Аэростазы животноводческих помещений

2,44

0,232

2,40

0,096

3,29

0,245

2,41

0,274

2,96**

0,138

Гемоглобин, г/л

29,25

2,534

38,0

6,33

28,75

2,477

36,25

4,920

30,75

2,698

38,0*

2,92

Тромбоциты, х109/л

36,63

6,208

53,0

7,0

112,50

15,350

39,0

4,94

49,50

10,250

148,809,039

Лейкоциты,

х109/л

34,50

6,450

35,50

3,157

50,0

6,14

36,0

5,35

34,50

5,754

66,0

7,21

В осенний период года достоверных различий в лейкограмме молодняка кур опытной и контрольной групп не регистрировалось (табл. 10).

Таблица 10

Лейкограмма крови молодняка кур в осенний период, (Mm)

Клетки крови	Опытная группа	Контрольная группа
Время исследований	1-я неделя	2-я неделя	3-я неделя	1-я неделя	2-я неделя	3-я неделя
Базофилы, %	2,00,71	0	0	1,30,25	0	0
Эозинофилы, %	2,4 0,61	0	5,0 1,53	3,6 0,51	0	3,5 1,56
Миелоциты, %	0	1,3 0,33	1,8 0,58	1,4 0,25	2,5 0,29	1,00
Юные, %	1,4 0,25	3,2 0,92	1,8 0,48	1,4 0,25	2,7 0,81	2,6 0,75
Палочкаядерные, %	0	0	0	0	0	0
Сегментоядерные, %	5,3 1,32	8,4 2,29	3,6 0,97	5,9 1,37	6,7 2,18	5,2 1,25
Лимфоциты, %	85,9 1,34	86,1 2,47	88,4 1,95	85,1 2,30	86,3 3,09	87,8 1,92
Моноциты, %	3,9 0,74	4,3 1,02	2,8 1,11	3,7 0,75	2,8 1,25	2,8 1,11

Таким образом, в условиях аэростазов происходило снижение количества эритроцитов в крови, у молодняка кур на 16,3-44,6%, а также снижалось содержание гемоглобина в эритроцитах на 24,4- 42,4% и не было отмечено изменений количества лейкоцитов и тромбоцитов.

6.3 Влияние аэростазов на естественную резистентность организма птицы

Наши исследования, проведенные в птичниках с клеточным содержанием ремонтного молодняка показали, что аэростазы оказывали негативное влияние на естественную резистентность организма ремонтного молодняка кур в разные сезоны года.

Так, в зимний период года было установлено, что у молодняка кур, находящегося в зоне локального аэростаза, во вторую и третью недели исследований происходило снижение: бактерицидной активности сыворотки крови на 19,2% (P<0,01) и 18,6% (P<0,05); фагоцитарной активности псевдоэозинофилов на 10,6% (P<0,05) и 14,0% (P<0,01); фагоцитарного индекса на 1,2 (P<0,01) и 0,5 (P<0,01); фагоцитарного числа на 1,7 (P<0,05) и 0,2 (P>0,05) по сравнению с контролем.

Также отмечалось снижение лизоцимной активности сыворотки крови во вторую и третью недели исследований на 0,5% (P<0,05) и 0,7% (P<0,05) у молодняка кур, находящегося в зоне аэростаза. Уровень сиаловых кислот в течение периода исследований не имел достоверных различий в обеих группах (Р>0,05).

Таблица 11

Показатели естественной резистентности молодняка кур в зимний период года, (Mm, p)

Показатели крови	Опытная группа	Контрольная группа
Время исследований	1-я неделя	2-я неделя	3-я неделя	1-я неделя	2-я неделя	3-я неделя
Бактерицидная активность, %	51,79 6,028	56,0 3,54	56,0 5,44	51,14 6,974	75,21** 4,320	74,57* 4,310
Лизоцимная активность, %	4,43 0,297	2,36 0,143	2,79 0,214	4,79 0,214	2,86* 0,092	3,44* 0,186
Фагоцитарная активность, %	42,0 4,93	33,71 3,068	39,71 2,561	46,0 2,88	44,29* 2,775	53,71** 3,006
Фагоцитарный индекс	1,72 0,226	1,65 0,201	1,15 0,105	1,93 0,244	2,83** 0,171	1,64** 0,078
Фагоцитарное число	4,14 0,432	4,86 0,427	2,93 0,234	4,16 0,383	6,51* 0,466	3,09 0,168
Сиаловые кислоты, ед. опт. плот.	40,0 5,35	91,25 9,907	67,86 4,738	38,57 6,335	79,30 11,770	76,43 9,175

Динамику показателей естественной резистентности молодняка кур опытной и контрольных групп в течение зимнего периода исследований, можно увидеть на представленных диаграммах (рис. 2-4).



В теплый период года (весна-лето) нами отмечена похожая тенденция снижения показателей естественной резистентности организма. Так, в весенний период года во вторую и третью недели исследований, у молодняка кур опытной группы происходило снижение бактерицидной активности сыворотки крови на 15,6% (P<0,01) и 21,4% (P<0,05) и лизоцимной активности сыворотки крови на 1,0% (P<0,05) и 0,7% (P<0,05), по сравнению контролем. На третьей неделе исследований у молодняка кур опытной группы отмечалось снижение фагоцитарной активности псевдоэозинофилов на 13,9% (P<0,01) и фагоцитарного индекса на 1,0 (P<0,01) по сравнению с контролем (табл. 12.).

Таблица 12

Показатели естественной резистентности молодняка кур в весенний период года, (Mm, p)

Показатели крови	Опытная группа	Контрольная группа
Время исследований	1-я неделя	2-я неделя	3-я неделя	1-я неделя	2-я неделя	3-я неделя
1	2	3	4	5	6	7
Бактерицидная активность, %	52,11 2,554	54,63 3,465	47,14 6,061	49,31 5,754	70,23**2,796	68,57* 3,401
Лизоцимная активность, %	4,43 0,202	1,19 0,124	4,14 0,210	4,04 0,081	2,14* 0,322	4,86* 0,210
Фагоцитарная активность, %	24,76 2,348	31,67 3,363	27,71 2,020	24,29 1,107	39,33 4,185	41,60** 2,638
Фагоцитарный индекс	1,12 1,068	1,24 0,161	1,36 0,103	1,23 0,097	1,86 0,263	2,26** 0,231
Фагоцитарное число	4,64 0,369	3,94 0,295	4,94 0,333	5,07 0,332	4,64 0,174	5,40 0,302
Сиаловые кислоты, ед. опт. плот.	75,0 16,51	56,79 6,285	65,0 8,66	67,86 12,530	59,93 7,552	72,86 5,467

Динамику основных показателей естественной резистентности молодняка кур опытной и контрольных групп в течение весеннего периода исследований, можно увидеть на представленных диаграммах (рис. 5-7).



В осенний период года у молодняка кур, находящегося в зоне застоя (аэростаза), также отмечалось снижение уровня естественной резистентности организма (табл. 13).

Таблица 13

Показатели естественной резистентности молодняка кур в осенний период года, (Mm, p)

Показатели крови	Опытная группа	Контрольная группа
Время исследований	1-я неделя	2-я неделя	3-я неделя	1-я неделя	2-я неделя	3-я неделя
Бактерицидная активность, %	64,06 4,380	37,59 3,514	56,89 4,797	65,63 4,575	56,32* 6, 942	79,66** 3,334
Лизоцимная активность, %	1,69 0,283	1,63 0,183	2,13 0,206	2,0 0,38	3,13** 0,398	3,19** 0,210
Фагоцитарная активность, %	37,71 2,286	35,71 1,017	32,00 2,582	35,43 3,228	43,14** 1,438	42,29** 2,157
Фагоцитарный индекс	1,69 0,172	1,22 0,041	1,03 0,083	1,73 0,198	1,70** 0,088	1,78** 0,200
Фагоцитарное число	4,45 0,250	3,44 0,137	3,08 0,228	4,85 0,240	3,97 0,226	4,26* 0,457
Сиаловые кислоты, ед. опт. плот.	50,16 3,029	56,41 2,667	55,19 2,341	45,63 2,266	51,28 2,332	56,06 5,527

Из данных таблицы следует, что у молодняка кур, находящегося в условиях аэростаза во вторую и третью недели исследований происходило снижение: бактерицидной активности сыворотки крови на 18,7%(P<0,05) и 22,7% (P<0,01); фагоцитарной активности псевдоэозинофилов на 7,4% (P<0,01) и 10,3% (P<0,01); фагоцитарного индекса на 0,5 (P<0,01) и 0,8 (P<0,01); фагоцитарного числа на 0,5 (P<0,05) и 1,2 (P<0,05) по сравнению с птицей, находящейся в условиях нормального микроклимата.

Также отмечалось снижение лизоцимной активности сыворотки крови во вторую и третью недели исследований на 1,5% (P<0,01) и 1,1% (P<0,01) у молодняка кур опытной группы по сравнению с контролем. Достоверного изменения уровня сиаловых кислот в течение периода исследований в обеих исследуемых группах не наблюдалось.

Динамику основных показателей естественной резистентности молодняка кур опытной и контрольных групп в течение осеннего периода исследований, можно увидеть на представленных диаграммах (рис. 8-10).



Выводы: В условиях аэростазов происходило снижение бактерицидной и лизоцимной активности сыворотки крови молодняка кур на 12,5-22,7% и 0,5-1,5% соответственно, а также снижалась фагоцитарную активность лейкоцитов (псевдоэозинофилов) на 7,3-14,0%. Однако содержание сиаловых кислот не претерпевало изменений.

6.4 Влияние аэростазов на морфологию внутренних органов молодняка кур

В результате патоморфологических и гистологических исследований органов иммунной системы (фабрициева бурса, селезенка и слепокишечные миндалины), легких, а также гистохимических исследований печени и почек цыплят, выращенных в условиях аэростаза (опытная группа) или в участке с нормативным микроклиматом (контрольная группа), установлено, что аэростазы оказывают определенное влияние на морфологию внутренних органов птицы.

Так, у цыплят, выращенных в условиях аэростаза, отмечалось уменьшение плотности расположения диффузной лимфоидной ткани в прослойках рыхлой соединительной ткани парабронхиальных комплексов легких, по сравнению с птицей, выращенной в условиях нормального микроклимата. Это может быть связано либо с ослаблением процессов пролиферации лимфоцитов, либо с гибелью Т- и В-лимфоцитов, участвующих в развитии иммунных реакций по уничтожению антигенов, которые в большом количестве поступают в дыхательные пути молодняка кур, выращенного в условиях аэростаза.

Влияние аэростазного микроклимата на морфологию фабрициевой бурсы - центрального органа иммунной системы отразилось на некотором уменьшении размеров корковой зоны лимфоидных узелков органа, по сравнению с контролем. Возможно, это является свидетельством более ранней возрастной регрессии органа центральной иммунной системы, которая по данным С.Б. Селезнева (1987) и др., наступает у птиц яичного направления в условиях гиподинамии (при клеточном содержании) к моменту полового созревания, т.е. после 130-140 дней.

При изучении влияния аэростаза на периферические органы иммуной системы птиц (селезенку и слепокишечные миндалины) мы обратили внимание на величину и количество лимфоидных узелков, присутствующих в поле зрения микроскопа на гистологических срезах исследуемых органов. По данным ряда авторов (G. Thorbecke, S.P. Lerman, 1976; O. Vianio, A. Toivanen, 1977; T. Romppanen, 1981; R. Nienwenhius, D. Opstelten, 1984, И.М. Луппова, 1998), наличие лимфоидных узелков является свидетельством морфо - функциональной зрелости органов иммунной системы. Это связано с тем, что в лимфоидных узелках периферических органов иммунитета происходит вторичная антиген - зависимая дифференцировка В-лимфоцитов, после чего они трансформируются в плазмоциты, которые участвуют в синтезе антител, нейтрализующих антигены.

При этом установлено, что в селезенке, которая в организме является многофункциональным органом, в том числе и биологическим фильтром протекающей по организму крови, у птиц обеих групп к 120 - дневному возрасту количество и размеры лимфоидных узелков были примерно одинаковыми. В собственном слое слизистой оболочки слепокишечных миндалин у птицы, выращенной в условиях аэростаза, по сравнению с контрольными животными, размеры и количество лимфоидных узелков, т.е. площадь, приходящаяся на узелковую лимфоидную ткань, была значительно большей. Это, очевидно, связано с более интенсивно протекающими в исследуемом органе реакциями иммунитета по нейтрализации антигенов, в большем количестве попадающих в организм птиц, выращиваемых в условиях аэростазного микроклимата.

В цитоплазме гепатоцитов печени цыплят, выращенных в аэростазной зоне, отмечается незначительное уменьшение количества гликогена, по сравнению с птицей, содержащейся в условиях нормативного микроклимата. В почках присутствие зерен гликогена в клетках эпителия, формирующих почечные канальцы, а также в прослойках рыхлой соединительной ткани, расположенных между канальцами нефронов, было примерно одинаковым у птиц обеих групп. Таким образом, в результате проведенных гистохимических исследований установлено, что у цыплят, находившихся в условиях аэростаза, по сравнению с контролем, происходят незначительные изменения в содержании гликогена в печени в связи с необходимостью регуляции разных уровней обменных процессов в организме.

Таким образом, локальные аэростазы микроклимата оказывали определенное влияние на морфологию внутренних органов ремонтного молодняка кур, что проявлялось уменьшением плотности расположения диффузной лимфоидной ткани в прослойках рыхлой соединительной ткани парабронхиальных комплексов легких, некоторым уменьшением размеров корковой зоны лимфоидных узелков в фабрициевой бурсе, увеличением размеров и количества лимфоидных узелков в слепокишечных миндалинах, а также незначительным уменьшением содержания запасов гликогена в печени, по сравнению с молодняком кур, выращенным в условиях нормального микроклимата т.е. аэростазы оказывали иммуннодепрессивное действие на центральный орган иммунной системы - фабрициеву бурсу и на состояние лимфоидной ткани в легких молодняка кур.

6.5 Влияние локальных аэростазов на продуктивность молодняка кур

Исследования динамики среднесуточных приростов в разные сезоны года в опытных и контрольных группах показали, что локальные зоны застоя в птичниках снижают среднесуточные приросты молодняка кур (табл. 14).

Таблица 14

Динамика среднесуточных приростов живой массы у молодняка кур, (Mm, p)

Динамика среднесуточных приростов у птиц в зимний период
Исследуемые группы	Живая масса в начале исследований, г	Живая масса в конце исследований, г	Среднесуточные приросты, г
Опытная	114060,9	139626,7	12,2
Контрольная	110541,1	1509**10,0	19,2**
Исследуемые группы	Живая масса в начале исследований, г	Живая масса в конце исследований, г	Среднесуточные приросты, г
Опытная	97130,6	111338,0	6,7
Контрольная	96217,9	1215*20,0	12,0*
Динамика среднесуточных приростов у птиц в осенний период
Исследуемые группы	Живая масса в начале исследований, г	Живая масса в конце исследований, г	Среднесуточные приросты, г
Опытная	78716,1	102511,3	11,3
Контрольная	75918,2	1092**15,6	15,9**

Так, если в зимний период в начале проведения исследований средняя живая масса молодняка кур в опытной группе была 114060,9 г, а в контрольной группе 110541,1 г и не было достоверных различий между исследуемыми группами, то к концу исследования живая масса в обеих исследуемых группах уже достоверно отличалась и была в опытной группе 139626,7 г; а в контрольной группе 150910,0 г, что на 113 г выше, чем в опытной. В течение периода исследований среднесуточные приросты молодняка кур составляли, в зоне аэростаза - 12,2 г, а в участке с нормальным микроклиматом - 19,2 г, что на 7 г или 36,5% (P<0,01) выше, чем в опытной группе (см. табл. 14). В переходные периоды года к концу проведения исследований, также отмечались достоверные различия в среднесуточных приростах массы тела у молодняк кур опытных и контрольных групп (см. табл. 14). Так, в весенне-летний период года средняя живая масса молодняка кур обеих групп в начале исследований достоверно не отличалась и была 97130,7 г в опытной группе и 96217,9 в контрольной группе. Однако, к концу проведения исследований живая масса молодняка кур была в опытной группе 111338,0, а в контрольной 121520,0, что на 102 г выше, чем в опытной. Среднесуточные приросты живой массы кур обеих групп в течение всего периода исследований составляли у молодняка кур опытной группы 6,7 г в сутки, а контрольной 12 г, что на 5,3 г или на 44% (P<0,05) больше, чем в подопытной.

В осенний период средняя живая масса цыплят изменялась от 78716,1 г - в начале, до 102511,3 г - в конце исследований (опытная группа) и от 75918,2 г - в начале до 109215,6 г - в конце исследований (контрольная группа). Таким образом, средняя живая масса молодняка кур контрольной группы к концу исследований была на 67 г выше, чем у птиц опытной группы. Среднесуточные приросты живой массы птиц были в опытной группе- 11,3 г, а в контрольной- 15,9 г, что на 4,6 г или на 28,5% (P<0,01) выше, чем в опытной группе.

Динамику среднесуточных приростов массы тела птиц в течение зимнего, переходных периодов можно увидеть на представленных диаграммах (рис. 11-13).



Таким образом, исходя из вышеизложенного, следует, что локальные аэростазы в птичниках с клеточным содержанием во все сезоны года, снижали среднесуточные приросты живой массы тела, у ремонтного молодняка кур несушек на 4,6-7,0 г или 28,5-36,5 %.

6.6 Влияние аэростазов на некоторые биохимические показатели крови у птиц

Для изучения влияния аэростазов на некоторые биохимические показатели крови были проведены исследования воздухараспределения в одном из птичников Городокской птицефабрики (отделение Хайсы).

Одними из основных задач исследований были: изучить равномерность распределения приточного воздуха, а также изучение влияния различных микроклиматических условий на иммунитет, заболеваемость и продуктивность ремонтного молодняка кур.

Исследования проводили в 2-ух зальном птичнике, размером 18 х 30 м каждый. Содержание птицы в клеточных батареях типа КБУ-3, плотность посадки цыплят 10-12 голов в клетке, численность птицы на момент посадки 27500 голов. Исследования проводились в зимний период года декабрь - февраль месяц.

При изучении равномерности распределения было установлен, что вследствие неисправности приточного вентилятора в 1-ом зале птичника в середине помещения возникал локальный аэростаз (см. рис. 14).

Рис. 14 Внутренняя аэрорумбограмма птичника

1 - приточные шахты, 2 - приточный воздуховод, 3 - клеточная батарея, 4 - опорные колонны, 5 - зоны локальных аэростазов, 6 - вытяжные вентиляторы.

63

Таблица № 15

Параметры микроклимата в птичнике в зимний период

Показатели микроклимата	Начало исследований	Середина исследований	Конец исследований
	1 зал	2 зал	1 зал	2 зал	1 зал	2 зал
Температура, 0С	С	10,0-17,5 13,75	12,0-19,5 15,75	14,5-17,0 15,75	15,5-18,0 16,75	14-18 16	14-18 16
	Т	10,5-16,5 13,5	12,0-18,5 15,25	15,0-17,5 16,25	15,0-18,5 16,75	15-17,5 16,25	15-17,5 16,25
Относительная влажность, %	С	54-70 62	59-68 63,5	68-78 73	72-81 76,5	58-72 65	68-72 70
	Т	54-81 67,5	64-68 66	73-80 76,5	70-85 77,5	69-78 73,5	64-77 70,5
Скорость движения воздуха, м/с	С	0,14-0,28 0,21	0,11-0,45 0,28	0,25-1,3 0,775	0,1-0,36 0,23	0,36-0,87 0,615	0,1-0,18 0,145
	Т	0,14-0,18 0,16	0,09-0,25 0,17	0,16-0,28 0,22	0,1-0,17 0,14	0,1-0,28 0,19	0,14-0,2 0,17
Аммиак, мг/м3	С	3,0-7,5 5,25	2,5-7,0 4,75	4-15 9,5	3-12 7,5	5-10 7,5	6-12 9
	Т	3,0-7,5 5,25	3-10 6,5	5-16 10,5	6-15 10,5	5-12 8,5	3-10 6,5
Углекислый газ, %	С	0,05-0,2 0,125	0,05-0,15 0,1	0,1-0,2 0,15	0,1-0,15 0,125	0,05-0,2 0,125	0,05-0,15 0,1
	Т	0,15-0,2 0,175	0,1-0,15 0,125	0,15-0,2 0,175	0,1-0,15 0,125	0,15-0,2 0,175	0,1-0,15 0,125
Микробная контаминация, тыс./м3	С	114-164 139	102-3526 1814	126-512 319	116-400 258	236,88-630 433,44	110,88-480 295,44
	Т	170-4410 2290	32-478 255	220-1890 110,95	240-1134 120,57	241,92-480 360,96	100,8-520 310,4

Примечание: здесь и далее С - середина помещения, Т - торцевые части помещения.

Снижение подачи воздуха в помещение способствовало постепенному накоплению большого количества микроорганизмов в помещении (см. таб.15).

Было установлено, что различия в колебаниях температуры в обеих исследуемых залах в течение периода выращивания цыплят были незначительными. Так, в 1-ом зале температура изменялась в пределах 10-18 0С, а во втором в пределах 12-19,5 0С. Относительная влажность в течение периода исследований в обеих залах была примерно одинаковой и изменялась в 1-ом зале в пределах 54-81%, а во 2-ом в пределах 59-85%. Концентрации аммиака в 1-ом и 2-ом зале изменялась в пределах 1-16 мг/м3 и 2,5-15 мг/м3 соответственно. Содержание углекислого газа колебалось в пределах 0,05-0,2% в 1-ом зале и 0,05-0,15% во 2-ом зале. Колебания общей микробной контаминации воздуха в 1-ом зале составляли 114-4410 тыс./м3, а во 2-ом 32-3526 тыс./м3.

Основной микробный фон воздуха в птичнике составляли микроорганизмы родов staphylococcus и salmonella.

Для изучения влияния общей микробной обсемененности на обмен веществ, иммунитет и продуктивность цыплят были изучены следующие биохимические и иммунологические показатели крови: содержание кальция и фосфора; глюкозы, общих липидов, холестерина, общего белка и белковых фракций; бактерицидная и лизоцимная активность сыворотки крови, фагоцитарная активность нейтрофилов. Исследования крови цыплят проводили в 50, 70, 93 и 119-ти дневном возрасте. Также изучались среднесуточные приросты за период выращивания птицы (120 дней). Для проведения исследований были сформированы две группы аналогов ремонтного молодняка кур по 200 голов в каждой группе в 1-ом и 2-ом залах птичника.

Данные исследований крови представлены в таблице 16.

Таблица 16

Некоторые биохимические и иммунологические показатели крови цыплят, выращенных в различных микроклиматических условиях

Показатели крови	Возраст птицы, дней
	50	70	93	119
	1 зал	2 зал	1 зал	2 зал	1 зал	2 зал	1 зал	2 зал
1	2	3	4	5	6	7	8	9
БАСК, %	51,02 12,06	66,88 7,740	82,05 8,100	78,13 33,560	67,29 2,656	59,52 8,570	77,94 3,892	72,54 1,471
ЛАСК, %	3,92 0,417	3,42 0,201	1,80 0,149	1,64 0,179	8,4 0,400	11,15* 0,827	6,17 0,250	7,0*0
ОБ, г/л	32,5 1,306	44,73 3,318	40,74 2,601	41,86 2,91	54,55 1,792	57,35 1,870	58,85 2,354	49,69 2,798
Ig, г/л	6,76 1,143	11,66 2,130	10,10 1,117	9,37 2,314	13,78 1,536	13,65 1,930	26,04 2,790	19,8 2,037
ГЛ, г/л	12,48 1,034	14,27 0,696	10,04 0,266	10,31 0,37	11,80 0,363	9,12*** 0,498	10,9 0,378	10,66 0,349
ОЛ, г/л	4,91 0,160	5,81 0,385	6,3 0,318	6,27 0,306	4,86 0,337	6,09* 0,357	6,6 0,214	5,69 0,368
ХЛ, ммоль/л	3,79 0,412	3,31 0,370	4,45 0,425	4,17 0,244	3,38 0,586	3,08 0,262	3,71 0,130	5,53* 0,560
Ca, ммоль/л	2,73 0,365	2,59 0,370	2,24 0,174	2,30 0,412	2,51 0,294	3,54* 0,348	2,73 0,145	3,23* 0,158
Р, моль/л	1,78 0,271	1,42 0,163	2,41 0,292	3,09 0,594	2,63 0,279	4,37** 0,431	1,72 0,122	2,14* 0,138

Примечание: БАСК и ЛАСК - бактерицидная и лизоцимная активности сыворотки крови; ОБ - общий белок; Ig- гаммаглобулины; ГЛ- глюкоза; ОЛ- общие липиды; ХЛ - холестерин; Ca -кальций; Р - фосфор.

Анализируя данные исследований следует отметить, что к концу периода выращивания у птиц из 1-го зала отмечалось достоверное снижение количества кальция, неорганического фосфора, холестерина и общих липидов в крови на 15,5%, 19,6%, 33% и 20% соответственно, по сравнению со 2-ым залом. Также происходило достоверное увеличение количества глюкозы на 22,7% в 1-ом зале по сравнению со 2-ым. В конце периода выращивания у птицы из 1-го зала отмечалось достоверное снижение лизоцимной активности сыворотки крови на 2,8%, по сравнению со 2-ым залом. Среднесуточные приросты живой массы птицы в 1-ом зале были 8 г, а во 2-ом 8,6 г. Живая масса птицы в исследуемых группах к 121 дню выращивания составляла 965 г в 1-ом зале и 1037 г во 2-ом, что на 72 г выше, чем в 1-ом зале. Сохранность птицы в 1-ом зале составила 90,7%, а во 2-ом 92,2%.

Таким образом, исходя из выше изложенного следует, что в условиях повышенной микробной контаминации воздуха у птицы развивается состояние стресса, следствием которого являются изменение отдельных биохимических показателей крови, снижение иммунной реактивности и продуктивности. Кроме того, как показали исследования у птицы, выращенной в таких условиях отмечается повышенная выбраковка от заболеваний вызванных условно-патогенной и патогенной микрофлорой (колисептицемия и стафилококковый дерматит).

7. Способы обнаружения и ликвидации локальных зон застоя воздуха (аэростазов) в животноводческих помещениях

Основным способом обнаружения застойных участков в помещении является составление и запись внутренней аэрорумбограммы т.е. графической записи направлений движения воздушных масс внутри

помещения. Составляется она при помощи оригинального прибора бифлюгера конструкции Г.А. Соколова (рис. 2) или при помощи дымаря обыкновенного широко используемого в пчеловодстве.

Последний метод имеет некоторые недостатки, так при большой скорости движения воздуха в помещении движение дыма искажает истинное направление воздуха из-за различной удельной массы дыма и воздуха. Поэтому, для наиболее точного определения движения потоков воздуха в помещении, следует пользоваться бифлюгером.

Рис. 15 Бифлюгер

Два полукруга вращения крестовины

Ось вращения крестовины

Противовес

Промежуточное кольцо

Ось вращения промежу- точного кольца

Кольцо для подвешивания

Кольцо - корпус

Подставка

Подвижная муфта для ре- гулирования - уравновешивания крестовины

Работает бифлюгер следующим образом: расположение осей вращения крестовины под углом 900 друг к другу дает возможность последней занимать абсолютно безразличное положение в пространстве без движения воздуха, а при потоке воздуха (сбоку, снизу, сверху и т.д.) последняя способна поворачиваться своим противовесом - указателем в том направлении откуда идет поток воздуха со скоростью от 0,15 до 10 м/с. Прибор устанавливается или подвешивается в нужном для вас месте, в течении 3-10 секунд крестовина поворачивается своим противовесом - указателем в ту сторону откуда движется поток поступающего воздуха. По направлению противовеса - указателя определяют направление движения воздушного потока в данной точке, что отмечается стрелкой на чертеже. Такие измерения проводят в различных точках помещения, на основании которых составляется план вертикальных и горизонтальных воздушных потоков, то есть внутренние аэрорумбограммы помещения.

Причем для определения аэростазных участков со скоростью движения воздуха более 0,15 м/с помимо бифлюгера можно пользоваться крыльчатым анемометром. Если скорость движения воздуха в исследуемых участках помещения менее 0,15 м/с, то следует вначале провести задымление при помощи дымаря, а затем в местах застоя струй дыма необходимо проводить измерения кататермометрами, т.е. гигиеническими приборами, которые служат для определения скорости движения воздуха в помещении. К этим приборам относят шаровой и цилиндрический кататермометры. Так, при исследовании кататермометром скорости движения воздуха в различных участках птичника, при обнаружении участков со скоростью движения менее или 0,1 м/с - последние следует считать зонами застоя воздуха (аэростазами).

8. Способы ликвидация аэростазов в птичниках

Одним из основных способов ликвидации зон застоя воздуха в птицеводческих помещениях является организация правильного и равномерного распределения свежего приточного воздуха. Этого можно достигнуть путем установления дополнительных приточных устройств с механическим побуждением движения воздуха (центробежные вентиляторы) и воздуховодов в помещении. Последние, как правило, располагают продольно между крайними пристеночными рядами клеточных батарей. Таким образом, достигается равномерное поступление воздуха в клеточные батареи с птицей (рис. 16). На представленном рисунке видно, что после установки дополнительных приточных устройств с механическим побуждением движения воздуха, воздухораспределение в изучаемом помещении происходит равномерно. То есть, струя с приточным воздухом достигает крайних пристеночных рядов клеточных батарей.

Поскольку установка дополнительных воздуховодов является довольно трудоемким процессом, требующим дополнительных финансовых и материальных расходов, то, по данным ряда авторов (В.И. Мозжерин, Е.П. Дементьев, Ф.А. Каримов, С.Г. Каримова, 1974; С.И. Плященко, В.Т. Сидоров, 1979; А.Д. Белов, И.М. Беляков, В.А. Лукьяновский, 1983; С.С. Абрамов, 1989; М.И. Закревский, А.Н. Карташова, 1993; Н.С. Хренов, 1993; А.В. Фролов, 1997; А.А. Кузнецов, 1998; В.А. Васяев, 1998; С.Н. Миносян, 1998; А.В. Коробов, 2002 и др.) для быстрого и временного улучшения микроклимата, можно успешно пользоваться различными методами: искусственное ультрафиолетовое излучение, аэроионизация, использование различных аэрозолей, т.е. такими, которые обеспечивают улучшение не только параметров микроклимата, но и повышают естественную резистентность организма.



Рис. 16. Правильная внутренняя аэрорумбограмма (воздухораспределение) после установки дополнительных воздуховодов.

1- приточные шахты, 2- приточный воздуховод, 3- клеточные батареи, 4- опорные колонны, 5- вытяжные вентиляторы, 6- дополнительные приточные воздуховоды

Так, нами проведены опыты по улучшению микроклимата птичников под влиянием искусственной аэроионизации на ремонтный молодняк и взрослое поголовье кур-несушек породы «Канадский леггорн СК-288», линии С. Для проведения исследований в птичниках формировались опытные группы птицы по 150 голов. Кормление, уход и содержание птицы было одинаковым и соответствовало зоотехническим нормативам. Различие заключалось лишь в том, что воздух в месте нахождения опытной группы искусственно ионизировался при помощи аэроионизатора системы ВИЭСХ.

Аэроионизацию проводили ежедневно на уровне 40 см от пола по одному часу 4 раза в день в период кормления в течение 2,5 месяцев. Контроль количества аэроионов воздухе проводился ежемесячно при помощи счетчика ионов САГ-2М.

Концентрация отрицательных лёгких ионов в зоне расположения птицы была в пределах от 48 до 49 тыс./см3 воздуха.. В зоне аэроионизации микроклимат существенно отличался от такового без неё. Так, температура воздуха в зоне аэроионизации была в среднем 15,9 0С, а в контроле, где аэроионизацию не проводили 11,2 0С; влажность 65,6 %, а в контроле 83,9 %; скорость движения воздуха 0,106 м/с, а в контроле 0,063 м/с, концентрация аммиака 0,0033 мг/л, а в контроле 0,05 мг/л; углекислого газа 0,2 %, а в контроле 0,6 %. Снижалась также и бактериальная обсемененность в участках аэроионизации на 31,5 % по сравнению с контрольными участками.

Искусственная аэроионизация оказала положительное влияние на продуктивность птицы: живая масса цыплят, подвергнутых ионизации к концу опыта была выше на 23,2 % по сравнению с контролем. При этом курочек опытной группы наблюдалась более ранняя яйценоскость. Яценоскость кур-несушек повысилась на 15,3 %.

Таким образом, искусственная аэроионизация легкими отрицательными ионами способствует улучшению качества микроклимата в птичниках, увеличению приростов живой массы и яценоскости кур-несушек.

Также, для временного улучшения параметров микроклимата в участках локальных аэростазов, нами предложен метод санации застойных зон воздуха универсальным дезинфицирующим средством Virkon S.

Препарат представляет собой сбалансированную стабилизированную смесь пероксидных соединений, поверхностно - активных форм органических кислот и неорганической буферной системы. Главным составляющим компонентом препарата (до 50%) является калия пероксисульфат. Данный препарат обладает широким спектром антибактериального и антивирусного действия и широко используется для дезинфекции хирургического оборудования и животноводческих помещений в присутствии животных, также применяется для предотвращения различных инфекционных заболеваний (сальмонеллез, колибактериоз, болезнь Марека, болезнь Гамборо и др.), снижает падеж, предотвращает снижение яйценоскости и повышает среднесуточные приросты массы тела при многократном применении препарата. Для аэрозольной дезинфекции помещения в присутствии птицы препарат применяется в виде 0,5-1% раствора, расход препарата 1 литр на 100 м3.

Дезинфекции препаратом Virkon проводились в присутствии птицы (поголовье 3900 голов молодняка кур 59 и 102 - дневного возраста) в участках застоя воздуха (аэростазах) при помощи струйного аэрозольного генератора типа САГ - 1, препарат употреблялся в виде 1% раствора, из расчета 1 литр на 100 м3 воздуха, распыление препарата происходило в течение 30 минут. Перед применением препарат смешивали со стабилизатором (глицерин) из расчета 10% стабилизатора к общему объему раствора. До и после дезинфекции проводились исследования следующих показателей микроклимата: температура, относительная влажность, скорость движения воздуха, общая микробная обсемененность воздуха, концентрации аммиака и углекислого газа. В одном из птичников было проведено исследование гуморальных факторов естественной резистентности у птиц из зоны застоя и у птиц из участка нормативного микроклимата, результаты исследований представлены в таблицах 17-18.

Таблица 17

Показатели микроклимата до и после проведения аэрозольной дезинфекции

Параметры микроклимата	До дезинфекции в зоне аэростаза	После дезинфекции в зоне аэростаза (3 часа)
Ярусы клеточной батареи	верхний ярус	средний ярус	верхний ярус	средний ярус
Температура, ОС	25,5	23	24	24,5
Относительная влажность, %	81	83	75	76
Аммиак, мг/м3	12	10	9	7
Углекислый газ, %	0,3	0,25	0,2	0,2
Скорость движения воздуха, м/с	0,04	0,08	0,09	0,14
Микробная обсемененность, тыс./м3	89,9	98,8	47,6	77,9

Из данных таблицы 17 следует, что через три часа после проведения аэрозольной дезинфекции в участке застоя воздуха происходили снижения аммиака с 12 до 9 мг/м3 и углекислого газа в 1,25 и 1,5 раза; отмечалось некоторое увеличение скорости движения воздуха на 0,05-0,06 м/с, что свидетельствует о лучшей циркуляции воздушных масс в исследуемом участке по сравнению с исходным состоянием до проведения дезинфекции. Исследования общей микробной обсемененности седиментационным методом показали, что в зонах застоя воздуха (аэростазах) происходило снижение общей микробной обсемененности тыс. микробных тел в м3 воздуха через 3 часа (с 89,9 до 47,6 тыс./м3) в 1,88 раза, через 6 часов (с 89,9 до 45,4 тыс./м3) в 2 раза и через 12 часов (с 89,9 до 28,1 тыс./м3) в 3,2 раза.

Исследования микроклимата в другом птичнике, показали, что после проведения аэрозольной дезинфекции также происходило улучшение показателей микроклимата в аэростазных зонах (табл. 18).

Таблица 18

Показатели микроклимата до и после проведения дезинфекции

Параметры микроклимата	До дезинфекции в зоне аэростаза	После дезинфекции в зоне аэростаза (3 часа)
Ярусы клеточной батареи	верхний ярус	средний ярус	Верхний ярус	средний ярус
Температура, ОС	22,0	21,5	24	24
Относительная влажность, %	74	74	67	71
Аммиак, мг/м3	12	10	9	7
Углекислый газ, %	0,35	0,25	0,2	0,2
Скорость движения воздуха, м/с	0,05	0,16	0,12	0,2
Микробная обсемененность, тыс./м3	40,3	66,2	22,4	37,3

Так, после проведения дезинфекции препаратом Virkon в участках аэростазов, происходило улучшение, санитарных показателей качества микроклимата (аммиака и углекислого газа), т.е. отмечалось снижение аммиака на 3 мг/м3 и углекислого газа в 1,25 и 1,75 раза в воздухе аэростазных участков. Также происходило некоторое увеличение скорости движения воздуха на 0,4-0,7 м/с, что свидетельствует о лучшей циркуляции воздуха в исследуемом участке (см. табл. 18).

Исследованиями общей микробной обсемененности воздуха седиментационым методом установлено, что после проведения аэрозольной дезинфекции в участке аэростаза происходило снижение общей микробной обсемененности воздуха тыс. микробных тел в м3, через три часа в 1,8 раза (с 40,3 до 22,4 тыс./м3); через 6 часов в 1,2 раза (с 40,3 до 34,7 тыс./м3) и через 12 часов в 1,1 раз (с 40,3 до 37,9 тыс./м3).

В одном из птичников были проведены исследования некоторых показателей естественной резистентности организма (бактерицидной, лизоцимной активности сыворотки крови и сиаловых кислот). Было установлено, что применение аэрозольной дезинфекции препаратом Virkon способствует восстановлению уровня естественной резистентности у молодняка кур.

Из данных таблицы следует, что уровень показателей естественной резистентности: бактерицидной и лизоцимной активности сыворотки крови у молодняка кур из зоны застоя воздуха до проведения дезинфекции составлял 28,2%5,82 и 1,7%0,17 соответственно и был достоверно ниже на 17,3% (Р<0,05) - бактерицидная активность и 1,0% (Р<0,01) - лизоцимная активность, чем у молодняка кур, находящегося в участках нормативного микроклимата. Через сутки после проведения аэрозольной дезинфекции препаратом Virkon S в участках застоя воздуха уровень этих же показателей составлял уже 58,4%6,54 - бактерицидная активность и 2,2%0,33 - лизоцимная активность. В участках с нормальным микроклиматом он был 59,3%7,40 - бактерицидная активность и 2,3%0,11 - лизоцимная активность, т.е. данные показатели достоверно не отличались в обоих исследуемых участках, что свидетельствует о том, что данный препарат восстанавливает уровень естественных гуморальных защитных сил организма. Исследуемый уровень сиаловых кислот в сыворотке крови молодняка кур после проведения дезинфекции в зоне застоя не имел достоверных различий с птицей из участков нормального микроклимата, что свидетельствует о низкой токсичности препарата.

Таблица 19

Показатели гуморальной естественной резистентности птиц

Показатели крови	Опытная группа	Контрольная группа
Время исследований	До дезинфекции	после дезинфекции	до дезинфек ции	после дезинфекции
БАСК, %	28,25,82	58,46,54	45,5*3,80	59,37,40
ЛАСК, %	1,70,17	2,20,33	2,7**0,21	2,30,11
Сиаловые кислоты, ед. опт. Плотности	42,0 3,32	63,8 4,16	45,8 6,25	50,0 6,58

Примечание здесь и далее: БАСК - бактерицидная активность сыворотки крови; ЛАСК - лизоцимная активность сыворотки крови.

В течение месяца до проведения дезинфекции в 2-х исследуемых птичниках в аэростазных участках отмечались единичные случаи падежа цыплят от гепатита, перитонита, алиментарной дистрофии и массовые расклевы. Так, в течение месяца от внутренних незаразных заболеваний в основном от массового расклева пало 1078 голов, что составляло около 60% от всей павшей птицы по причине расклева и др. незаразных заболеваний в исследуемых птичниках. После проведения четырехкратных аэрозольных дезинфекций в аэростазных участках исследуемых птичников полностью прекратились падеж и выбраковка птиц от расклева и других незаразных заболеваний.

8.1 Использование препарата Virkon S для улучшения микроклимата в помещениях для напольного содержания цыплят-бройлеров

Наши исследования, проведенные в птичниках-моноблоках для напольного выращивания цыплят-бройлеров, показали, что при одинаковой системе подачи воздуха по типу «сверху-вниз» воздухораспределение в типовых помещениях осуществлялось неравномерно (Рис. 17). Вследствие чего в разных залах одного и того же моноблока формировались разные микроклиматические условия (см. табл. 20), которые оказывали различное влияние на организм и продуктивность цыплят.

Рис. 17 Внутренняя аэрорумбограмма птичника-моноблока:

1 - венткамера, 2 - приточный воздуховод, 3 - участок застоя воздуха, 4 -вытяжные вентиляторы.

Исследования проводились в 1-ом и 2-ом залах моноблока, размером 18 х 84 м каждый, с плотностью посадки 15-16 цыплят-бройлеров на 1 м2 площади пола. В течение периода исследований птица из обеих залов находилась в одинаковых условиях кормления и содержания.

Таблица 20

Показатели микроклимата в птичнике-моноблоке для выращивания цыплят бройлеров

Показатели микроклимата	Периоды выращивания цыплят-бройлеров
	1-2 недели	2-4 недели	4-7 недели
	2 зал	1 зал	2 зал	1 зал	2 зал	1 зал
Температура, 0С	С	31,0-27,5 29,3	30-29 29,5	26,0-22,5 24	23-21 22	20,5-15,5 17,75	16,6-29,6 19,6
	Т	31,0-24,5 27,8	32,5-26,0 29,3	25,5-18,0 21,75	26,0-24,5 25,25	20,5-11,5 16	25,5-17,0 21,25
Относительная влажность, %	С	28-36 32	36-54 45	34-36 35	43-45 44	45-65 55	43-52 47,5
	Т	34-59 46,5	50-64 57	49-56 52,5	51-57 54	50-64 57	59-68 63,5
Подвижность воздуха, м/с	С	0,81-1,7 1,3	0,1-0,4 0,25	0,64-2,0 1,32	0,36-1,8 1,1	0,41-0,86 0,64	0,42-0,5 0,46
	Т	0,02-0,25 0,035	0,01-0,2 0,11	0,14-0,18 0,16	0,2-0,32 0,26	0,17-0,32 0,245	0,11-0,38 0,245
Аммиак, мг/м3	С	2,5-5 2,5	5-10 5	6-7,5 6,75	6-15 10,5	10-15 12,5	5-10 7,5
	Т	2,5-6 4,3	3-5 4	2,5-12,5 7,5	4-12,5 8,25	5-17,5 11,25	22,5-25 23,75
Углекислый газ, %	С	0,1-0,4 0,25	0,1-0,2 0,15	0,3-0,4 0,35	0,1-0,2 0,15	0,1-0,2 0,15	0,1-0,2 0,15
	Т	0,1-0,25 0,175	0,1-0,3 0,2	0,2-0,25 0,23	0,25-0,3 0,275	0,1-0,2 0,15	0,2-0,3 0,25
Микробная обсемененность, тыс./м3	С	398	1234	-	-	1844	4832
	Т	113-115 114	404-604 504	-	-	2098-2543 2320	6359-7312 6835,5

Размещено на http://www.allbest.ru/

76

Было установлено, что воздухообмен в 1-ом и 2-ом залах был примерно одинаковым на 10, 21 и 31-ый дни исследований и составлял: 6,13; 3,09; 1,25 и 5,68; 2,66; 1,32 м3/ч на кг ж.м. Различия в колебании температуры в обоих залах в течение четырёх недель выращивания цыплят были незначительными, однако с 26-го по 45-ый дни выращивания цыплят бройлеров отмечалось увеличение температуры в торцевых частях 1-го зала в среднем на 5 0С по сравнению со 2-ым залом.

В течение 4 недель исследований отмечалась низкая относительная влажность в исследуемых залах, так во 2-ом она была в пределах 28-57%, а 1-ом и 36-56%. Установлено, что к 4-ой недели выращивания происходило увеличение концентрации аммиака в обоих исследуемых залах, так в 2-ом зале она колебалась в пределах 5-17,5 мг/м3 , а во втором зале 10-25 мг/м3, что в 1,6 раза выше чем в 1-ом. Содержание углекислого газа колебалось в пределах 0,2-0,3% в 1-ом зале и 0,1-0,4% во 2-ом зале. К концу периода выращивания цыплят происходило постепенное увеличение общей микробной обсеменённости воздуха в помещениях, так к 42-му дню в 1-ом зале она достигала 4832 тыс./м3 и в 2 раза превышала таковую во 2-ом зале (2543 тыс./м3).

При изучении основного микробного фона воздуха в птичнике были выделены микроорганизмы родов staphylococcus и bacillus.

Для изучения влияния микроклимата на естественную резистентность и продуктивность цыплят были изучены следующие гематологические и иммунологические показатели: эритроциты, тромбоциты, лейкоциты, гемоглобин, бактерицидная и лизоцимная активности сыворотки крови, фагоцитарная активность тромбоцитов, общий белок. Исследования крови цыплят проводились в 4, 20, 34 и 41- дневном возрасте. В течение всего периода исследований проводились наблюдения за общим клиническим состоянием птицы из двух исследуемых залов. Также изучались среднесуточные привесы.

Было установлено снижение количества эритроцитов к концу периода выращивания цыплят в двух исследуемых залах на 9,3% и 24,4%, что как мы полагаем, происходило, из-за повышения концентрации аммиака в помещениях в этот период. Также отмечалось достоверное увеличение количества лейкоцитов в 2 и 1,5 раза на 20-ый и 34-ые дни выращивания цыплят и повышение тромбоцитов в 2 раза к 34 дню выращивания у птицы в 1-ом зале по сравнению со 2-ым залом. Увеличение количества тромбоцитов и лейкоцитов происходило, по-видимому, как следствие повышенной микробной нагрузки на организм цыплят.

Данные исследования гематологических показателей представлены в таблице №. 21.

Таблица 21

Некоторые гематологические показатели цыплят-бройлеров, (Mm)

Гематологические показатели	Дни выращивания цыплят-бройлеров
	Начало исследований	Середина исследований	Конец исследований
	1	2	1	2	1	2
Эритроциты х1012 л	2,9 0,13	2,87 0,416	2,76 0,271	2,02 0,08	2,63 1,131	2,17* 0,044
Гемоглобин, г/л	21,2 1,154	18,8 2,417	33,0 2,65	23,6 5,31	69,8 6,71	51,2* 3,67
Тромбоциты х109 л	89,6 17,92	88,8 15,36	100 17,05	122 17,05	147 36,53	70 10,0
Лейкоциты х109 л	25,6 4,12	35,2 2,65	47,0* 5,26	21,6 2,71	49,0* 9,98	32,0 16,1

Примечания здесь и далее: 1 - 1 зал, 2 - 2 зал; *- P<0,05.

Отмечено также и достоверное снижение показателей естественной резистентности цыплят в первом зале по сравнению со вторым. Данные об изменении естественной резистентности в течение периода выращивания цыплят бройлеров представлены в таблице.

Таблица 22

Некоторые показатели естественной резистентности цыплят - бройлеров, Мм

Показатели естественной резистентности цыплят	Дни выращивания цыплят-бройлеров
	4	20	34	41
	1	2	1	2	1	2	1	2
БАСК, %	25,0 9,57	18 2,0	12,7 2.67	18,5 6,62	44,7 9,12	69,2*4,39	56,0 2,0	67,3*4,37
ЛАСК, %	9,8 0,92	9,3 0,95	7,6 1,40	5,4 0,24	5,8 0,66	8,8* 0,63	9,5 2,96	19,2*0,58
ФА, %	27,2 1,96	26,0 2,9	41,5 4,19	57,5 6,89	33,6 8,18	24,0 5,60	34,5 3,95	40,5 11,24
ФЧ	2,5 0,23	3,2 0,21	1,2 0,19	2,9 0,83	5,1 0,93	6,9 1,65	1,5 0,60	1,6 0,60
ФИ	0,7 0,08	0,9 0,13	2,7 0,24	4,9 8,85	1,9 0,66	1,7 0,69	2,6 0,12	4,0 0,46
Общий белок, г/л	29,1 1,06	26,4 2,12	20,5 2,34	22,7 2,17	33,6 1,75	31,7 1,78	40,0 2,15	42,6 2,46

Анализируя данные таблицы следует, что на 34 и 41 дни выращивания у цыплят из 1-го зала отмечалось достоверное снижение: бактерицидной активности сыворотки крови на 24,5% (P<0,05) и 11,3% (P<0,05) и лизоцимной активности сыворотки крови на 3% (P<0,05)и 9,7 % (P<0,05) соответственно, по сравнению с цыплятами из 2-го зала.

Уровень фагоцитарной активности и общего белка в течение периода исследований достоверно не отличался в обоих залах.

Таким образом, повышенная микробная контаминация воздуха в помещении способствовала снижению показателей естественной резистентности у цыплят. Снижение естественных защитных сил организма не смогло не сказаться на продуктивности птицы. Так, к концу периода выращивания цыплят-бройлеров среднесуточные приросты у птицы из первого зала были ниже по сравнению со 2-ым залом. Так, среднесуточный прирост в 1-ом зале был 31,8 г, а во 2-ом 32,9 г, что на 1 г выше, чем в первом. Падёжи птиц за период исследований составили в 1-ом зале 1584 головы, а во 2-ом 1377, что на 207 голов меньше, чем в 1-ом.

Для создания оптимальных условий микроклимата, т.е. снижения высокой микробной контаминации и содержания аммиака в птичниках было проведены двукратные аэрозольные дезинфекции в 2-ух трёхзальных птичниках-моноблоках № 8 и № 19. Объём каждого зала птичников - 6000 м3.

Дезинфекцию проводили два дня подряд универсальным дезинфицирующим средством Virkon S согласно инструкции к препарату. До дезинфекции проводилась механическая чистка помещения и оборудования птичника. До и после проведения дезинфекции были проведены гигиенические исследования по следующим показателям: параметрам микроклимата (температуре, относительной влажности, скорости движения воздуха, аммиаку, общей микробной обсемененности воздуха). В 1-ом зале птичника-моноблока № 8 дезинфекция не проводилась.

Дезинфекция в птичниках препаратом проводили в присутствии птицы (поголовье: птичник № 8 - 51383 голов цыплят бройлеров 16-17-ти дневного возраста; птичник № 19 - 77500 голов 23-25-ти дневного возраста) аэрозольным методом при помощи струйного аэрозольного генератора типа АПА. Препарат употреблялся в дозе 1% раствора, расход раствора 24 литра на 6000 м3 воздуха, распыление препарата производилось в течение 45 минут. Перед применением препарат смешивали со стабилизатором (глюкоза) из расчета 10% стабилизатора к общему объему раствора. Распыление препарата в птичниках происходило при выключенной системе вентиляции.

Контроль качества дезинфекции проводился по общей микробной обсемененности и количеству кишечной палочки в воздухе.

До и через 3; 6 и 22 часа после дезинфекции в птичнике № 19 проводились исследования воздуха седиментационным методом на общую микробную обсемененность и количество кишечной палочки. Было установлено, что через час после проведения дезинфекции в птичнике отмечалось снижение содержания в воздухе помещения аммиака с 10 до 7,5 мг/м3. Также, через 3 и 6 ч после дезинфекции в птичнике происходило снижение общей микробной обсемененности воздуха в 2 и 3 раза соответственно. Также отмечалось снижение содержания кишечной палочки в воздухе помещения в 1,2 и 2 раза соответственно, через 3 и 6 ч после проведения дезинфекции в помещении.

Таблица 23

Общее количество микроорганизмов и кишечной палочки в воздухе помещения до и после проведения аэрозольной дезинфекции Virkon S

Показатели	Время исследований
	До дезинфекции	3 ч после дезинфекции	6 ч после дезинфекции	24 ч после дезинфекции
Общая микробная контаминация воздуха, тыс./ м3	554,4	262	181	393,6
Содержание кишечной палочки, в м3 воздуха	3680	3040	1760	2576

Кроме того, для изучения влияния препарата Virkon S на организм цыплят бройлеров в 1-ом и 2-ом зале одного из птичников-моноблоков проведились исследования крови по следующим показателям: количество эритроцитов, лейкоцитов и гемоглобина; лейкограмма; бактерицидная и лизоцимная активности сыворотки крови общий белок и белковые фракции. Исследования крови проводились за сутки до проведения аэрозольной дезинфекции и через 5 дней после неё.

Было установлено, что до проведения дезинфекции достоверных различий по содержанию общего белка и белковых фракций, бактерицидной и лизоцимной активностям сыворотки крови не отмечалось у птиц из обоих исследуемых залов. После проведения аэрозольной дезинфекции у птицы из 2-го зала (опытная группа) происходило достоверное увеличение лизоцимной активности сыворотки крови и общего белка на 6,1% и 21% соответственно по сравнению с птицей из 1-го зала (контрольная группа). Также, у птицы из 2-го зала было отмечено увеличение гамма-глобулиновой фракции белка на 29% по сравнению с первым залом.

Таблица 24

Некоторые гематологические и иммунологические показатели цыплят- бройлеров до и после проведения аэрозольной дезинфекции, (Mm)

Показатели крови	Опытная группа	Контрольная группа
	До проведения дезинфекции	После проведения дезинфекции	До проведения дезинфекции	После проведения дезинфекции
Эритроциты х1012/л	2,760,215	2,410,104	2,440,178	2,530,129
Гемоглобин, г/л	702,97	73,21,49	651,48	80,26,74
Лейкоциты х109/л	366,32	20,83,20	26,44,12	27,26,12
ЛАСК, %	5,40,51	11,2* 1,655	6,60,75	5,130,826
Общий белок, г/л	28,482,395	39,36*1,723	26,561,30	31,040,640
Ig, г/л	6,0961,145	12,121,816	8,220,549	8,5780,743

В течение периода исследований также изучался среднесуточные приросты живой массы у птиц из 1 и 2 зала птичника. Было установлено, что к 44 дню выращивания средняя живая масса цыплят из 1-го зала была 1513 г, а во втором 1677 г, что на 164 г больше, чем в 1-ом. Среднесуточной прирост живой массы с 8 по 44 дни выращивания составил 38 г в 1-ом зале и 42 г во 2-ом зале, что на 4 г выше, чем в 1-ом зале.

Таким образом, исходя из вышеизложенного, следует, что, во-первых: универсальное дезинфицирующее средство Virkon, можно использовать в птицеводческих помещениях, для улучшения микроклимата, как препарат, улучшающий санитарные показатели качества воздушной среды; во вторых: данный препарат можно использовать в качестве средства, восстанавливающего уровень естественных защитных сил организма и снижающего выбраковку цыплят от многих инфекционных и внутренних незаразных заболеваний (гепатитов, перитонитов, алиментарных дистрофий, каннибализма (расклёва), стафилококковых дерматитов, колисептицемии и др.).

9. Применение ультрафиолетового облучения для улучшения микроклимата, повышения естественной резистентности, продуктивности и снижения заболеваемости у птиц, телят, ягнят и поросят

При отсутствии на животноводческих предприятиях аэрозольной техники и генераторов аэроионов можно использовать искусственное облучение ультрафиолетовыми лампами. Так, как известно, что ультрафиолетовые лучи с различной длиной волн не только улучшают качество микроклимата в животноводческих помещениях, но и оказывают разностороннее благоприятное действие на организм животных (А.Д. Белов, И.М. Беляков, В.А. Лукьяновский, 1983; С.С. Абрамов, И.Г. Арестов, И.М. Карпуть, 1990; Л.М. Обухов, 1991; А.В. Коробов, 2002; А.Ф. Кузнецов, 2003; В.А. Медведский, А.Ф. Трофимов, Т.В. Соляник и др., 2003 и ряд др.).

Так, нами проведены опыты на Витебской птицефабрике на ремонтном молодняке кур-несушек породы канадский леггорн в возрасте 6 месяцев, которые содержались в типовом широкогабаритном птичнике в клетках типа КБУ - 3 с трёхъярусным расположением клеток. Для этого было сформировано две группы птиц (опытная и контрольная) по 600 птиц в каждой группе. Для облучения использовали ДРЭ-250 -БР, которые подвешивались под потолком в проходе между клеточными батареями с таким расчётом, чтобы они находились от кормушек верхнего яруса на 1 м, среднего - на 2 м и нижнего около 3 м. Включение ламп проводили в период кормления птиц, чтобы их головы0-56.промиздат, 1991. ий В.М., Обухов Л.М. Внутренние незаразные болезни сельскохозяйственных животных. йценоскость кур в верхн и корм находились под облучением на всех 3-ёх ярусах клеточной батареи.

В первый месяц облучения лампы включали сначала по 10 мин, 1 раз в день в течении 10 дней, затем делали десятидневный перерыв, после которого следовал опять десятидневный период облучения по 10 мин ежедневно. Во второй месяц опыта включали лампы ежедневно по 10 мин в течение всего месяца, а в третий месяц исследования лампы включали ежедневно по 10 мин 2 раза в день. На четвёртый и пятый месяцы опыта лампы включали по методике первого месяца. Птица контрольной группы ультрафиолетовому облучению не подвергалась. Учёт яйценоскости кур проводился ежедневно, отдельно на каждом ярусе клеточной батареи. Одновременно учитывалась и выбраковка птицы. Ежемесячно определяли вес 20-ти подопытных и 20-ти контрольных окольцованных кур.