины и 56-74 года женщины) - HM2, HM7, HM9, HM11.

Старческий возраст (75-90 лет для обоих полов) - HM1, HM6, HM10, HM12 (табл. 1)

2.2 Подготовка материала для гистологического исследования

Средний мозга рассекали во фронтальной плоскости на равные части, толщиной около 4 - 5 мм, которые фиксировали в 4% формалине на PBS 7.2 рН в течение 36 часов, во время фиксации раствор формалина периодически обновляли. Образцы промывали проточной водой в течение 24 часов, после чего подвергали гистологической проводке в гистологических кассетах в аппарате АТ-4 ("аппарат-лаборант") по схеме, принятой в лаборатории функциональной морфохимии (Таблица 2). Образцы помещали на 4 часа в термостат при t=56єС в две смены расплавленного парафин (Thermo Histoplast tпл. =56єС).

Таблица 2. Схема гистологической проводки в аппарате АТ-4 ("аппарат-лаборант")

Раствор

Время

Спирт 40є

4 часа

Спирт 60є

4 часа

Спирт 80є

4 часа

Спирт 96є

4 часа

Спирт 100 є

4 часа

Спирт 100 є

4 часа

Спирт/хлороформ 1: 1

1,5 часа

Спирт/хлороформ 1: 2

1,5 часа

Хлороформ 1

2 часа

Хлороформ 2

1,5 часа

После окончания проводки, образцы заливали парафином в специальные формы, ориентируя так, чтобы плоскость будущего среза соответствовала одной из поверхностей блока. Застывание парафина обеспечивали, помещая заливочные формы в кювету с холодной водой при t=20єС. Застывший блок извлекали из формы, маркировали и крепили на подставку. На санном микротоме Leica SR2000 изготавливали серии фронтальных парафиновых срезов среднего мозга толщиной 10 мкм. Каждый третий срез переносили на подготовленные, обезжиренные в смеси Никифорова (96% этиловый спирт и этиловый эфир в пропорции 1:

1), предметные стекла Menzel-Glaser (76х26 мм), толщиной 1 мм, покрытые желатином или адгезивной средой (полилизин). Все срезы мозга были одинаково топографически сориентированы.

Для фиксации срезов, стекла были обработаны желатином с хромовыми квасцами [103]. Срезы мозга, помещали на предметные стекла и высушивали на нагревательном столике при 42єС. Срезы последовательно депарафинировали в двух сменах о-ксилола, после чего регидратировали, проводя стекла через растворы этилового спирта нисходящей концентрации (обезвоженный спирт 100%, 96%, 80%, 60%). После этого предметное стекло со срезами помещали в дистиллированную воду, отмывая остатки спирта, и затем приступали к окрашиванию.

2.3 Метод окрашивания нервной ткани по Нисслю

Характеристика метода

Для выявления клеточного строения черной субстанции срезы окрашивали по методу Ниссля. Методика Ниссля является классическим методом для изучения нервной ткани при помощи световой микроскопии [104] и не потерял своего значения для цитоархитектонических исследований, поскольку окраска по Нисслю позволяет выявить одновременно хроматофильное вещество (тигроид) и ядра нервных клеток. Основу метода Ниссля составляет способность выявлять с помощью основных красителей (тионина, крезилового фиолетового) специфический для нейронов нуклеопротеидный комплекс, содержащийся в цитоплазме нервных клеток, а также другие комплексы РНК и основных белков (ядрышко и гетерохроматин ядра) [105].

Протокол метода окраски по Нисслю

В исследовании использовали стандартный метод окраски по Нисслю по следующему протоколу:

1. В ксилоле со срезов удаляется парафин в течение 15 минут (так как толщина срезов для мозга человека 10 мкм, а не 7). После чего стекло промывали в дистиллированной воде, чтобы не допустить последующего смешения растворов и проводили через спирты нисходящей концентрации до 60% этанола (100% этанол 1 - 5 мин, 100% этанол 2 - 5 мин, 96 % этанол 5 мин, 80 % этанол - 5 мин, 60 % этанол - 5 мин), после чего срезы снова опускали в дистилированную воду до полной заметы спирта водой.

2. Срезы окрашивали 0,1% водным раствором крезилового фиолетового (Merck), на ацетатном буфере (pH=4.5), контролируя степень окраски визуально.

3. После красителя стекло со срезами вновь переносили в воду, смывали избыток красителя и дифференцировали окраску в батарее спиртов возрастающей крепости (60 % этанол, 80 % этанол, 96% этанол, 100% этанол 1, 100% этанол 2 - по 2 минуты). Затем срезы вновь промывали в дистиллированной воде в течении минуты, и последовательно помещали в два ксилола по 5 минут в каждый.

4. После чего срезы заключали в синтетическую акриловую смолу DPX (Surgipath) под покровное стекло.

2.4 Гистохимические методы выявления железа

Характеристика метода

Основой методов выявления железа в тканях мозга является реакция трехвалентного железа с желтой кровяной солью с образованием слаборастворимого осадка железистосинеродистой соли голубого цвета (берлинской лазури) при инкубации срезов в кислом растворе ферроцианидов (реакция Перлса). При помощи этой реакции хорошо выявляются гемосидерины и подавляющая часть отложений солей железа минерального происхождения, кроме того, показана способность этой реакции выявлять железо в концентрациях, присутствующих в структурах мозга, в т. ч. - черной субстанции.

Протокол проведения реакции для выявления Fe3+ по Перлсу.

1. Депарафинация и обезвоживание срезов проводится стандартным способом, доводя их до 60° спирта.

2. Для проведения реакции необходимо растворить 400мг желтых кристаллов ферроцианида калия (K2Fe (CN) 6Ч3H2O) в 40 мл 0,06 н. соляной кислоте (1 мл концентрированной HCl + 199 мл H2O). Инкубация срезов проводится при комнатной температуре в течении часа или в течении 30 минут при 60°.

3. Промывание в 1% уксусной кислоте или в 0,01 н. HCl.

4. Окрашивают срезы 5-10 минут в 0,5% растворе основного фуксина в 1% уксусной кислоте, промывают, обезвоживают и заключают.

В результате участки локализации трехвалентного железа окрашиваются берлинской лазурью, ядра окрашиваются (при проведении докрашивания по Нислю или 1% раствором нейтрального красного - в течении 5 минут) [105,106].

Выявление железа с усилением 3,3-диаминобензидином.

Для повышения чувствительности реакции на железо применяли модификацию метода Перлса с усилением диаминобензидином по Коржевскому [107]. Реакцию выполняли аналогично описанной выше, но перед постановкой реакции срезы обрабатывали 10 минут при комнатной температуре 3% раствором перекиси водорода, для устранения пероксидазной активности, после чего его отмывали. После окрашивания по Перлсу срезы обрабатывали 0,025% раствором 3,3-диаминобензидина тетрагидрохлорида (Sigma), cодержавшим также 0,05% H2O2 15-30 минут. Результатом реакции было коричневое окрашивание, варьирующееся по интенсивности.

2.5 Иммуногистохимическое выявление тирозингидроксилазы и кислого глиофибриллярного белка

Характеристика метода

Иммуногистохимия (ИГХ) - группа методов окраски гистологического материала позволяющих определить тканевую или субклеточную локализацию различных молекул с помощью специфических антител. Метод основан на способности антител на избирательном связывании иммуноглобулинов с антигенными детерминантами белков (эпитопами).

Для выявления тирозингидроксилазы использовали авидинпероксидазный метод, называемый ABC - методом (avidin-biotin complex). Метод реализуется в три этапа:

1) Не меченные антитела (первичные) связываются с антигеном, избыток антител смывают;

2) Наносят на срез антитела, выработанные к первым антителам (вторичные) и конъюгированные с биотином;

3) Добавляют комплекс авидин-биотин - фермент, который присоединяется к биотину вторичных антител;

4) Ферментную метку выявляют при помощи соответствующей реакции, как правило дающей нерастворимый окрашенный продукт.

Преимущество ABC-метода состоит в усилении реакции за счет того, что авидин имеет четыре локуса связывания, к которым можно присоединить биотин или белок, тем самым биотин-авидиновый комплекс можно использовать по типу "мостика" между антителом и ферментом. При этом три центра связывания авидина соединены через биотин с ферментом, что дает на одно место связывания антитела три молекулы фермента.

Для того чтобы выявить фермент, используют различные цветные реакции, окрашенные продукты которых осаждаются в местах где локализуется выявляемый антиген. В нашем исследовании применяли в качестве хромогена использовали 3,3 - диаминобензидин в сочетании с солями никеля, что дает более контрастное окрашивание.

В исследовании использовали кроличьи поликлональные антитела к тирозингидроксилазе (Sigma) - маркерному белку дофаминовых нейронов, и кроличьи поликлональные антитела к кислому глиофибриллярному белку (GFAP) - белку промежуточных филаментов, специфичному для астроцитарной глии. Кислый глиофибриллярный белок часто используется как маркер глиоза, поскольку показано увеличение его экспрессии активированными астроцитами, в том числе и в ЧС человека.


Подобные документы

  • Спинной мозг человека, его описание, расположение и характеристика. Оболочка спинного мозга, ее особенности и разновидности. Строение и основные функции спинного мозга, схематическое изображение и детальное описание особенностей каждой части мозга.

    реферат [743,0 K], добавлен 28.01.2009

  • Изучение химического состава кермека Гмелина. Качественная и количественная оценка основных групп биологически активных веществ, содержащихся в полученной субстанции, их характеристика. Технология производства таблеток на основе надземной части растения.

    дипломная работа [4,1 M], добавлен 15.02.2014

  • Схема головного мозга человека, особенности эволюции. Сегментарные центры продолговатого мозга и моста. Строение среднего мозга на поперечном разрезе. Рецепторный аппарат тонических рефлексов. Схема медиальной и латеральной вестибуло-спинальной системы.

    лекция [1,4 M], добавлен 08.01.2014

  • Оценка иммуногистохимических показателей нейронов фронтальной и теменной коры больших полушарий головного мозга в различные сроки подпеченочного холестаза. Анализ уровня экспрессии синаптофизина и экспресии белка NeuN в нейронах мозга при холестазе.

    курсовая работа [3,8 M], добавлен 20.10.2017

  • Общая характеристика, строение и функции головного мозга. Роль продолговатого, среднего, промежуточного мозга и мозжечка в осуществлении условных рефлексов, их значение. Сравнение массы головного мозга человека и млекопитающих. Длина кровеносных сосудов.

    презентация [2,1 M], добавлен 17.10.2013

  • Болезнь Паркинсона (паркинсонизм) как хроническое нейродегенеративное заболевание, его формы и основные симптомы болезней. Этиология и распространенность данного заболевания, механизм развития. Генетические и биохимические аспекты болезни Паркинсона.

    реферат [28,7 K], добавлен 19.03.2011

  • Характеристика мозга, важнейшего органа человека, регулирующего все процессы, рефлексы и движения в теле. Оболочки головного мозга: мягкая, паутинная, твердая. Функции продолговатого мозга. Основное значение мозжечка. Серое вещество спинного мозга.

    презентация [4,9 M], добавлен 28.10.2013

  • Изображение правого полушария головного мозга взрослого человека. Структура мозга, его функции. Описание и предназначение большого мозга, мозжечка и мозгового ствола. Специфические черты строения головного мозга человека, отличающие его от животного.

    презентация [1,4 M], добавлен 17.10.2012

  • Эмбриогенез человека от оплодотворения и до рождения. Строение мозга: основные отделы головного мозга человека и его эмбриогенез. Дифференцировка клеток нервной ткани, формирование нервной трубки. Рост полушарий в ходе развития плода и закладки мозга.

    реферат [4,3 M], добавлен 26.07.2011

  • Изучение физиологических особенностей дыхания, включающих деятельность периферических и центральных хеморецепторов в гуморальной регуляции вентиляции легких. Факторы регуляции кислородной ёмкости. Функциональная классификация нейронов спинного мозга.

    реферат [35,1 K], добавлен 23.12.2010

Работы в архивах красиво оформлены согласно требованиям ВУЗов и содержат рисунки, диаграммы, формулы и т.д.
PPT, PPTX и PDF-файлы представлены только в архивах.
Рекомендуем скачать работу.