У сельскохозяйственных животных и других высших животных фагоцитарной способностью обладают клетки мононуклеарной системы. При этом наибольшей фагоцитарной активностью и большой подвижностью обладают нейтрофилы (А.Д. Адо, 1961; В.М. Юрков, 1991). В их цитоплазме содержится лизоцим, лейкин - вещества, которые обладают бактерицидными свойствами, а также ряд других ферментов, таких как оксидаза, пероксидаза, кислая и щелочная фосфотаза, липаза и др., благодаря этим ферментам происходит разрушение и переваривание микробов и различных антигенов (В.Е. Пигаревский, 1978; Я. Карр, 1978; И.А. Болотников, В.С. Михкиева, Е.К. Олейник, 1983; С. Коена, П.А. Уорд, Р.Т. Мак-Класки, 1983; Н. Грин, У. Стаут, Д. Тейлор, 1990; С.А. Пигалев, В.М. Скорляков, 1989; А. Ройт, 1991). Помимо нейтрофилов фагоцитарной активностью обладают моноциты, так как их цитоплазма содержит большое количество лизосом, имеющих набор различных гидролитических ферментов, что обеспечивает им высокую фагоцитарную активность (Ф. Бернет, 1964; Ф. Бернет, 1971;Я. Карр, 1978; Н.А. Жарикова, 1979; И.А. Болотников, В.С. Михкиева, Е.К. Олейник, 1983).

Фагоцитарной активностью обладают также и эозинофилы, так как они содержат лизоцимные ферменты, однако фагоцитарные реакции у них выражены слабее. Они участвуют в аллергических и воспалительных процессах, где играют регуляторную роль (А.Д. Адо, 1961; Ф. Бернет, 1971; М.С. Жаков, И.М. Карпуть, А.И. Кривутенко, Л.П. Вель, 1980; И.А. Болотников, В.С. Михкиева, Е.К. Олейник, 1983; Е.Н. Горышина, О.Ю. Чага, 1990; А. Ройт, 1991).

Фагоцитарная активность лейкоцитов во многом определяет защитные свойства организма. Она может изменяться в зависимости от возраста, физиологического состояния, условий содержания и т.д. (И.А. Болотников, Ю.В. Соловьев, 1980). Так, по данным С.И. Плященко, А.Ф. Трофимова, (1979), С.С. Абрамова (1990) в первые месяцы жизни телят клеточные факторы естественной резистентности выполняют в этот период основную защитную функцию в организме. С возрастом по мере становления гуморальных механизмов резистентности активность клеточных факторов снижается. Аналогичная тенденция отмечена у поросят: в становлении защитных механизмов, у которых выделяют два периода. В начале первого периода (с 1 по 20-й день жизни) хорошо выражены клеточные факторы защиты. Второй период (с 20 по 60-й день) наоборот характеризуется постепенным снижением клеточных факторов и дальнейшем повышением гуморальных механизмов защиты: увеличение титра нормальных агглютининов, комплементсвязывающей активности сыворотки крови, повышение содержания общего белка и гаммаглобулинов. Формирование механизмов резистентности у ягнят сходны с таковыми у телят (С.С. Абрамов, 1990).

Лейкоциты неодинаково фагоцитируют различные виды микроорганизмов. У птиц нет нейтрофилов, их функцию выполняют псевдоэозинофилы. Фагоцитарной активностью у птиц обладают псевдоэозинофилы, моноциты, тромбоциты и эозинофилы (И.А. Болотников, Ю.В. Соловьев, 1980; G.I. Gleick, 1977; W.H. Grover, H.H. Winklor, 1978).

По данным М.П. Бабиной (2002) в становлении клеточных иммунных механизмов защиты у цыплят-бройлеров отмечены определённые критические периоды. Они проявляются некоторым снижением клеточных иммунологических факторов через три дня после вывода цыплят и особенно снижаются в 12-28- дневном возрасте. В первый период снижение клеточных факторов иммунной защиты компенсируется усилением всех показателей фагоцитарной активности псевдоэозинофилов. Во второй критический иммунологический период - возрастной иммунный дефицит происходит уменьшение уровня всех популяций лимфоцитов и снижается фагоцитарная активность псевдоэозинофилов. В критические иммунологические периоды наблюдается повышение заболеваемости цыплят желудочно-кишечными болезнями и гиповитаминозами группы В.

Таким образом, состояние фагоцитарной активности лейкоцитов отражает уровень клеточной защиты организма от микроорганизмов.

2.3 Гуморальные факторы защиты

Большая роль в поддержании высокого уровня защитных сил организма отводиться гуморальным факторам защиты. Известно, что свежеполученная кровь сельскохозяйственных животных обладает способностью сдерживать рост (бактериостатическая способность) или вызывать гибель (бактерицидная способность) микроорганизмов. Эти свойства крови и ее сыворотки обусловлены содержанием таких веществ, как лизоцим, комплемент, пропердин, интерферон, бактериолизины, монокины, лейкины и некоторых др. (С.И. Плященко, В.Т. Сидоров, 1979; В.М. Митюшников,1985; С.А. Пигалев, В.М. Скорляков, 1989).

Лизоцим (мурамидаза) - это универсальный защитный фермент, который содержится в слезах, слюне, носовой слизи, секрете слизистых оболочек, сыворотке крови и эстрактах полученных из различных органов и тканей (З.В. Ермольева, 1965; У.Дж. Герберт 1974; В.Е. Пигаревский, 1978; И.А. Болотников, 1982; С.А. Пигалев, В.М. Скорляков, 1989; P.S. Gwakisa, U.M. Minga, 1992). Наименьшее количество лизоцима содержится в скелетных мышцах и мозге (О. В. Бухарин, Н.В. Васильев, 1974). Много лизоцима в белке яиц кур (И.А. Болотников, 1982; А.А. Сохин, Е.Ф. Чермушенко, 1984). Титр лизоцима крови кур имеет достоверную связь с титром лизоцима белка яиц (В.М. Митюшников, Т.А. Кожаринова, 1974; В.М. Митюшников, 1980). Высокая концентрация этого фермента отмечена в органах, которые выполняют барьерные функции: печени, селезенке, легких, а также фагоцитах. Лизоцим устойчив к нагреванию (инактивируется при кипячении), обладает свойством лизировать живые и убитые, в основном грамположительные микроорганизмы, что объясняется разным химическим строением поверхности бактериальной клетки. Противомикробное действие лизоцима объясняют нарушением им мукополисахаридной структуры бактериальной стенки, вследствие чего клетка лизируется (П.А. Емельяненко, 1987; Г.А. Грошева, Н.Р. Есакова, 1996).

Кроме бактерицидного действия, лизоцим оказывает влияние на уровень пропердина и фагоцитарную активность лейкоцитов, регулирует проницаемость мембран и тканевых барьеров. Этот фермент вызывает лизис, бактериостаз, агглютинацию бактерий, стимулирует фагоцитоз, пролиферацию Т- и В-лимфоцитов, фибробластов, антителооброзование. Основным источником лизоцима являются нейтрофилы, моноциты и тканевые макрофаги (У.Дж. Герберт 1974; О. В. Бухарин, Н.В. Васильев, 1974; Я.Е. Коляков, 1986; В.А. Медведский, 1998).

По данным А.Ф. Могиленко (1990), содержание лизоцима в сыворотке крови является важным показателем, характеризующем состояние неспецифической реактивности и защитных сил организма.

В свежей сыворотке крови имеется многокомпонентная ферментативная система комплемента, которая играет важную роль в удалении антигена из организма путем активизации гуморальной системы иммунитета. В систему комплемента входят 11 белков, которые обладают различной ферментативной активностью и обозначаются символами от С1 до С9. Основная функция комплемента - лизис антигена. Существует два пути активации (самосборки) системы комплемента - классический и альтернативный. В первом случае главным является комплекс антиген - антитело, во втором (альтернативном) не требуются для активации первые компоненты классического пути: С1, С2 и С4 (Ф. Бернет, 1971; И.А. Болотников, 1982; Я.Е. Коляков, 1986; А. Ройт, 1991; В.А. Медведский, 1998).

Система комплимента принимает непосредственное участие в неспецифическом комплементарном лизисе клеток - мишеней, особенно пораженных вирусами, хемотаксисе и неиммунном фагоцитозе, антителозависимом комплиментарном лизисе, спецефическом антителозависимом фагоцитозе, цитотоксичности сенсибилизированных клеток. Отдельные компоненты комплемента или их фрагменты играют важную роль в регуляции проницаемости и тонуса сосудов кровяного русла, влияют на систему свертывания крови, принимают участие в выделении клетками гистамина (Ф. Бернет, 1971; С.А. Пигалев, В.М. Скорляков, 1989; А. Ройт, 1991; P. Benhaim, T.K. Hunt, 1992; И.М. Карпуть, 1993).

Естественные (нормальные антитела) содержатся в небольших титрах в сыворотке крови здоровых животных, не подвергшихся специальной иммунизации. Природа этих антител до конца не выяснена. Считают, что они возникают в результате перекрестной иммунизации или в ответ на внедрение в организм незначительного количества инфекционного возбудителя, которое не способны вызвать острое заболевание, а вызывает лишь латентную или подострую инфекцию (У.Дж. Герберт, 1974; С.А. Пигалев, В.М. Скорляков, 1989). По данным П.А. Емельяненко (1987), естественные антитела целесообразней рассматривать в категории иммуноглобулинов, синтез которых происходит в ответ на антигенное раздражение. Содержание естественных антител в крови отражает степень зрелости иммунокомпитентной системы организма животных. Снижение титра нормальных антител происходит при многих патологических состояниях. Вместе с комплементом нормальные антитела также обеспечивают бактерицидную активность сыворотки крови.

Гуморальным фактором естественной резистентности является, также пропердин или точнее система пропердина (Я.Е. Коляков, 1986). Название пропердин происходит от лат. pro и perdere - подготавливать к разрушению. Система пропердина играет важную роль в естественной неспецифической устойчивости животного организма. Пропердин содержится в свежей нормальной сыворотке крови в количестве до 25 мкг/мл. Это сывороточный белок мол. массой 220000, который обладает бактерицидностью, способен нейтрализовать некоторые вирусы. По данным Я.Е. Колякова, (1986); С.А. Пигалева, В.М. Скорлякова (1989); Н.А. Радчука, Г.В. Дунаева, Н.М. Колычева, Н.И. Смирновой (1991) бактерицидная активность проявляется не за счет самого пропердина, а системы пропердина, которая состоит из трех составных частей: 1) пропердина - белка сыворотки, 2) ионов магния, 3) комплемента. Таким образом пропердин не действует сам по себе, а совместно с другими факторами, содержащимися в крови животных, в том числе с комплементом.

Интерферон - это группа белковых веществ, продуцируемых клетками организма и препятствующие репродукции вируса. Индукторами образования интерферона помимо вирусов являются бактерии, бактериальные токсины, мутагены и др. В зависимости от клеточного происхождения и индуцирующих его синтез факторов различают a-интерферон, или лейкоцитарный, который продуцируется лейкоцитами и В-интерферон, или фибробластный, который продуцируется фибробластами. Оба эти интерферрона отнесены к первому типу и продуцируются при обработке лейкоцитов и фибробластов вирусами и другими агентами. Иммунный интерферон, или y-интерферон, который продуцируется лимфоцитами и макрофагами, активированными не вирусными индукторами (У.Дж. Герберт 1974; З.В. Ермольева, 1965; С.А. Пигалев, В.М. Скорляков, 1989; Н.А. Радчук, Г.В. Дунаев и др.,1991; А. Ройт, 1991; P.S. Morahan, A. Pinto, D. Stewart, 1991; И.М. Карпуть, 1993; S.C. Kunder, K.M. Kelly, P.S. Morahan, 1993).

Помимо выше перечисленных гуморальных факторов защиты, важную роль играют такие как, бета-лизины, лактоферрин, ингибиторы, С-реактивный белок и др.

Бета-лизины - это белки сыворотки крови, обладающие способностью лизировать некоторые бактерии. Они действуют на цитоплазмотическую мембрану микробной клетки, повреждая ее, тем самым вызывая лизис клеточной стенки ферментами (аутолизинами), расположенными в цитоплазмотической мембране, активируемыми и освобождаемыми при взаимодействии бета-лизинов с цитоплазмотической мембраной. Таким образом, бета лизины вызывают аутолитические процессы и гибель микробной клетки.

Лактоферрин - негиминовый гликопротеид, обладающий железосвязывающей активностью. Он связывает два атома трехвалентного железа, тем самым конкурирует с микробами и подавляет их рост.

Ингибиторы - неспецифические противовирусные вещества, содержащиеся в слюне, сыворотке крови, секретах эпителия дыхательного и пищеварительного трактов, экстрактов разных органов и тканей. Они обладают способностью подавлять активность вирусов вне чувствительной клетки, при нахождении вируса в крови и в жидкостях. Ингибиторы подразделяют на два класса термолабильные (теряющие активность при нагревании 60-62 0С в течение часа) и термостабильные (выдерживают нагревание до 100 0С) (О.В. Бухарин, Н.В. Васильев, 1977; В.Е. Пигаревский, 1978; С.И. Плященко, В.Т. Сидоров, 1979; И.А. Болотников, 1982; В.Н. Сюрин, Р.В. Белоусова, Н.В. Фомина, 1991; Н.А. Радчук, Г.В. Дунаев, Н.М. Колычев, Н.И. Смирнова, 1991).

С-реактивный белок его находят при острых воспалительных процессах и заболеваниях, сопровождающихся тканевыми деструкциями, так как он может служить показателем активности этих процессов. В нормальной сыворотке этот белок не определяется. С-реактивный белок обладает способностью инициировать реакции преципитации, аглютинации, фагоцитоза, связывания комплементов, т.е. имеет функциональные черты, сходные с иммуноглобулинами. Кроме того, этот белок повышает подвижность лейкоцитов (У.Дж. Герберт 1974; С.С. Абрамов, А.Ф. Могиленко, А.И. Ятусевич, 1988; А. Ройт, 1991).

2.4 Микроклимат и естественная резистентность животных

В процессе своего развития организм сельскохозяйственных животных подвергается постоянному воздействию самых различных факторов внешней среды. К их числу относятся климатические особенности, космические излучения, условия обитания (технология содержания, плотность посадки, величина групп, микроклимат помещения и др.). Одним из важнейшим факторов является воздушная среда, так как в ее окружении организм животных находится постоянно. Воздушная среда - это сложный комплекс взаимосвязанных и взаимодействующих факторов. Непосредственное влияние воздушной среды на организм животных объясняется воздействием на обмен веществ, тепло - и газообмен, физические свойства крови, морфологический и биохимический состав ее, температуру кожи и др. В конечном итоге это сказывается на состоянии здоровья животных, естественной устойчивости их к различным заболеваниям и на их продуктивности (С.И. Плященко, В.Т. Сидоров, 1979; В.М. Митюшников, 1985; В.М. Юрков, 1991).

По данным С.И. Плященко, В.Т. Сидорова, А.Ф. Трофимова (1990) устойчивость организма животных к заболеваниям во многом зависит от состояния микроклимата, формирующегося под влиянием воздухообмена. Воздухообмен при плохой вентиляции является причиной хронического недостатка кислорода в организме животных. Концентрация вредно действующих газов также находиться в прямой зависимости от величины воздухообмена. Так, значительный интерес представляли показатели защитных сил организма телят. Наиболее высокий уровень гаммоглобулинов отмечался у телят при интенсивности воздухообмена 35 м3/ч, по сравнению с подачей воздуха в объёме 12, 25 и 50 м3/ч. Фагоцитарная активность лейкоцитов была более высокой у телят при интенсивности воздухообмена 20 и 35 м3/ч, по сравнению 12 и 50 м3/ч. При очень высоком уровне воздухообмена (50 м3/ч и выше), отмечалось снижение активности фагоцитоза. Аналогичная закономерность была отмечена в показателях бактерицидной и лизоцимной активности сыворотки крови. Следовательно, показатели клеточных и гуморальных факторов защиты организма при повышении уровня воздухообмена увеличивались. В помещениях где уровень воздухообмена был низким или повышенным отмечалось увеличение заболеваемости животных желудочно-кишечными и респираторными заболеваниями.

Исследованиями С.В. Савченко (2001) установлено, что у свиней подверженных заболеванию балантидиозом и не подвергавшихся химиопрофилактике, отмечалось снижение среднесуточных приростов на 36,6 г (19,7 %) и повышение клинического проявления болезни на 50 %, по сравнению с животными содержащихся в условиях нормативного микроклимата. При улучшении микроклимата путем обогрева источниками инфракрасного облучения предупреждало снижение естественной резистентности организма в первые дни после отъёма поросят от свиноматок и наблюдалось более позднее (на 5 дней) естественное заражение животных. Таким образом, улучшение условий микроклимата способствовал постепенной выработке у поросят устойчивости к повторной инвазии, поэтому болезнь и проявлялась в менее выраженной форме.

По данным Г.А. Соколова (1998) Наибольший отход ягнят происходит в первые дни после рождения, особенно при отсутствии искусственного обсушивания новорожденных, что связано с развитием у них гипотермии и снижением температуры тела до 34-350С из-за потерей тепла организмом на испарение 250-300 г влаги с поверхности тела, на что расходуется 600-750 кДж внутренней энергии организма ( ягненка романовской породы). При этом снижается общая устойчивость организма: уменьшается количество гемоглобина на 9% и эритроцитов на 6%, снижается бактерицидная активность сыворотки крови и фагоцитарная активность лейкоцитов на 34%, а фагоцитарное число на 14%.

По данным С.И. Плященко, А.Ф. Трофимов (1985) оптимизация микроклимата за счёт подогрева приточного воздуха и увеличения воздухообмена до 28-30 м3/ч в переходный период и 14,5-17 м3/ч на 1 ц живой массы зимой оказывало положительное влияние на состояние естественных защитных сил организма коров. Бактерицидная активность сыворотки крови повысилась на 8,9-23,6 %, комплементарная на 8, лизоцимная на 4,9-10,7 %. Возрастала также активность клеточных факторов защиты организма. Обеспечение оптимального микроклимата способствовало снижению заболеваемости коров на 4,0-8,5 %, сокращению сервис - периода на 6,0-9,6%, числа заболеваний телят, полученных от этих коров на 8,0-9,5%, повышению молочной продуктивности на 6,6-8,1%.

Опыт эксплуатации птицефабрик показывает, что в стадах кур более распространены не острозаразные, а такие инфекционные и незаразные болезни, которые возникают на фоне снижения уровня естественной резистентности организма. Снижение уровня естественной резистентности организма - основной признак, позволяющий определить наличие той или иной патологии (В.М. Митюшников, Р.И. Варкина, 1984).

Исследованиями В. Митюшникова, Н. Кравченко (1983), установлено, что системы вентиляции и отопления в птичниках не обеспечивали необходимый микроклимат в зимний и переходный периоды года. В результате неравномерного распределения воздуха в помещениях наблюдались застойные зоны, большой перепад температуры и влажности, повышенная запыленность, загазованность, бактериальная обсемененность воздуха и оборудования. Ухудшение микроклимата отрицательно сказывалось на естественной резистентности кур - несушек, так у них отмечались достоверное снижение лизоцимной активности и содержания общего белка в сыворотке крови. Уменьшение гамма - глобулиновой фракции белка сопровождалось увеличением альбуминовой. Процент псевдоэозинофилов в лейкоцитарной формуле снизился, а лимфоцитов повысился. Отмечалось также снижение яйценоскости на 2,5-3,4% в зимний и переходный периоды года по сравнению с летним.

Исследованиями Е. Евглевской, М. Найденского (1995), установлено, что у ремонтного молодняка кур, выращиваемого в многоярусных клеточных батареях при общепринятом дифференцированном световом режиме (ОНТП 4-88), отмечалось снижение показателей гемоглобина, эритроцитов на 9,0 и 11,4% (Р<005), бактерицидной и лизоцимной активностям сыворотки крови на 14,3 (Р<005) и 14,6 (Р<005), чем у птицы, находящей в режиме варьирующего освещения от 10- 15 до 0,1-0,2 лк через каждые 60-70 минут. В птичнике, где птица находилась в режиме прерывистого освещения падеж снизился почти в двое, а сохранность была на 9-10% выше по сравнению с птичником, где птица находилась в общепринятом режиме освещения.

По данным Т.В. Кракосевич (1990), при использовании ритмично- варьирующего светового режима (от 25 до 1 лк, через каждые 40-50 мин освещения) при выращивании бройлеров, позволили существенно повысить показатели естественной резистентности и продуктивность. Так, показатели гемоглобина и эритроцитов крови на 1,8-2,6%, общего белка на 1,4-2,5%, фагоцитарной активности лейкоцитов на 2,2-3,8% и бактерицидной активности сыворотки крови на 2,1-3,7% превосходили птицу, содержащуюся при обычном световом режиме. Ритмично - варьирующий режим освещения оказывал положительное влияние на сохранность выращиваемого молодняка (на 1,2-2,1% выше) и продуктивность на 2,2-3,1% выше по сравнению с птицей, содержащийся в обычном световом режиме.

Таким образом, микроклимат и естественная резистентность организма тесно взаимосвязаны между собой, то есть чем лучше микроклимат, тем лучше естественная резистентность организма и наоборот. Чем хуже микроклимат, тем слабее естественная резистентность организма и следовательно происходит наслоение условно-патогенной микрофлоры вызывая острое проявление болезни.

3. Застойные зоны воздуха (аэростазы) в животноводческих помещениях

Названный нами аэростаз (от лат. aer - воздух; греч. stasis - застой, неподвижность) - это зона застоя воздуха в помещении, которая оказывает неблагоприятное влияние на организм животных. Аэростаз чаще возникает в помещениях со сложным инженерным оборудованием, которое оказывает значительное аэродинамическое сопротивление или находится в неисправном состоянии, особенно при многоярусном содержании птицы в клеточных батареях, расположенных в разных соотношениях к приточным и вытяжным воздуховодам.

Аэростазы возникают вследствие проектных, строительных и эксплуатационных недостатков вентиляции в помещениях. Например, проектные недостатки возникают вследствие недостаточного расчётного воздухообмена, неправильного соотношения притока и вытяжки, неравномерной подачи свежего приточного воздуха в зону расположения животных, монтаж воздуховодов одинакового диаметра и др. Строительные недостатки возникают в период стройки или реконструкции помещения если в нём устанавливают маломощные электровентиляторы, недостаточное количество воздуховодов или отверстий в них, засорения воздуховодов строительным мусором, особенно подпольных вытяжных труб и отверстий в них. К эксплуатационным недостаткам относят: отсутствие или экономия электроэнергии и периодическое отключение электровентиляторов, износ и выход со строя вентиляционных агрегатов, скученное содержание животных, закупорка воздуховодов гнёздами птиц, затопление подпольных вытяжек навозной жижей, стоками грунтовых или дождевых вод, рециркуляция внутреннего воздуха выше допустимых пределов, закольцованные движение воздуха по кругу в виде шара или вала внутри помещения.

Все эти вышеперечисленные недостатки помещений вызывают резкое снижение качества микроклимата. В нем накапливается тепло, влага, углекислый газ и клоачные газы, пыль и микрофлора в зависимости от степени аэростаза и недостатка воздухообмена. Как правило, в аэростазе движение воздуха менее 0,1 м/с кроме закольцованного движения или рециркуляции.

Аэростазы устанавливают бифлюгером или задымлением с составлением и анализом внутренней аэрорумбограммы - графической записи направлений движения воздуха в помещении (Г.А. Соколов, 1978; Г.А. Соколов, А.Н. Карташова, 1990; Г.А. Соколов, 1998; Д.Г. Готовский, 1998).

4. Классификация аэростазов

В настоящее время аэростазы в зависимости от подачи и распределения воздуха в животноводческие помещения мы подразделяем на следующие виды:

1. Общий, т.е. застой воздуха во всем помещении, например, при недостаточном общем воздухообмене помещения, при отсутствии притока или вытяжки;

2. Локальный - при неправильном воздухораспределении в помещении;

3. Токсический - при отключении электроэнергии в птичнике и накоплении углекислоты, при потере герметичности теплообменника в теплогенераторе и при попадании в приточный воздух выхлопных газов,

4. Гидростатический - при отсутствии вентиляции и 100% влажности воздуха в помещении.

По степени влияния на организм животных аэростазы мы подразделяем на 3 степени:

1-ая степень: снижение воздухообмена помещения на 20-30%, показатели микроклимата близки к максимальным значениям гигиенических нормативов, а животные не проявляют видимых клинических признаков какого либо заболевания, но продуктивность достоверно снижена, например, при откорме бычков на 20-30% . Такие аэростазы мы называем скрытыми, так как они не обнаруживаются при проведении текущих исследований микроклимата. Такие аэростазы, как правило, сопровождаются постепенным снижением естественной резистентности у животных и возникновением единичных случаев заболеваний, вызванных в основном условно-патогенной микрофлорой.

2-ая степень: снижение воздухообмена на 30-50%, показатели микроклимата значительно отличаются от нормы. Так, температура выше на 3-5 0С, влажность на 5-10%, аммиак в 1,5-2 раза, микробная обсеменённость в 2-3 раза. При этом иммунный статус организма значительно ослаблен, хронические болезни обостряются с явными клиническими признаками, а лекарственные препараты дают значительно низкую эффективность. При этом у животных, находящихся в условиях аэростаза, постоянно выделяются больные и исхудавшие, которые чаще в последствии выбраковываются и идут на санитарный убой - это средний аэростаз.

3-ая степень - жёсткий аэростаз, при нём воздухообмен снижен до 80% или отсутствует вовсе. Микроклимат приобретает токсические свойства: температура выше нормы на 5-10 0С и более, влажность близка к полному насыщению, аммиак в 3-4 раза превышает норматив, микробная обсемененность в 5-15 раз больше нормативной. В таких условиях болезнь протекает в виде острой энзоотии только в аэростазном помещении с характерной для острой инфекции картиной первичного септического очага в дыхательных путях, в других помещениях её нет. В таких случаях практические врачи иногда путаются в постановке диагноза и принимают её как особо опасную инфекцию, например, чуму свиней, пастереллёз крупного рогатого скота и др. Заболеваемость животных достигает в таких случаях до 50-80%, а отход иногда составляет 33%. Применяемые при этом лекарственные препараты (сульфаниламиды и антибиотики) не дают лечебного эффекта. Однако они восстанавливают своё действие на больных животных спустя 3-4 дня после нормализации микроклимата в помещении. При вскрытии павших животных выделяется условно-патогенная микрофлора.

Таким образом, при проведении санитарной паспортизации животноводческих помещений необходимо составлять внутреннею вертикальную и горизонтальную аэрорумбограмму (графическую запись движения воздушных масс в помещении) при помощи задымления, выявлять и ликвидировать аэростазы в различной степени отрицательно влияющих на организм животных (Г.А. Соколов, Д.Г. Готовский, 2000).

Проблема равномерного распределения свежего приточного воздуха и возникновения застойных микрозон является особенно актуальной для птицеводческих помещений. Так, по данным А.К. Даниловой, М.С. Найденского, И.С. Шпиц, В.С. Яворского (1987), во всех многоярусных батареях типа КБН в следствие особенности конструкций на уровне всех ярусов, кроме верхнего внутри клетки образуются застойные зоны с подвижностью воздуха ниже 0,05 м/с. В этих условиях у птицы снижается возможность конвективных теплопотерь, что может провести к нарушению теплорегуляции.

Исследованиями В.М. Селянского (1975); Ю.Н. Пчелкина, А.И. Сорокина (1977), установлено, что в птичниках, где птица содержится в многоярусных клеточных батареях, микроклимат претерпевает существенные перепады температуры, влажности воздуха, концентрации аммиака и углекислого газа на разных ярусах. Так, на каждом уровне имелись значительные отклонения параметров микроклимата по всему помещению. Содержание вредных газов, пыли, микробных тел в большинстве случаев значительно превышало нормы. В клетках с птицей наблюдалась недостаточная подвижность воздуха, значительная запыленность и загрязненность воздуха по сравнению с общей воздушной средой зала.

По данным Л.Л, Светловой, З.П. Федоровой, И.Д. Ещенко (1978); Б.Л. Дубового, Л.В. Вергеренко (1978), вентиляция птичников со сквозным проветриванием уступает системе с верхней подачей и нижней вытяжкой воздуха. Температура в летние месяцы превышала норму на 8-10 С0, относительная влажность на 14-24%, концентрация аммиака в средней и верхней зоне колебалась в пределах нормы, в то время как у пола создавались мертвые зоны, где содержание аммиака в среднем превышало норму в два раза. В этих застойных зонах количество микроорганизмов достигает наибольшей величины (от нескольких сот тысяч до 1,5 млн. в 1 м3), содержание пыли и вредных газов в несколько раз превышает ПДК относительно других зон птичника. Установлено, что гибель птицы находилась в прямой зависимости от содержания аммиака и микробной обсемененности в помещениях. Так, в одном из птичников в июне, где концентрация аммиака в ночное время в 13 раз превышала норму, ежедневно погибало 4,5% птиц от общего количества индюшат.

По данным В. Иваненко, М. Левыкина, А. Светличного (1993); Н.И. Щербинина, Ю.Н. Щербинина (1998), минимальный воздухообмен в зимнее время создает предпосылки к возникновению микрозон с застойным воздухом, в которых создается повышенная концентрация воздушных вредностей. По их наблюдениям, в таких зонах содержание аммиака увеличивается в 4-6 раз против тех зон, где воздушные потоки продвигаются от приточных воздуховодов к вытяжным вентиляторам.

По данным Б.Ф. Бессарабова (1983), даже при подаче и удалении из помещения оптимального количества воздуха из-за нерационального его распределения в цыплятнике образуются застойные зоны с высокой относительной влажностью, повышенной концентрацией вредных газов и бактерий.

Исследованиями Н. Дьяконова, В. Тимофеева (1991), установлено, что типовая вентиляция в сблокированных птичниках не обеспечивает равномерной подачи приточного воздуха, вероятен возврат загрязненного воздуха с приточным, неравномерное поступление подогретого воздуха в холодный период года, сложность в обслуживании и малая надежность в работе вытяжных центробежных вентиляторов и приточных отопительно - вентиляционных установок на кровле.

По данным Е.Н. Короткова (1987); В.В. Золотенкова, Г.Н. Бобылевой (1990), в помещении птичника при исследовании микроклимата имели место перепады температур на 6-8 0С, скорость движения воздуха ниже в 2 раза нормативно допустимой, аммиака содержалось почти в 3 раза выше нормы, относительная влажность составляла 30-40%, контаминация и запыленность воздуха в 4-5 раз выше допустимых. Падеж птицы достигал 6 голов в сутки.

По данным В.И. Мельника, В.И. Мельника, Л.З. Поплавского, (1977), при содержании птицы в четырехъярусных клеточных батареях, отмечались резкие колебания микроклимата на уровне первых и четвертых ярусов. За три периода года разность температур между первым и четвертым ярусом клеток составила 4,7 0С (19,9 против 24,6). Относительная влажность на уровне четвертых ярусов была ниже гигиенических норм. Скорость движения воздуха в клетках первого яруса составляла 0,32, четвертого 0,24 м/с. Концентрация углекислого газа и аммиака в четырехъярусных клеточных батареях только на уровне первых ярусов соответствовала нормам, тогда как на уровне четвертых ярусов значительно превышала их. Высокая концентрация газов на уровне четвертых ярусов клеточных батарей объясняется недостаточной вентиляцией воздуха в этих местах. Данные микроклимата свидетельствовали о том, что условия содержания кур - несушек в четырехъярусных и одноярусных клеточных батареях существенно различались. Это значительно влияло на продуктивность кур несушек. В зимний, переходные и летний периоды яйценоскость 140 кур из клеток первых ярусов была на 73 яйца больше, чем у кур из клеток четвертых ярусов. При этом вес яиц от кур, размещенных на первых ярусах, был на 1,3-1,5 г выше, чем у кур из четвертых.

Исследованиями В.М. Гончаренко, Н.К. Резника (1992) установлено, что вентиляционное оборудование в птичниках независимо от типа клеточных батарей в летне-осенний период не обеспечивает оптимальный температурно - влажностный режим, так температура воздуха превышала норматив на 5-7 С0, а относительная влажность на 15-20%. Интенсивность освещения в зоне кормушек 4-х ярусных клеточных батарей колебалась от 15-25 лк на первом ярусе до 120-150 лк на четвертом. В 3-х ярусных клеточных батареях освещение было более выравненным: в зоне кормушек на 1-2 ярусах - 65-75 лк, на 3-ем - 80-100 лк. Сохранность птицы при содержании в каскадных батареях составила 95,4%, в контроле - 89,6%. Яйца, полученные от несушек в контрольном и опытном птичниках, не имели по массе существенных различий.

Нашими исследованиями воздухораспределения проведёнными на Витебской бройлерной птицефабрике установлено, что непроизводительная работа вентиляторов на притоке и вытяжке приводит к перерасходу энергоресурсов и нарушению микроклимата в птичниках. Уменьшение подачи свежего воздуха за счет перекрытия отверстия на притоке (во время снижения температуре в атмосфере) на 1/4 часть способствовало уменьшению забора из внешней среды до 60,8%. Поэтому недостающий воздух поступал из помещения. Такая непредвиденная рециркуляция нарушала равномерность воздухораспределения в самом птичнике; так, в торцовых частях здания воздух циркулировал по кругу, а в середине, и особенно около стен, наблюдались аэростазные зоны, что приводило к недостаточности потребления кислорода, снижению газообмена, нарушению физиологических функций в организме и отходу цыплят.

Наши исследования, проведенные на птицефабрике им. Крупской г. Минска, показали, что локальное состояние микроклимата в птичниках с клеточным содержанием кур несушек в батареях ОБН при нормативном общем воздухообмене не отвечает гигиеническим требованиям. Так, при составлении внутренней аэрорумбограммы при помощи задымления, был выявлен аэростаз в середине помещения, который характеризовался следующими параметрами микроклимата: температура достигала 23,5 0С, относительная влажность 89%, подвижность воздуха 0,08 м/с, концентрация аммиака 17 мг/м3, содержание углекислого газа 0,5%, содержание микробов 260 тыс. в м3 воздуха. Аэростазный микроклимат способствовал повышенной выбраковке птиц от хронических респираторных заболеваний (риниты, бронхиты, ларинготрахеиты и бронхопневмонии) на 11,1% по сравнению с птицей, находящейся в условиях нормативного микроклимата в крайних пристеночных рядах. Наблюдалось снижение яйценоскости у кур из зоны аэростаза на 23%. С устранением аэростазного участка путем монтажа дополнительного приточного воздуховода выбраковка птицы снизилась и восстанавливалась яйценоскость. Из приведенных литературных данных следует, что аэростазы разной степени по-разному оказывают отрицательное влияние на организм.

5. Воздухораспределение в животноводческих помещениях и его влияние на микроклимат

Обобщая исследования, проведенные нами в различных животноводческих помещениях, следует отметить, что равномерность распределение свежего приточного воздуха по помещениям является решающим фактором формирования как микроклимата в целом, так и возникновения в отдельных его участках аэростазов внутри животноводческих построек. То есть возникновение аэростазов целиком и полностью зависит от равномерности распределения свежего приточного воздуха.

6. Аэростазы в птичниках

Так, исследования воздухораспределения, проведенные в типовых птичниках птицефабрик Беларуси, где птица содержится в продольно расположенных трехъярусных клеточных батареях КБУ-3 с вентиляцией сверху - вниз в разные сезоны года (зима, лето, переходные периоды) показали, что локальное состояние микроклимата в отдельных частях помещений не соответствовало рекомендованным гигиеническим стандартам. Так, в исследуемых птичниках в пристеночнах клеточных батареях обнаружены участки локальных аэростазов, которые располагались на верхних и средних ярусах, и занимали примерно две трети каждой пристеночной клеточной батареи, что составляло около 30% от общего объема помещения. Расчетный воздухообмен на кг ж. м. в холодный период года был 2-2,33 м3/ч и превышал нормативный (0,75); а в теплый - 2,92-3,09 м3/ч, что значительно ниже норматива (5,0). Таким образом, в разные периоды года расчетный воздухообмен был примерно одинаковым. Так, в холодные периоды года он превышал установленный норматив, а в теплые был ниже норматива, что являлось причинами пониженной температуры в зимний период и повышенной в летний и весенний периоды внутри птичников (табл. 1).

Выявленные аэростазы возникали вследствие механического сопротивления, которое оказывали клеточные батареи, сама птица, опорные колонны и другие механические и строительные конструкции струям поступающего в помещение свежего приточного воздуха (рис.1). Причинами, способствующими возникновению аэростазов, были значительная отдаленность приточных шахт естественной вентиляции друг от друга, центральное расположение только одного приточного воздуховода механической вентиляции (рис. 1).



Рис. 1 Внутренняя аэрорумбограмма птичников до реконструкции

1 - приточные шахты, 2 - приточный воздуховод, 3 - хорошо продуваемы клеточные батареи, 4 - опорные колонны, 5 - вытяжные вентиляторы, А - участки локального аэростаза крайних пристеночных клеточных батарей.

Основным признаком застоя воздуха (аэростаза) в птичнике являлись низкая подвижность воздуха (менее 0,1 м/с) и несоответствие показателей микроклимата гигиеническим нормативам. Так, в зимний период года в участке локального аэростаза температура воздуха изменялась в пределах от 15 до 20оС и в целом соответствовала нормативу. Остальные показатели микроклимата значительно превышали гигиенические нормативы: относительная влажность на 10%; содержание аммиака и углекислого газа в 1,25-2,0 раза; микробная обсемененность воздуха в 1,7-2,4 раза; уровень пылевой загрязненности воздуха в 1,5 раза. Скорость движения воздуха была менее 0,1 м/с, что значительно ниже установленного норматива - 0,2-0,3 м/с (см. табл. 1).

40

Таблица 1

Показатели микроклимата птичников в различные сезоны года

Показатели микроклимата	Зима	Весна	Лето	Осень
	Опыт	Контроль	Опыт	Контроль	Опыт	Контроль	Опыт	Контроль
Температура, 0С	15,0-20,0 17,5	13,8-16,0 14,9	17,8-28,0 22,9	16,0-21,6 18,8	18,8-27,4 23,1	16,6-22,6 19,6	20,0-23,4 21,7	15,8-18,4 17,1
Относительная влажность, %	70-80 75	58-76 67	60,0-81,0 70,5	50-80 65	72-90 81	65,0-80,0 72,5	58-76 67	64-78 71
Подвижность воздуха, м/с	0,01-0,16 0,085	0,06-0,49 0,275	0,01-0,18 0,095	0,12-1,6 0,86	0,01-0,09 0,05	0,14-0,28 0,21	0,04-0,14 0,09	0,23-0,72 0,475
Аммиак, мг/м3	12,5-20,0 16,25	7,5-11,0 9,25	10-16 13	5,0-10,0 7,5	10,0-15,0 12,5	5,0-10,0 7,5	10,0-15,0 12,5	2,5-10,0 6,25
Углекислый газ, %	0,25-0,4 0,325	0,15-0,25 0,2	0,3-0,45 0,375	0,15-0,25 0,2	0,22-0,4 0,31	0,1-0,22 0,16	0,25-0,4 0,325	0,1-0,25 0,175
Микробная обсемененность, тыс./м3	300,0-435,0 367,5	120-225 172,5	250-500 375	150-260 205	290-394 342	200-230 215	132,0-551,0 341,5	72,6-145,3 108,95
Пылевая загрязненность, мг/м3	4-6 5	2,0-3,5 2,75	8,5-12,0 10,25	1,5-3,2 2,35	6,0-10,5 8,25	0,9-2,6 1,75	9-11 10	2,6-3,9 3,25

Примечание: 1. Числитель - колебания, знаменатель - средняя величина.

2. Опыт - зона аэростаза, контроль - участок нормального микроклимата.

41

В летний период исследований в участке аэростаза основные показатели микроклимата также превышали гигиенические нормативы: температура воздуха на 9,4 градуса; относительная влажность на 20%; концентрация аммиака в 1,25 раза; содержание углекислого газа в 1,55 раза; микробная обсемененность в 1,6-2,2 раза; уровень пылевой загрязненности в 1,5-2,6 раза. Подвижность воздуха была ниже 0,1 м/с, что значительно ниже гигиенического норматива - 0,3-0,6 м/с (см. табл. 1).

В переходные периоды основные показатели микроклимата в аэростазных зонах также превышали гигиенические нормативы. Так, в весенний период показатели микроклимата в аэростазной зоне были выше нормативов: температура воздуха на 10 градусов; относительная влажность на 11%; концентрация аммиака и углекислого газа в 1,3 и 1,9 раза; общая микробная обсемененность в 1,4 и 2,8 раза; пылевая загрязненность воздуха в 2-3 раза. Скорость движения воздуха была менее

0,1м/с (см.табл. 1). В осенний период показатели микроклимата в зоне аэростаза, также превышали гигиенические нормативы: температура воздуха на 2-5,4 градуса; содержание аммиака в 1,25 раза, концентрация углекислого газа в 1,25-2 раза; микробная обсемененность в 3,1 раза; уровень пылевой загрязненности воздуха в 2,25-2,75 раза. Относительная влажность в целом соответствовала гигиеническим стандартам и изменялась в пределах 58-76%; скорость движения воздуха была ниже допустимого норматива - 0,2-0,3 м/с и была менее 0,1 м/с (см. табл. 1).

Выводы:

В исследуемых птичниках в результате неравномерного распределения свежего приточного воздуха образуются зоны с застойным воздухом, в которых по причине низкой подвижности воздуха происходило увеличение температуры и накопление вредных выделений (газов, микробов и пыли) за пределы гигиенических нормативов.

В холодный период года в аэростазных зонах основные показатели микроклимата превышали установленные нормативы: температура на 10-23,1%, относительная влажность на 6-10%, концентрации аммиака и углекислого газа на 33,4-50% и 20-50%, микробная обсемененность на 58,6-67,4%, пылевая загрязненность воздуха на 33,4-63,6%. Скорость движения воздуха в этот период года была на 55-57,5% ниже нормативной.

В теплый период года в аэростазных зонах основные показатели микроклимата, также превышали нормативы: температура на 34,3-35,7%, относительная влажность на 11-20%, концентрации аммиака и углекислого газа на 33,4-37,5% и 33,4-55,6%, микробная обсемененность и пылевая загрязненность на 54,3-64% и 61,9-66,7%. Скорость движения воздуха была на 68,3-83,3% ниже допустимой.

Данные аэростазы мы квалифицируем как средние или даже скрытые в зависимости от сезона года.

6.1 Влияние аэростазов на клинико - физиологическое состояние молодняка кур

Наши исследования, проведенные в описанных выше птичниках, показали, что внутренние аэростазы оказывают влияние на клинико - физиологическое состояние организма ремонтного молодняка кур.

Так, в зимний период года в начале исследований у молодняка кур обеих групп температура тела, частота пульса и количество дыхательных движений были в пределах физиологических нормативов. Корм и воду птицы принимали охотно, видимые слизистые оболочки ротовой полости и гортани были розового или бледно - розового цвета, без повреждений и наложений. Во вторую и третью недели исследований у молодняка кур опытной группы отмечались увеличение частоты пульса на 13,1% (P<0,01) и 14,3% (P<0,001) и количества дыхательных движений на 34,2% (P<0,001) и 33,5% (P<0,001) по сравнению с птицей из контрольной группы (табл. 3.5). Температура тела находилась в пределах физиологических нормативов. Корм и воду птицы принимали вяло. Видимые слизистые оболочки ротовой полости и гортани были розового или бледно - розового цвета, влажные, блестящие, без повреждений и наложений. У молодняка кур контрольной группы в течение всего периода исследований температура тела, частота пульса и количество дыхательных движений были в пределах физиологических норм (см. табл. 2). Видимые слизистые ротовой полости и гортани розового или бледно - розового цвета, влажные, блестящие, без повреждений и наложений.

Таблица 2

Показатели клинического статуса молодняка кур в зимний период, (Mm, p)

Показатели Клинического статуса	Опытная группа	Контрольная группа
Время исследований	1-я неделя	2-я неделя	3-я неделя	1-я неделя	2-я неделя	3-я неделя
Температура, 0С	41,21 0,256	41,24 0,248	41,50 0,274	41,21 0,275	41,26 0,205	41,26 0,286
Пульс, ударов в мин.	132,30 3,938	160,90** 1,682	163,30*** 2,222	134,0 4,69	139,90 3,751	139,90 3,628
Дыхание, движений в мин.	21,71 1,742	38,86*** 1,010	40,14*** 1,710	22,57 2,707	25,57 1,850	26,71 2,254

Примечание: здесь и далее - *, **, *** - уровень значимости критерия достоверности - P - <0,05, 0,01 и <0,001 - соответственно.

В весенне-летний период года во вторую неделю исследований у птиц опытной группы, также происходило увеличение частоты пульса и дыхания по сравнению с контролем. Так, в весенний период года во вторую и третью недели исследований у птиц опытной группы отмечалось увеличение частоты пульса на 18,7% (P<0,01) и14,3% (P<0,01), и количества дыхательных движений на 49,3% (P<0,001) и 37,5% (P<0,01) по сравнению с птицей из контрольной группы. Температура тела была в пределах физиологических нормативов (табл. 3.).

Таблица 3

Показатели клинического статуса молодняка кур в весенний период, (Mm, p)

Показатели Клинического статуса	Опытная группа	Контрольная группа
Время исследований	1-я неделя	2-я неделя	3-я неделя	1-я неделя	2-я неделя	3-я неделя
Температура, 0С	41,26 0,167	41,21 0,195	41,28 0,283	41,31 0,295	41,16 0,193	41,20 0,239
Пульс, ударов в мин.	136,0 4,14	160,70** 1,614	153,70** 4,744	130,30 4,433	130,70 2,792	131,70 4,960
Дыхание, движений в мин.	21,14 1,580	41,14*** 2,324	38,86** 2,613	23,29 2,950	20,86 2,395	24,29 2,809

В осенний период года во вторую и третью недели исследований у птиц опытной группы также отмечались увеличения частоты пульса на 12,2% (P<0,001) и 10,4% (P<0,01), и количества дыхательных движений на 31,8% (P<0,001) и 33,4% (P<0,001) по сравнению контролем (табл. 3.8). У молодняка кур контрольных групп в переходные периоды года температура тела, частота пульса и количество дыхательных движений в течение всего периода исследований были в пределах физиологических норм (см. табл. 4). Видимые слизистые оболочки гортани и ротовой полости были розового или бледно - розового цвета, влажные, блестящие без повреждений и наложений.

Таблица 4

Показатели клинического статуса молодняка кур в осенний период, (Mm, p)

Показатели клинического статуса	Опытная группа	Контрольная группа
Время исследований	1-я неделя	2-я неделя	3-я неделя	1-я неделя	2-я неделя	3-я неделя
Температура, 0С	41,39 0,216	41,35 0,163	41,17 0,211	41,34 0,206	41,35 0,208	41,36 0,203
Пульс, ударов в мин.	132,803,304	154,40***1,388	152,60** 1,647	134,50 3,520	135,60 3,184	136,80 3,337
Дыхание, движений в мин.	23,63 2,052	36,13*** 1,093	36,25***1,521	23,132,232	24,63 1,954	24,13 1,674

Выводы: Локальные аэростазы птичников оказывали негативное влияние на показатели клинико - физиологического статуса организма, которое проявлялось увеличением количества дыхательных движений на 34,2-49,3% и учащением пульса на 14,3-18,7% и не оказывали влияние на температура тела молодняка кур.

6.2 Влияние аэростазов на морфологический состав крови молодняка кур

Как показали наши исследования, застойные зоны воздуха оказывали негативное влияние на некоторые показатели морфологического состава крови у молодняка кур.

Так, в зимний период исследований установлено достоверное снижение количества эритроцитов на 44,6% (P<0,001) и гемоглобина на 41,2% (P<0,01) и 42,4% (P<0,05), во вторую и третью неделю исследований у птицы, находящейся в аэростазном участке, по сравнению с птицей, содержащейся в условиях нормального микроклимата. Достоверных различий количества лейкоцитов и тромбоцитов в течение всего периода исследований в обеих группах не регистрировалось (табл. 5).

Таблица 5

Показатели морфологического состава крови молодняка кур в зимний период, (Mm, p)

Показатели крови	Опытная группа	Контрольная группа
Время исследований	1-я неделя	2-я неделя	3-я неделя	1-я неделя	2-я неделя	3-я неделя
Эритроциты, х1012/л	2,84 0,277	2,83 0,155	2,42 0,155	2,76 0,219	3,09 0,129	4,37*** 0,279
Гемоглобин, г/л	35,14 5,535	29,71 2,447	32,57 3,484	37,14 6,277	50,57**3,993	56,57* 8,185
Тромбоциты, х109/л	124,608,430	221,70 12,330	168,6 9,70	137,0 10,54	216,30 11,850	154,30 10,610
Лейкоциты, х109/л	55,43 3,644	71,71 5,528	28,57 7,325	63,43 4,571	62,0 5,75	46,86 4,837

Достоверных изменений клеток крови в лейкограмме в течение зимнего периода исследований обнаружено не было (табл. 6).

Таблица 6

Лейкограмма крови молодняка кур в зимний период, (Mm)

Клетки крови	Опытная группа	Контрольная группа
Время Исследований	1-я неделя	2-я неделя	3-я неделя	1-я неделя	2-я неделя	3-я неделя
Базофилы, %	0	0	0	1,00	0	0
Эозинофилы, %	2,0 0,55	5,3 1,23	4,3 0,76	1,5 2,89	3,7 1,89	3,0 0,71
Миелоциты, %	0	0	1,00	0	1,00	0
Юные, %	0	0	0	0	1,30,33
Палочкоядерные, %	0	0	0	0	0	0
Сегментоядерные, %	2,8 1,18	5,1 1,53	3,0 0,72	2,8 0,60	3,5 0,76	11,3 3,56
Лимфоциты, %	94,9 0,96	87,9 1,24	91,6 0,97	94,4 0,11	91,7 1,92	85,0 3,75
Моноциты, %	2,4 0,68	2,8 1,11	1,00	2,2 0,60	1,2 0,20	1,5 0,50

В теплый период года (весна - лето), у птиц опытной группы, также отмечалось уменьшение количества эритроцитов и гемоглобина в крови по сравнению с контролем (табл. 7).

Таблица 7

Показатели морфологического состава крови молодняка кур в весенний период, (Mm, p)

Показатели крови	Опытная группа	Контрольная группа
Время исследований	1-я неделя	2-я неделя	3-я неделя	1-я неделя	2-я неделя	3-я неделя
Эритроциты, х1012/л	3,18 0,142	2,72 0,142	2,71 0,109	3,09 0,186	3,25** 0,133	3,31*** 0,147
Гемоглобин, г/л	34,29 9,002	24,86 4,469	55,14 8,116	29,43 3,670	37,43 5,066	65,71 7,204
Тромбоциты, х109/л	96,0 10,76	51,43 11,890	84,0 17,85	95,43 17,640	86,86 13,600	64,57 10,040
Лейкоциты, х109/л	54,57 3,823	46,57 5,028	52,0 9,32	55,43 5,481	37,43 7,338	38,86 4,426

Так, установлено снижение количества эритроцитов во вторую и третью недели исследований, у молодняка кур опытной группы на 16,3% (P<0,05) и 18,2% (P<0,01) по сравнению с птицей контрольной группы. Количество гемоглобина у птиц контрольной группы было недостоверно выше, чем у опытной группы на вторую и третью недели исследований. Количество лейкоцитов, тромбоцитов в обеих группах в течение периода исследований не имели достоверных различий (см. табл. 7).

В весенне-летний период на вторую и третью недели исследований, отмечалось снижение количества сегментоядерных псевдоэозинофилов в лейкограмме крови у молодняка кур из опытной группы на 5,5% (P<0,05) и 3,9% (P>0,05) по сравнению с контрольной группой. Другие показатели лейкограммы в течение периода исследований не имели достоверных различий в обеих группах (см. табл. 8).

Таблица 8

Лейкограмма крови молодняка кур в весенний период, (Mm, p)

Клетки крови	Опытная группа	Контрольная группа
Время исследований	1-я неделя	2-я неделя	3-я неделя	1-я неделя	2-я неделя	3-я неделя
1	2	3	4	5	6	7
Базофилы, %	0	0	0	0	0	0
Эозинофилы, %	1,4 0,40	0	4,3 0,62	2,4 0,51	0	5,0 4,20
Миелоциты, %	0	0	0	0	0	0
Юные, %	1,7 0,33	1,00	2,01,0	0	1,3 0,33	1,01,0
Палочкоядерные, %	0	0	0	0	0	0
Сегментоядерные, %	5,0 0,72	3,5 0,67	4,3 1,43	6,3 0,75	9,0* 1,82	8,2* 1,28
Лимфоциты, %	92,3 0,61	91,5 1,15	89,3 2,44	90,9 0,51	87,4 2,21	85,6 1,54
Моноциты, %	1,5 0,29	4,0 0,97	1,4 0,25	2,0 0,58	2,8 0,85	1,3 0,33

Подобная тенденция к снижению количества гемоглобина и эритроцитов в условиях аэростаза отмечена нами в осенний период года. Так, установлено, что количество эритроцитов и гемоглобина было на у птицы выращенной в условиях нормального микроклимата было 19% (P<0,01) и 24,4% (P<0,05) выше чем у птицы из зоны застоя воздуха. Достоверных различий количества лейкоцитов и тромбоцитов в течение всего периода исследований в обеих группах не регистрировалось (см. табл. 9).

Таблица 9

Показатели морфологического состава крови молодняка кур в осенний период, (Mm, p)

Показатели крови	Опытная группа	Контрольная группа
Время исследований	1-я неделя	2-я неделя	3-я неделя	1-я неделя	2-я неделя	3-я неделя
Эритроциты, х1012/л	3,17 0,294

Подобные документы

• Оборудование и системы формирования параметров микроклимата в животноводческих помещениях

  Параметры микроклимата животноводческих помещений. Влияние химического состава и физических свойств воздуха на продуктивность сельскохозяйственных животных. Дифференциальное уравнение воздухообмена. Вентилятор стеновой и клорифер для животноводства.
  
  реферат [3,0 M], добавлен 03.05.2012
  

• Стационар на 10 мест для коров

  3оогигиенические требования к отдельным параметрам микроклимата животноводческих помещений и их влияние на организм животного. Защита животноводческих объектов от инфекционных заболеваний. Нормы потребности воды для животных и на технические нужды.
  
  курсовая работа [1,0 M], добавлен 10.12.2014
  

• Энергосберегающая система воздухообмена животноводческих помещений

  Создание благоприятного микроклимата для здоровья и продуктивности животных с помощью вентиляции. Сущность естественного или искусственного воздухообмена в помещениях. Разновидности и конструкции теплообменных энергосберегающих систем вентиляции.
  
  презентация [1,6 M], добавлен 14.04.2016
  

• Зоогигиеническая оценка коровника на 400 коров

  Влияние микроклимата животноводческих помещений на здоровье и продуктивность животных, факторы, влияющие на него. Методы оценки естественной и искусственной освещенности. Расчет объема вентиляции по диоксиду углерода и по влажности, теплового баланса.
  
  курсовая работа [75,9 K], добавлен 23.01.2014
  

• Зоогигиена с основами проектирования животноводческих объектов

  Свойства солнечной радиации, влияние ее на организм животных. Воздействие ультрафиолетового излучения на глаза. Гигиенические требования к распорядку дня на животноводческих фермах и комплексах. Системы содержания свиней и их зоогигиеническая оценка.
  
  контрольная работа [893,5 K], добавлен 14.12.2010
  

• Зоогигиенические требования для кроликов при проектировании животноводческих объектов

  Влияние отдельных параметров микроклимата на здоровье и продуктивность животных. Гигиенические требования к объемно-планировочным и конструктивным решениям зданий для содержания животных. Ветеринарная защита кролиководческих ферм, меры общей профилактики.
  
  курсовая работа [53,9 K], добавлен 26.10.2015
  

• Воздушная среда и ее гигиеническое значение для животноводства

  Газовый состав воздуха. Влияние температуры на организм животных. Влажность и движение воздуха в животноводческих помещениях. Состав и свойства солнечной радиации. Гигиеническое значение аэроионизации в животноводстве. Микробная загрязненность воздуха.
  
  курсовая работа [76,5 K], добавлен 22.01.2012
  

• Механизация технологических процессов в коровнике на 100 коров

  Характеристика водоснабжения и поения животных в коровнике. Определение показателей микроклимата и освещения животноводческих помещений. Расчет производительности поточно-технологической линии доения коров и обработки молока. Удаление и обработка навоза.
  
  контрольная работа [65,1 K], добавлен 17.01.2013
  

• Содержание кроликов

  Организация кролиководческого хозяйства, обеспечение в животноводческих помещениях оптимального микроклимата в соответствии с санитарными нормами; племенная работа, рациональное кормление кроликов, лечение и профилактика желудочно-кишечных заболеваний.
  
  курсовая работа [706,7 K], добавлен 12.03.2012
  

• Оборудование для поддержания оптимального микроклимата в помещениях для содержания свиней

  Технологически параметры содержания свиней. Технические средства, обеспечивающие экономию энергии при создании микроклимата на свиноводческих фермах. Стенные и потолочные клапаны для равномерного притока воздуха. Камин для подачи воздуха через крышу.
  
  реферат [3,7 M], добавлен 25.06.2015
  

• главная
• рубрики
• по алфавиту
• вернуться в начало страницы
• вернуться к началу текста
• вернуться к подобным работам