Клинико-биохимические исследования
Основные методы разделения и выделения веществ при биохимических исследованиях. Количественное определение белка в сыворотке крови. Химическая природа нуклеопротеидов. Применение единиц СИ для выражения результатов клинико-биохимических исследований.
Рубрика | Химия |
Вид | учебное пособие |
Язык | русский |
Дата добавления | 11.03.2013 |
Размер файла | 4,2 M |
Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже
Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.
Осадок эритроцитов в центрифужных пробирках вновь суспензируют, втягивая и выдувая жидкость пипеткой, и оставляют их стоять при 20-22?С еще на 30 мин. По истечении этого времени пробы вновь центрифугируют в том же режиме, отбирают по 0,1 мл надосадочной жидкости в три чистые пробирки и приливают в них по 5 мл аммиачного раствора.
После добавления аммиачного раствора все шесть пробирок закрывают кусочком фольги и энергично встряхивают содержимое 2 мин. Затем измеряют экстинкцию в пробах против контроля на ФЭКе или на спектрофотометре при 540 нм (светофильтр зеленый) в кювете с толщиной слоя 1 см.
Расчет проводят по формуле
Е3100 Е2100
х = -------- и А = ---------- ,
Е1 Е1
где х - степень гемолиза при добавлении эргокальциферола, %;
Е1 - экстинкция пробы с эргокальциферолом;
Е3 - экстинкция контрольной пробы;
А - степень гемолиза после совместного добавления эргокальциферола и б-токоферола, %
Е2 - экстинкция пробы с эргокальциферолом и б-токоферолом.
Торможение антиоксидантом пероксидного окисления (в %) рассчитывают по формуле
А100
---------- .
х
Оформление работы. Провести необходимые расчеты и сделать вывод о причинах спонтанного гемолиза, а также о действии изучаемых прооксидантов и антиоксидантов.
Практическое значение работы. По степени гемолиза эритроцитов можно судить о состоянии антиокислительных систем клетки, в частности, об обеспеченности организма витамином Е. При нормальной обеспеченности спонтанный гемолиз, как правило, составляет 2-10%. Недостаток витамина Е резко повышает этот показатель. Имеется соответствие между спонтанным или индуцированным гемолизом и содержанием токоферолов в сыворотке крови. Способность витамина D2 ускорять пероксидное окисление липидов в мембранах эритроцитов и других клеток свидетельствует о его прооксидантных свойствах.
Работа 108. Определение скорости пероксидного окисления липидов в биомембранах
Реактивы. Трис-HCl буфер, 0,04 М раствор с рН 7,4*; соль Мора - Fe(NH4)2(SO4)2, 4·10-5 М свежеприготовленный раствор; трихлоруксусная кислота, 40%-ный раствор; тиобарбитуровая кислота, 0,8%-ный свежеприготовленный раствор; оксалат натрия, 1,34%-ный раствор; хлорид натрия, 0,9%-ный раствор; хлорид калия, 1,2%-ный раствор.
Оборудование. Штатив с пробирками; пипетки вместимостью 0,1; 1 и 5 мл; пастеровские пипетки; резиновая груша; водяная баня с термометром или водяная баня аппарата Варбурга; аптечные весы с разновесами; спектрофотометр или ФЭК типа КФК-2.
Материал.
Кровь, взятая в смеси с раствором оксалата натря в соотношении 10:1 (по объему).
Печень свежезабитого животного.
а. Определение скорости пероксидного окисления липидов в мембранах эритроцитов. Метод основан на определении содержания конечного продукта пероксидного окисления липидов - малонового диальдегида, который при взаимодействии с тиобарбитуровой кислотой образует окрашенный в розовый цвет триметиновый комплекс, имеющий максимум поглощения при 530-532 нм:
Окраска раствора пропорциональна концентрации малонового диальдегида. Молярный коэффициент экстинкции 1,56·10-5л·моль-1·см-1.
Ход определения. Оксалатную кровь центрифугируют 10 мин при 3000 об/мин, осаждая эритроциты. Верхний слой отсасывают, а осадок эритроцитов трижды промывают раствором хлорида натрия и переосаждают при том же режиме центрифугирования.
Отбирают 0,5 мл осадка эритроцитов в чистую центрифужную пробирку, приливают равный объем дистиллированной воды и оставляют стоять 30 мин для полного гемолиза.
Пробу центрифугируют 30 мин при 3000 об/мин, осторожно отсасывают пастеровской пипеткой надосадочную жидкость с серой прослойкой мембран эритроцитов и переносят в другую пробирку.
Берут три чистые пробирки. В первую опытную вносят по 0,3 мл растворов соли Мора, трис-буфера, аскорбиновой кислоты и 0,1 мл полученной взвеси мембран эритроцитов. Во вторую опытную приливают 0,3 мл трис-буфера, 0,1 мл взвеси мембран эритроцитов и 0,6 мл дистиллированной воды. В третью (контроль) добавляют те же реактивы, что и в первую пробирку, после чего сразу приливают 1 мл раствора трихлоруксусной кислоты.
Все пробирки помещают в водяную баню (или в баню аппарата Варбурга) и инкубируют пробы 20 мин при 37?С. Реакцию в опытных пробах останавливают, добавляя в обе пробирки по 1 мл раствора трихлоруксусной кислоты.
Все пробы центрифугируют 15 мин при 3000 об/мин. Сливают надосадочную жидкость (ее объем 2 мл) в три другие пробирки, прибавляют по 1 мл раствора тиобарбитуровой кислоты и помещают пробы на 10 мин в кипящую водяную баню. Затем пробирки охлаждают в ледяной воде.
Измеряют экстинкцию полученных проб против контроля на спектрофотометре при 532 нм или на ФЭКе (светофильтр зеленый) в кювете с толщиной слоя 1 см.
Расчет по формулам
Е13•6 Е23•6
х1 = -------- и х2 = -------- ,
0,156 0,156
где х1 - скорость образования в пробе малонового диальдегида в присутствии прооксидантов (индуцированное пероксидное окисление липидов), нмоль•ч-1;
х2 - скорость образования в пробе малонового диальдегида в отсутствие прооксидантов (спонтанное пероксидное окисление липидов), нмоль•ч-1;
3 - объем пробы, мл;
6 - коэффициент пересчета на 1 час;
0,156 - экстинкция 1 нмоля при 532 нм;
Е1 и Е2- экстинкции соответственно первой и второй проб против контроля.
б. Определение скорости пероксидного окисления липидов в гомогенатах тканей. Принцип метода описан выше.
Ход определения. Навеску 0,5 г печени гомогенизируют в 19,5 мл охлажденного до 0-4?С раствора хлорида калия, поместив стакан гомогенизатора в лед или снег. Полученный гомогенат сливают в пробирку.
В одну пробирку наливают 2,0 мл гомогената и 0,2 мл дистиллированной воды, во вторую - 2 мл гомогената и по 0,1 мл растворов аскорбиновой кислоты и соли Мора, в третью - те же вещества, что и во вторую, и, кроме того, добавляют 1 мл раствора трихлоруксусной кислоты.
Все пробирки помещают на 10 мин в водяную баню при 37?С, после чего прибавляют в первые две пробирки по 1 мл раствора трихлоруксусной кислоты. Далее все пробы центрифугируют 10 мин при 3000 об/мин.
По 2 мл надосадочной жидкости отбирают в три чистые пробирки, приливают по 1 мл раствора тиобарбитуровой кислоты и помещают пробы в кипящую водяную баню на 10 мин. После этого их охлаждают в ледяной воде до комнатной температуры.
Измеряют экстинкцию всех проб против контрольного раствора (2 мл раствора хлорида калия, 1 мл раствора трихлоруксусной кислоты и 1 мл раствора тиобарбитуровой кислоты, выдерживают 10 мин на кипящей водяной бане и охлаждают в ледяной воде до комнатной температуры) на спектрофотометре при 532 нм или ФЭКе (светофильтр зеленый) в кювете с толщиной слоя 1 см.
Расчет проводят по формулам:
Е1(Е2)3•3,2•6 Е33•3,2
х1 (х2)= ------------ и х3 = ------------ ,
0,156•2 0,156•2
где х1 - скорость спонтанного пероксидного окисления липидов в гомогенатах, измеряющаяся в наномолях образовавшегося малонового диальдегида в пробе за час инкубации;
х2 - скорость аскорбат-зависимого неферментативного пероксидного окисления липидов в наномолях образовавшегося малонового диальдегида в пробе за час инкубации;
х3 - содержание малонового диальдегида в исходном гомогенате, нмоль;
Е1, Е2 и Е3- экстинкции соответственно первой, второй и третьей проб;
3,2 - общий объем исследуемых проб, мл;
2 - объем надосадочной ждкости, взятой на определение малонового диальдегида, мл;
3 - объем проб, взятых на фотометрию, мл;
0,156 - экстинкция 1 нмоль малонового диальдегида в 1 мл при 532 нм;
Оформление работы. Рассчитать полученные результаты, дать сравнительную характеристику скорости спонтанного и индуцированного пероксидного окисления липидов, сделать вывод о возможности использования метода для оценки скорости пероксидного окисления липидов и его применимости на практике.
Практическое значение работы. Методы определения скорости пероксидного окисления липидов биомембран важны для оценки действия на эту систему природных веществ и ксенобиотиков, среди которых могут быть как прооксиданты, так и антиоксиданты. Эти исследования дают возможность практически использовать выявленный эффект различных соединений, в том числе лекарственных средств.
Увеличение скорости пероксидного окисления липидов возможно при старении, гиповитаминозе Е, дефиците селена, действии ионизирующего облучения, гипербарической оксигенации (действии кислорода под повышенным давлением), при некоторых заболеваниях и патологических состояниях (сердечно-сосудистых заболеваниях, гипоксии, отравлении четыреххлористым углеродом, гипервитаминозах А и D и т.д.).
Гемоглобин и кислород, содержащиеся в эритроцитах, ускоряют пероксидное окисление липидов, что вызывает повреждение мембран эритроцитов и их гемолиз. Защита эритроцитарных мембран осуществляется системой антиоксидантов: токоферолами, имеющимися в мембранах и плазме крови, глутатионпероксидазой, обезвреживающей гидропероксиды липидов, и альбумином плазмы, который связывает пероксиды липидов.
При недостаточности антиоксидантной системы развиваются гемолитические состояния, которые часто провоцируются некоторыми пищевыми факторами и лекарственными средствами.
ПРИЛОЖЕНИЕ
Некоторые биохимические показатели жидких сред организма
КРОВЬ 1. Общие показатели цельной крови
Эритроциты |
4,0-5,0•1012 /л |
|
Гемоглобин: |
||
мужчины |
130-160 г/л |
|
женщины |
120-140 г/л |
|
Цветной показатель |
0,8-1,0 |
|
Фетальный гемоглобин |
0,75-0,97% |
|
Гликозилированный гемоглобин |
3-5,5% от общего гемоглобина |
|
Ретикулоциты |
0,2-1,0% |
|
Лейкоциты |
4,0-9,0•109 /л (100%) |
|
Нейтрофилы |
2,0-5,5•109 /л (47-72%) |
|
Эозинофилы |
0,02-0,3•109 /л (1-5%) |
|
Базофилы |
0-0,065•109 /л (0-1%) |
|
Лимфоциты |
1,2-3,0•109 /л (19-37%) |
|
Моноциты |
0,09-0,6•109 /л (3-11%) |
|
Тромбоциты |
180-320•109 /л |
|
СОЭ |
3-12 мм/ч |
2. Биохимические показатели плазмы крови
а. Белки
Общие белки |
65-85 г/л |
|
Альбумины |
35-60 г/л |
|
Преальбумины |
0,1-0,4 г/л |
|
Глобулины: |
25-35 г/л |
|
б1-глобулины |
2,5-5% |
|
б2-глобулины |
7-13% |
|
в-глобулины |
8-14% |
|
г-глобулины |
12-22% |
|
фибриноген |
2,0-7,0 г/л |
|
Липопротеиды: |
||
хиломикроны |
0-0,5 г/л |
|
пре-в-липопротеиды |
1,5-2,0 г/л |
|
в-липопротеиды |
3,0-6,0 г/л |
|
Гаптоглобин |
0,28-1,90 г/л |
б. Ферменты
Аланинаминотрансфераза |
0,16-0,68 ммоль/(ч•л) |
|
Аспартатаминотрансфераза |
0,10-0,45 ммоль/(ч•л) |
|
Лактатдегидрогеназа |
0,8-4,0 ммоль/(ч•л) |
|
Креатинкиназа |
до 1,2 ммоль Р/(ч•л) |
|
Фруктозо-1,6-бисфосфат-альдолаза |
3,6-21,8 мкмоль/(ч•л) |
|
Сорбитдегидрогеназа |
0,9 мкмоль/(ч•л) |
|
Ацетилхолинэстераза |
160-340 ммоль/(ч•л) |
|
б-Амилаза |
15-30 г/(ч•л) |
|
Кислая фосфатаза |
0,05-0,13 ммоль/(ч•л) |
|
Щелочная фосфатаза |
0,5-1,3 ммоль/(ч•л) |
|
г-глютамилтрансфераза |
167-1767 нмоль/с•л |
в. Небелковые азотсодержащие вещества
Азот остаточный (небелковый) |
19,5-30 ммоль/л |
|
Азот б-аминокислот |
3,5-5,5 ммоль/л |
|
Креатин |
15-70 мкмоль/л |
|
Креатинин |
40-150 мкмоль/л |
|
Мочевина |
3,0-7,0 ммоль/л |
|
Мочевая кислота |
0,1-0,4 ммоль/л |
|
Пигменты: |
||
билирубин общий |
8,0-20,0 мкмоль/л |
|
билирубин неконъюгированный |
75% общего |
|
билирубин конъюгированный |
25% общего |
|
моноглюкуронид |
5% общего |
|
диглюкуронид |
20% общего |
г. Углеводы и метаболиты
Глюкоза |
2,8-4,0 ммоль/л |
|
Сахар |
0,8-1,2 г/л |
|
Лактат |
0,5-2,0 ммоль/л |
|
Пируват |
0,1-0,13 ммоль/л |
|
Сиаловые кислоты |
2,00-2,36 ммоль/л |
д. Липиды и метаболиты
Общие липиды |
4,0-8,0 г/л |
|
Триацилглицерины |
0,5-2,1 ммоль/л |
|
Фосфолипиды общие |
2,0-3,5 ммоль/л |
|
Холестерин общий |
4,0-6,2 ммоль/л |
|
Жирные кислоты свободные |
0,3-0,8 ммоль/л |
|
Кетоновые тела (в пересчете на ацетон) |
100-600 мкмоль/л |
е. Минеральные вещества
Плазма |
Эритроциты |
||
Калий |
3,6-5,0 ммоль/л |
80-100 ммоль/л |
|
Натрий |
135-155 ммоль/л |
8,0-13 ммоль/л |
|
Кальций |
2,25-2,75 ммоль/л |
||
Магний |
0,7-1,2 ммоль/л |
1,4-2,4 ммоль/л |
|
Фосфор |
3,0-5,0 ммоль/л |
13-20 ммоль/л |
|
Хлор |
97-108 ммоль/л |
75-85 ммоль/л |
|
Сульфаты |
0,4-0,6 ммоль/л |
||
Железо |
12-32 мкмоль/л |
ж. Гормоны, медиаторы и их метаболиты
Инсулин |
0,5-5,0 мкг/л |
|
Адреналин |
0,1-0,5 нмоль/л |
|
Тироксин (общий) |
90-120 нмоль/л |
|
Альдостерон |
300-800 нмоль/л |
|
Эстрогены |
0,07-1,7 ммоль/л |
|
Тестостерон: |
||
мужчины |
10-40 нмоль/л |
|
женщины |
0,7-3,0 нмоль/л |
|
17-оксикортикостероиды |
300-600 нмоль/л |
|
Гистамин |
2,0-40 нмоль/л |
|
Серотонин |
30-60 нмоль/л |
Осадочные пробы
Тимоловая проба |
0-4 ед. мутности |
|
Сулемовая проба |
1,6-2,2 мл сулемы |
|
Проба Вельтмана |
0,4-0,5 хлорида кальция |
з. Витамины
А (ретинол) |
0,5-2,0 мкмоль/л |
|
Е (токоферол) |
20-40 мкмоль/л |
|
В1 (тиамин) |
40-400 нмоль/л |
|
В2 (рибофлавин) |
0,06-1,0 мкмоль/л |
|
В3 (пантотеновая кислота) |
0,3-1,5 мкмоль/л |
|
В5 (никотиновая кислота) |
2,0-12 мкмоль/л |
|
С (аскорбиновая кислота) |
30-90 мкмоль/л |
|
Н (биотин) |
40-75 нмоль/л |
МОЧА 1. Общие клинические нормы
Объем: |
||
мужчины |
1500 мл/сут |
|
женщины |
1200 мл/сут |
|
Цвет |
Соломенно-желтый |
|
Плотность |
1,001-1,040 (в среднем 1,012-1,020) |
|
рН |
5,0-7,0 |
|
Осмотическая концентрация |
1000-1200 мосмоль/л |
|
Белки |
Следы |
|
Глюкоза |
Следы |
|
Ацетоновые тела |
Следы |
|
Лейкоциты |
2•106 /л (по Нечипоренко) |
|
Эритроциты |
1•106 /л (по Нечипоренко) |
2. Специальное исследование мочи
а. Ферменты
б-амилаза |
28-160 г/(ч•л) |
б. Небелковые азотсодержащие вещества
Аминокислоты (по азоту) |
0,29-5,35 ммоль/сут |
|
Мочевина |
333-582,8 ммоль/сут |
|
Мочевая кислота |
2,36-5,9 ммоль/сут |
|
Креатинин |
4,4-17,6 ммоль/сут |
|
Креатин |
0-0,456 ммоль/сут |
|
Аммиак |
30-60 ммоль/сут |
|
Дельта-аминолевулиновая кислота |
3,9-19,0 мкмоль/г креатинина |
|
Копропорфирин |
30,5-122,0 нмоль/г креатинина |
в. Минеральные компоненты
Калий |
61-79 ммоль/сут |
|
Натрий |
174-222 ммоль/сут |
|
Кальций |
4,02-4,99 ммоль/сут |
|
Магний |
1,20-8,19 ммоль/сут |
г. Гормоны, медиаторы и их метаболиты
Альдостерон |
2,8-41,6 нмоль/сут |
|
17-Оксикортикостероиды (общие) |
3,61-20,38 мкмоль/сут |
|
17-Кетостероиды: |
||
мужчины |
22,9-81,1 мкмоль/сут |
|
женщины |
17,2-62,5 мкмоль/сут |
|
Ванилилминдальная кислота |
3,53-19,2 мкмоль/сут |
д. Витамины
С (аскорбиновая кислота) |
113,5-170,3 мкмоль/сут |
|
В1 (тиамин) |
0,14-0,29 ммоль/сут |
|
В2 (рибофлавин) |
1,08-1,80 ммоль/сут |
ЖЕЛУДОЧНЫЙ СОК
рН |
1,5-3,5 |
|
Общая кислотность |
40-60 ммоль/л (40-60 ед.) |
|
Свободная соляная кислота |
20-40 ммоль/л (20-40 ед.) |
|
Связанная соляная кислота |
5-20 ммоль/л (5-20 ед.) |
СПИННО-МОЗГОВАЯ ЖИДКОСТЬ
Плотность |
1,006-1,007 |
|
Цвет |
Бесцветная |
|
Белок |
0,22-0,33 г/л |
|
Альбумины |
0,17-0,24 г/л |
|
Глобулины |
0,025-0,05 г/л |
|
Альбумины |
58,3% |
|
Преальбумины |
5,7% |
|
б1-глобулин |
5% |
|
б2-глобулин |
7% |
|
в-глобулин |
15,5% |
|
г-глобулин |
8,5% |
|
Глюкоза |
2,50-3,89 ммоль/л |
|
Фруктоза |
0,1-0,2 ммоль/л |
|
Хлориды |
12-130 ммоль/л |
НЕКОТОРЫЕ ФУНКЦИОНАЛЬНЫЕ ПРОБЫ С ПРИМЕНЕНИЕМ БИОХИМИЧЕСКИХ МЕТОДОВ
Проба на коллоидную устойчивость (проба Вельтмана в модификации Тейфеля) |
4-5•103 мл CaCl2 /л |
|
Сулемовая проба (по Гринстедту) |
3,2-4,4•103 мл сулемы/л |
|
Клеточная фильтрация |
7,2 л/ч |
|
Клирентс мочевины: |
||
«максимальный» |
3,84-5,94 л/ч |
|
«стандартный» |
2,4-3,78 л/ч |
2. Приготовление буферных растворов
1. Фосфатно-цитратный буфер (0,1 М, рН 5,0-8,0)
Исходные растворы:
0,2 М раствор Na2HPO4•2H2O (35,61 г соли растворяют в дистиллированной воде в мерной колбе вместимостью 1 л).
0,1 М раствор лимонной кислоты (21,01 г кислоты растворяют в дистиллированной воде в колбе вместимостью 1 л). Для получения нужного рН смешивают растворы в следующих количествах:
рН |
Na2HPO4 0,2 М, мл |
Лимонная кислота, 0,1 М, мл |
|
5,6 |
5,8 |
4,2 |
|
6,4 |
6,9 |
3,1 |
|
6,8 |
7,7 |
2,3 |
|
7,2 |
8,7 |
1,3 |
|
8,0 |
9,7 |
0,3 |
2. Фосфатный буфер (0,1 М, рН 5,8-8,0)
Na2HPO4 0,2 М, мл |
Na2H2PO4 0,2 М, мл |
Вода, мл |
рН |
|
8,0 |
92,0 |
До 200 |
5,8 |
|
12,3 |
87,7 |
-?- |
6,0 |
|
18,5 |
81,5 |
-?- |
6,2 |
|
26,5 |
73,5 |
-?- |
6,4 |
|
37,5 |
62,5 |
-?- |
6,6 |
|
49,0 |
51,0 |
-?- |
6,8 |
|
61,0 |
39,0 |
-?- |
7,0 |
|
72,0 |
28,0 |
-?- |
7,2 |
|
81,0 |
19,0 |
-?- |
7,4 |
|
87,0 |
13,0 |
-?- |
7,6 |
|
91,5 |
8,5 |
-?- |
7,8 |
|
94,7 |
5,3 |
-?- |
8,0 |
3. Трис-буфер (0,1 М, рН 7,1-9,2)
24,2 г трис-(гидроксиметил) аминометана растворяют в мерной колбе вместимостью 1 л (в 500 мл Н2О). Для получения необходимого значения рН прибавляют указанный в таблице объем 1 М HCl и доводят объем дистиллированной водой до 1000 мл.
рН |
HCl, мл |
рН |
HCl, мл |
|
7,1 |
189 |
8,3 |
70 |
|
7,2 |
183 |
8,5 |
50 |
|
7,4 |
170 |
8,7 |
16,5 |
|
7,8 |
150 |
9,2 |
5,75 |
|
8,1 |
90 |
4. Ацетатный буфер (0,2 М, рН 3,6-5,8)
Ацетат натрия 0,2 М, мл |
Уксусная кислота 0,2 М, мл |
рН |
Ацетат натрия 0,2 М, мл |
Уксусная кислота 0,2 М, мл |
рН |
|
0,75 |
9,25 |
3,6 |
5,90 |
4,10 |
4,8 |
|
1,20 |
8,80 |
3,8 |
7,00 |
3,00 |
5,0 |
|
1,80 |
8,20 |
4,0 |
7,90 |
2,10 |
5,2 |
|
2,65 |
7,35 |
4,2 |
8,60 |
1,40 |
5,4 |
|
3,70 |
6,30 |
4,4 |
9,10 |
0,90 |
5,6 |
|
4,90 |
5,10 |
4,6 |
9,40 |
0,60 |
5,8 |
5. Глициновый буфер (0,05 М, рН 8,6-10,6)
Смешивают указанные объемы глицина и гидроксида натрия и доводят объем дистиллированной водой до 200 мл
рН |
Глицин 0,2 М, мл |
NaOH 0,2 М, мл |
рН |
Глицин 0,2 М, мл |
NaOH 0,2 М, мл |
|
8,6 |
50 |
4,0 |
9,6 |
50 |
22,4 |
|
8,8 |
50 |
6,0 |
9,8 |
50 |
27,2 |
|
9,0 |
50 |
8,8 |
10,0 |
50 |
32,0 |
|
9,2 |
50 |
12,0 |
10,4 |
50 |
38,6 |
|
9,4 |
50 |
16,8 |
10,6 |
50 |
45,5 |
3. Приготовление некоторых реактивов
Активирующий раствор. В мерную колбу вместимостью 100 мл помещают 155 мг восстановленного глутатиона и 400 мг кристаллического альбумина, растворяют их в 50 мл дистиллированной воды и с помощью 1 М раствора NaOH доводят рН до 8,2. Затем доливают до метки воду.
Аммиачный раствор нитрата серебра. К 2-3%-ному раствору серебра добавляют концентрированный раствор аммиака до растворения осадка.
Ацетатный буферный раствор рН 3,6. Готовят смешивая 463 мл раствора А и 37 мл раствора Б, доводят до метки водой в мерной колбе до 1 л. Раствор А: 11,55 мл ледяной уксусной кислоты разводят водой в мерной колбе на 1 л. Раствор Б: 27,2 г ацетата натрия растворяют в воде в колбе на 1 л.
Биуретовый реактив (реактив Бенедикта). 173 г цитрата натрия и 100 г карбоната натрия растворяют в 300 мл дистиллированной воды на водяной бане. Отдельно в 300 мл воды растворяют 17,3 г сульфата меди. Оба раствора сливают и доводят общий объем до 1 л.
Буферный раствор. 2,76 г веронала и 2,06 г мединала растворяют в 1 л дистиллированной воды. Хранят в холодильнике, при появлении осадка раствор не пригоден к употреблению.
Взвесь угля. 0,25 г активированного угля помещают в мерную колбу на 100 мл и разбавляют ацетатным буфером рН 3,6. Перед употреблением тщательно встряхивать.
Восстанавливающий реактив. 1%-ный раствор аскорбиновой кислоты, приготовленный на 0,016%-ном растворе сульфата меди.
Гемоглобин, 4%-ный раствор на ацетатном буфере (рН 4,0). Сначала готовят 8%-ный раствор гемоглобина на 8 моль/л растворе мочевины, выдерживают его 2 ч в термостате при 60?С и перед употреблением разводят ацетатным буфером в 2 раза.
Глицил-глицин. 0,55 ммоль/л, рН - 8,3. 3,63 г глицил-глицина помещают в мерную колбу на 50 мл, доливают водой до метки (буферный раствор).
Денатурирующий раствор. Растворить 1 ампулу ацетонциангидрина (0,5 мл - 0,47 г из набора по определению гемоглобина в крови) в 1 л дистиллированной воды.
Диазореактив для определения билирубина. Готовят два раствора. Первый раствор: 3 г сульфаниловой кислоты растворяют в 500 мл дистиллированной воды, добавляют 15 мл концентрированной соляной кислоты (на горячей бане), доводят объем водой до 1 л. Второй раствор: 0,5%-ный водный раствор нитрита натрия. Перед употреблением смешивают 5 мл первого раствора и 0,25 мл второго.
Диацетил, рабочий раствор. 1 мл диацетила разводят дистиллированной водой в мерной колбе на 100 мл (раствор хранят в холодильнике). Рабочий раствор диацетила готовят перед употреблением, добавляя в 1 мл основного раствора диацетила 24 мл дистиллированной воды.
Дифениламиновый реактив. 1 г дифениламина растворяют в 100 мл ледяной уксусной кислоты. К раствору прибавляют 2,75 мл концентрированной серной кислоты.
Калибровочный раствор. Основной - 0,75 ммоль/л АЛК (100 мкг/мл) в пересчете на основание: 0,00635 г АЛК гидрохлорида растворяют в ацетатном буфере рН 3,6 в мерной колбе на 50 мл. Хранят в холодильнике не более месяца. Из основного готовится рабочий калибровочный раствор, 1 мкг/мл. Готовят перед употреблением разведением основного раствора ацетатным буфером в 100 раз.
Калибровочный раствор. 22,5 мг диоксиацетона при нагревании растворяют в 25 мл воды. 1 мл такого раствора содержит 10 мкмолей диоксиацетона. В ряд пробирок (см. работу) разливают калибровочный раствор диоксиацетона, доливают до нужного объема и далее проводят реакцию также, как и при определении активности фермента.
Калибровочный (стандартный) раствор железа (30 мкмоль/л).
Сначала готовят соли Мора.
содержащий 3 ммоль/л, растворяя 1,178 г в 5 мл 0,3 н. соляной кислоты, после чего доводят до 1 л водой (подкисленной 1 мл концентрированной серной кислоты). Рабочий стандартный раствор железа получают из основного путем разведения подкисленной водой в 100 раз. Полученный раствор содержит 30 мкмоль/л или 1,67 мкг/мл железа.
Кофеиновый реактив. 1 г чистого кофеина, 7,5 г бензоата натрия, 12,5 г ацетата натрия растворяют в 90 мл дистиллированной воды, нагревают до 50-60?С, перемешивают, охлаждают и доводят до 100 мл дистиллированной водой.
Молибдат аммония в азотной кислоте. 7,5 г молибдата аммония растворяют в 100 мл воды и прибавляют 100 мл 32%-ной азотной кислоты.
Моча при алкаптонурии. При отсутствии патологической в нормальную мочу добавляют гидрохинон из расчета 20 г/л.
Моча при гипераминоацидурии. При отсутствии патологической в нормальную мочу добавляют глицин из расчета 1,0 г/л.
Моча при мукополисахаридозе. При отсутствии патологической в нормальную мочу добавляют хонсурид или гепарин из расчета 0,05-0,1 г/л.
Моча при пентозурии. При отсутствии патологической в мочу добавляют ксилулозу или рибозу из расчета 1,0 г/л.
Моча при тирозинозе. При отсутствии патологической в нормальную мочу добавляют тирозин из расчета 0,4-0,5 г/л.
Моча при фруктозурии. При отсутствии патологической в нормальную мочу добавляют фруктозу из расчета 0,3-0,4 г/л.
Моча при цистинурии. При отсутствии патологической в нормальную мочу добавляют цистин из расчета 0,4-0,5 г/л.
Натрия ацетат 3-водный, насыщенный раствор. 375 г ацетата натрия 3-водного (или 226 г безводной соли) растворяют в 250 мл теплой воды, охлаждают до комнатной температуры. Хранят при комнатной температуре. Раствор должен быть бесцветным и прозрачным.
Натрий фосфат двузамещенный 0,25 моль/л. Готовят, растворяя 9,7 г Na2HPO4•12H2O или 18 г Na2HPO4•12H2O в воде в колбе на 200 мл. При добавлении 2 мл этого раствора к 1 мл раствора трихлоруксусной кислоты рН должен быть в пределах 5,0-6,0.
Основной калибровочный раствор креатинина, 10 ммоль/л. 113,1 мг креатинина доводят до 100 мл 0,1 моль/л раствором соляной кислоты. При построении калибровочного графика из основного раствора готовят рабочий раствор путем разведения основного раствора водой в 100 раз, 1 мл раствора содержит 0,1 ммоль креатинина. Исходя из этого получают ряд пробирок с соответствующими концентрациями креатина.
Окислительная смесь для определения тиамина. К 8 мл 1%-ного гексацианоферрата (III) калия приливают 20 мл 30%-ного раствора NaOH, тщательно перемешивают. Готовят перед употреблением.
Орциновый реактив. К 1 г орцина прилить 500 мл 30%-ной соляной кислоты (плотностью 1,15 г/см3). Перемешать до растворения и добавить 4-5 мл 10%-ного раствора хлорида железа (III) FeCl3. Реактив хранят в плотно закупоренной темной склянке.
Основной калибровочный раствор п-нитроанилина. 0,0829 г п-нитроанилина помещают в мерную колбу на 100 мл, доводят до метки водой и растворяют.
Осаждающий раствор. Растворить 561 г сульфата аммония в 1 л дистиллированной воды и через сутки профильтровать.
Основной фосфатный буферный раствор и его рабочие растворы № 1-4. Растворяют 33,5 г NaOH в 400 мл воды в мерной колбе вместимостью 500 мл и добавляют 226,8 г KH2PO4, встряхивают до полного растворения, охлаждают и доливают водой до метки. Для приготовления рабочих растворов основного фосфатного буфера в мерные колбы вместимостью 100 мл отмеривают следующие объемы основного фосфатного буфера (в мл): № 1 - 92,51; № 2 - 74,91; № 3 - 59,18 и № 4 - 48,68, после чего доводят их содержимое водой до метки.
Пикриновая кислота, насыщенный раствор. Товарная пикриновая кислота содержит 15-20% влажности, кислоту не сушить. Взрывоопасно! В 100 мл воды растворяют 2 г пикриновой кислоты при нагревании в горячей бане. После этого раствор оставляют стоять на 24 часа, периодически перемешивая. Затем раствор фильтруют. Раствор стабилен и хранится в посуде из темного стекла.
Пирофосфатный буфер 0,05 М с рН 8,2. Переносят 4,46 г пирофосфата натрия в мерную колбу вместимостью 200 мл, растворяют его примерно в 100 мл воды, доводят рН с помощью 0,1 М раствора HCl до 8,2 и доливают дистиллированной водой до метки.
Пирофосфатный буфер 0,1 М с рН 8,5. Переносят 4,46 г пирофосфата натрия в мерную колбу вместимостью 100 мл, растворяют его в 50 мл воды, доводят рН с помощью 0,1 М раствора HCl до 8,5 и доливают дистиллированной водой до метки.
Рабочий реактив. Готовят в день определения, смешивая 30 частей 0,3 н гидроксида натрия. 2 части 0,5% раствора фенолфталеина и 1 часть 0,12% раствора сульфата меди.
Раствор ацетонциангидрина. Растворить 1 ампулу ацетонциангидрина (0,5 мл - 0,47 г из набора по определению гемоглобина в крови) в 1 л дистиллированной воды.
Раствор ферриацетонциангидрина. Растворить в 1 л дистиллированной воды 200 мг железосинеродистого калия и 1 ампулу (0,5 мл - 0,47 г) ацетонциангидрина: возможно использование из набора реактивов для приготовления трансформирующего раствора по определению гемоглобина крови. Устойчив в течение нескольких месяцев при хранении в посуде из темного стекла при комнатной температуре.
Раствор глюоксидазы. Содержит около 300 ед. в 1 мг. Готовят, растворяя соответствующее количество сухого препарата в 10 мл воды.
Раствор сульфонированного бато-фенантролина. В пробирке к 100 мг бато-фенантролина приливают 0,5 мл хлорсульфоновой кислоты, нагревают на кипящей водяной бане 30 с, охлаждают и медленно приливают 10 мл бидистиллированной воды, вновь нагревают на водяной бане в течение 5 мин. Смесь переносят в колбу на 200 мл, добавляют 100 мл воды, рН раствора доводят до 4-5 н NaOH и добавляют водой до объема 200 мл.
Раствор иода в иодиде калия (раствор Люголя). В 100 мл дистиллированной воды растворяют 20 г иодида калия и 10 г иода. Перед употреблением раствор разводят в 5 раз.
Раствор п-нитрозодиметиланилина (НДМА). Имеющийся в продаже препарат НДМА перекристаллизовывают из этилового эфира. Для измерения алкогольдегидрогеназы 1 мг НДМА растворяют в 100 мл 0,1 М пирофосфатного буфера (рН 8,5). Полученный раствор фильтруют через бумажный фильтр и разводят фильтрат в 2 раза тем буфером. Хранят при 4?С в течение двух месяцев.
Реактив Илька. К 5 частям (по объему) уксусного ангидрида добавляют 1 часть ледяной уксусной кислоты, затем постепенно вливают 1 часть концентрированной серной кислоты. Хранить реактив на холоду!
Реактив Миллона. (Готовят под тягой!) В 57 мл концентрированной азотной кислоты растворяют 40 г ртути сначала на холоду, а затем нагревая на водяной бане. Полученный раствор разбавляют 2 объемами воды, дают отстояться и сливают с осадка. Хранят во флаконе из темного стекла.
Реактив молибдата аммония. 2,5 г молибдата аммония растворяют в 60 мл дистиллированной воды, фильтруют. Раствор вносят в колбу вместимостью 100 мл. В другой колбе к 25 мл дистиллированной воды приливают 7,5 мл концентрированной серной кислоты. Второй раствор приливают к первому, охлаждают и доводят дистиллированной водой до метки. Раствор пригоден в течение месяца.
Реактив «НАДИ». 1%-ный раствор диметил-п-фенилендиамина смешивают с равным объемом 1%-ного раствора б-нафтола в спирте и 1,5%-ного раствора карбоната натрия. Раствор окрашен в темно-коричневый цвет и не должен иметь розового оттенка. Готовят за 1 ч до занятия.
Реактив Наша. В колбу вместимостью 100 мл вносят 15,4 г ацетата аммония, 0,3 г ледяной уксусной кислоты и 0,2 г ацетилацетона, растворяют в дистиллированной воде и доводят объем до метки.
Реактив Несслера. В мерной колбе вместимостью 500 мл смешивают 150 г иодида калия, 110 г иода, 100 мл дистиллированной воды и около 140-150 г металлической ртути и сильно встряхивают в течение 15 мин. При этом раствор самопроизвольно разогревается, и окраска, обусловленная растворенным иодом, постепенно бледнеет. Затем смесь начинают охлаждать под струей воды до сохранения отчетливой красной окраски, после чего содержимое встряхивают до перехода красной окраски в зеленоватую. После декантации осадок ртути тщательно промывают водой. Объединяют раствор и промывные воды, разбавляют их водой до 2 л. Отбирают 75 мл полученного раствора в мерную колбу вместимостью 0,5 л, содержащую 75 мл воды и 350 мл 10%-ного раствора гидроксида натрия и доводят водой до метки.
Реактив Фелинга. Готовят отдельно два раствора. Раствор 1: в мерной колбе вместимостью 1 л растворяют 200 г сегнетовой соли и 150 г NaOH и доводят водой до метки. Раствор 2: в мерной колбе вместимостью 1 л растворяют в воде 40 г сульфата меди (II) и доводят водой до метки. Перед употреблением смешивают равные объемы этих растворов.
Реактив Фолина. В колбе вместимостью 1 л растворяют 1 г вольфрамата натрия и 20 г фосфорномолибденовой кислоты в 750 мл воды. Закрывают колбу пробкой с обратным холодильником и, включив ток воды в холодильнике, содержимое кипятят 10 ч; затем его охлаждают, переливают в мерную колбу и доводят водный объем реактива до 1 л.
Реактив Эрлиха. 0,7 г п-диметиламинобензальдегида растворяют в 150 мл концентрированной соляной кислоты, приливают к 100 мл воды и смешивают. Раствор должен быть бесцветным или слегка желтым. Хранят в посуде из темного стекла. Реактив стабилен.
Реактив Эрлиха. 1 г п-диметиламинобензальдегида растворяют в мерной колбе на 50 мл в 35 мл ледяной уксусной кислоты, добавляют 8 мл 57%-ной хлорной кислоты и доводят до метки ледяной уксусной кислотой. Хранят в посуде из темного стекла в холодильнике не более недели.
Спиртовой раствор тимола (10%). 10 г очищенного тимола растворяют в 100 мл 96? этилового спирта. Получение очищенного тимола проводят следующим образом. 100 г тимола растворяют в 100 мл 96? этилового спирта, фильтруют. К фильтрату добавляют 1 л холодной дистиллированной воды, сильно встряхивают и оставляют стоять на 20 мин. Фильтруют и кристаллы, оставшиеся на фильтре, промывают два раза холодной дистиллированной водой. Сушат вначале на фильтровальной бумаге, потом в течение 2-3 дней в эксикаторе над безводным хлористым кальцием до постоянного веса.
Стандартный раствор. Приготовление стандартного раствора проводится смешением двух растворов: 1) 0,0962 н раствор хлористого бария: 1,175 г кристаллического BaCl2•2H2O растворяют в 100 мл воды в мерной колбе. 2) 0,2 н раствор серной кислоты. Далее получают суспензию сульфата бария: 3 мл 0,0962 н раствора хлористого бария вливают в мерную колбу на 100 мл и доводят объем 0,2 н раствором серной кислоты при температуре +10?С (при этой температуре размеры частиц преципитированного сульфата бария дают относительно стабильный результат).
Субстратно-буферный раствор: в пробирку наливают 10 мл воды и добавляют 0,028 г L-глутамил-п-нитроанилина и 0,082 г хлорида натрия и, не переставая перемешивать, растворяют содержимое пробирки на кипящей водяной бане в течение 60 сек. Затем раствор охлаждают до 37?С и добавляют 2,5 мл буферного раствора. Приготовленный раствор субстрата во время работы хранят в водяной бане при 37?С. Неиспользованный раствор субстрата можно хранить в холодильнике в течение недели. Субстрат плохо растворим и при комнатной температуре выпадает в осадок. Поэтому перед употреблением выкристаллизовавшийся субстрат растворяют нагреванием в кипящей водяной бане. Нагревание и растворение субстрата можно повторять не более двух раз.
Субстратный раствор для определения АлАТ (раствор № 1). Навески 29,2 мг б-кетоглутаровой кислоты и 1,78 г аланина (0,89 г б-аланина) взвешивают на аналитических весах и растворяют в 1 М растворе гидроксида натрия до полного растворения осадка (рН 7,4). Раствор переливают в колбу вместимостью 100 мл и доводят объем до метки 0,1 М фосфатным буфером (рН 7,4). Добавляют 1 каплю хлороформа. Раствор хранят в холодильнике в замороженном состоянии.
Субстратный раствор для определения АсАТ (раствор № 2). Навески 29,2 мг б-кетоглутаровой кислоты и 2,66 г б-аспарагиновой кислоты (1,33 г б-аспарагиновой кислоты) взвешивают на аналитических весах. Далее раствор готовят так же, как раствор № 1.
Субстратный раствор для определения глюкозофосфатизомеразы. Готовят мединалово-ацетатный буферный раствор с рН 7,4 (9,714 г ацетата натрия и 14,714 г мединала растворяют в воде и доводят объем до 500 мл). Смешивают 8,33 мл 0,03 М раствора двунатриевой соли глюкозо-6-фосфата с 25 мл мединалово-ацетатного буфера; добавляют к смеси 25 мл 0,1 М раствора соляной кислоты и доводят водой до 100 мл. Хранят на холоду.
Субстратный раствор для определения лактатдегидрогеназы. Смешивают по 1 мл 1 М раствора лактата натрия, 9 М раствора NаCl, 0,05 M Cl2, раствора НАД концентрации 10 г/л. Добавляют к содержимому по 2,5 мл 0,5 М раствора фосфатного буфера (рН 7,4) и 1 г/л раствора нитротетразолиевого синего. Перед употреблением к смеси прибавляют 0,25 мл раствора фенанзинметасульфата концентрации 1 г/л.
Субстратный раствор для определения фруктозобисфосфатальдолазы. 270 мг бариевой соли фруктозобисфосфата растворяют в 3,5 мл 1 М раствора соляной кислоты. Добавляют 1 мл 14%-ного раствора сульфата натрия, а выпавший при этом осадок удаляют центрифугированием. К надосадочной жидкости добавляют 1 каплю сульфата натрия. Появление мути свидетельствует о недостаточно полном осаждении ионов бария. В этом случае добавляют еще сульфата натрия и вновь центрифугируют. Центрифугат доводят 3%-ным раствором гидроксида натрия до рН 7,4-7,6, переносят в колбу вместимостью 25 мл и объем доводят до метки. Полученный раствор смешивают с 25 мл 0,56 М раствора гидразинхлорида, 25 мл 0,002 М раствора моноиодуксусной кислоты, 100 мл 0,5%-ного раствора карбоната натрия и 25 мл дистиллированной воды. Хранят в холодильнике.
Тимолово-вероналовый буфер. В мерной колбе на 100 мл смешивают 80 мл буферного раствора и 1 мл 10%-ного спиртового раствора тимола, встряхивают и доливают буферным раствором до метки. Величина рН должна составить 7,55.
о-Толуидиновый реактив. 0,15 г тиомочевины растворяют в 94 мл ледяной уксусной кислоты и смешивают с 6 мл перегнанного О-толуидина. Хранят в темной склянке.
Фенол, насыщенный водой. В 100 г перегнанного фенола добавляют 35 мл воды и перемешивают, слегка подогревая смесь для ускорения растворения фенола.
Фенолфталин, рабочий раствор. Готовят, растворяя 75 мг вещества в 15 мл 0,1 н раствора гидроксида натрия, раствор должен быть бесцветным или слегка розоватым, окрашенные растворы для работы не пригодны. Для увеличения стойкости реактива к нему добавляют 3 мг трилона, который, связывая соли тяжелый металлов, препятствует самоокислению фенолфталеина кислородом воздуха.
Фибрин. Фибрин бычьей крови отмывают от кровяных пигментов в проточной воде в течение нескольких дней до получения белого сгустка. Воду отжимают, а фибрин, залитый глицерином, хранят в плотно укупоренной банке. Перед употреблением фибрин отмывают от глицерина.
Фосфорно-ванилиновый реактив. 4 части (по объему) концентрированной ортофосфорной кислоты смешивают с 1 частью 0,6%-ного водного раствора ванилина. Реактив хранят в посуде из темного стекла при комнатной температуре.
Фруктозо-1,6-бисфосфат, натриевая соль. 2,0 мл 10%-ного раствора натриевой соли фруктозо-1,6-бисфосфата разводят в колбе на 25 мл водой до метки. Стабилен при условии хранения в холодильнике.
Цветной реактив на мочевину. Таблетку из набора для определения мочевины, содержащую диацетилмонооксим и тиосемикарбазид, растворяют при нагревании в колбе на 50 мл. Раствор устойчив в течение трех недель. Перед употреблением смешивают равные объемы приготовленного раствора и 9,6%-ного раствора серной кислоты.
Щелочной раствор в-глицерофосфата. В мерную колбу вместимостью 100 мл вносят 1 г в-глицерофосфата натрия и 0,85 г мединала, приливают около 30 мл дистиллированной воды, растворяют и доводят водой объем до метки. В другую мерную колбу вместимостью 100 мл вносят 50 мл приготовленного раствора в-глицерофосфата, 2,8 мл 0,1 М раствора гидроксида натрия и доводят дистиллированной водой до метки (рН раствора 8,6). Наслаивают на жидкость около 3 мл толуола. Хранят раствор в холодильнике не более 10 дней.
Размещено на Allbest.ru
Подобные документы
Работа и зона мощности, выполняемая спринтером бегуном в соревновательных условиях. Соотношение аэробных и анаэробных процессов в организме при ее выполнении. Биохимические изменения в мышцах, крови и моче спортсмена. Антиоксидантные системы организма.
курсовая работа [448,4 K], добавлен 01.12.2013Физико-химическая характеристика сточных вод. Связь структуры некоторых веществ, содержащихся в сточных водах коксохимического производства и их способность к биохимическому распаду. Технологические схемы биохимических установок для очистки стоков.
курсовая работа [733,6 K], добавлен 12.05.2014Гликозиды — органические соединения, история их изучения и свойства. Ботаническая, фармакологическая и химическая классификация. Образование гликозидов в растениях, их роль и методы выделения. Качественные реакции и количественное определение гликозидов.
презентация [1,6 M], добавлен 02.12.2015Характеристика химических свойств актинидов. Количественное определение трансплутониевых элементов. Отделение осаждением неорганическими и органическими реагентами. Методы выделения и разделения трансплутониевых элементов. Получение металлического урана.
реферат [75,3 K], добавлен 03.10.2010Методы фотометрического анализа. Количественное определение веществ в газовой хроматографии. Сущность амперометрического титрования. Природа происхождения атомных спектров. Типы радиоактивных превращений, используемых в радиометрических методах анализа.
контрольная работа [222,2 K], добавлен 17.05.2014Факторы, влияющие на скорость реакции: концентрация реагирующих веществ или давление, природа реагирующих веществ, температура процесса и наличие катализатора. Пример гомогенных и гетерогенных реакций. Принцип Ле Шателье. Распределение молекул по энергии.
лекция [144,0 K], добавлен 22.04.2013Методы окислительно-восстановительного титрования. Основные окислители и восстановители. Факторы, влияющие на окислительно-восстановительные реакции. Применение реакции окисления-восстановления в анализе лекарственных веществ. Растворы тиосульфата натрия.
презентация [1,0 M], добавлен 21.10.2013Способы выделения, очистки и анализа органических веществ. Получение предельных, непредельных и ароматических углеводородов, спиртов, карбоновых кислот. Получение и разложение фенолята натрия. Методы выделения белков. Химические свойства жиров, ферментов.
лабораторная работа [201,8 K], добавлен 24.06.2015Хроматографическая система - метод разделения и анализа смесей веществ. Механизм разделения веществ по двум признакам. Сорбционные и гельфильтрационные (гельпроникающие) методы. Адсорбционная, распределительная, осадочная и ситовая хроматография.
реферат [207,8 K], добавлен 24.01.2009Влияние природы газа-носителя и его параметров на качество разделения веществ. Основные требования к газу-носителю. Газовая хроматография с применением паров. Природа неподвижной жидкости. Полярные и неполярные соединения. Образование водородной связи.
реферат [18,5 K], добавлен 10.02.2010