Клинико-биохимические исследования

Основные методы разделения и выделения веществ при биохимических исследованиях. Количественное определение белка в сыворотке крови. Химическая природа нуклеопротеидов. Применение единиц СИ для выражения результатов клинико-биохимических исследований.

Рубрика Химия
Вид учебное пособие
Язык русский
Дата добавления 11.03.2013
Размер файла 4,2 M

Отправить свою хорошую работу в базу знаний просто. Используйте форму, расположенную ниже

Студенты, аспиранты, молодые ученые, использующие базу знаний в своей учебе и работе, будут вам очень благодарны.

Осадок эритроцитов в центрифужных пробирках вновь суспензируют, втягивая и выдувая жидкость пипеткой, и оставляют их стоять при 20-22?С еще на 30 мин. По истечении этого времени пробы вновь центрифугируют в том же режиме, отбирают по 0,1 мл надосадочной жидкости в три чистые пробирки и приливают в них по 5 мл аммиачного раствора.

После добавления аммиачного раствора все шесть пробирок закрывают кусочком фольги и энергично встряхивают содержимое 2 мин. Затем измеряют экстинкцию в пробах против контроля на ФЭКе или на спектрофотометре при 540 нм (светофильтр зеленый) в кювете с толщиной слоя 1 см.

Расчет проводят по формуле

Е3100 Е2100

х = -------- и А = ---------- ,

Е1 Е1

где х - степень гемолиза при добавлении эргокальциферола, %;

Е1 - экстинкция пробы с эргокальциферолом;

Е3 - экстинкция контрольной пробы;

А - степень гемолиза после совместного добавления эргокальциферола и б-токоферола, %

Е2 - экстинкция пробы с эргокальциферолом и б-токоферолом.

Торможение антиоксидантом пероксидного окисления (в %) рассчитывают по формуле

А100

---------- .

х

Оформление работы. Провести необходимые расчеты и сделать вывод о причинах спонтанного гемолиза, а также о действии изучаемых прооксидантов и антиоксидантов.

Практическое значение работы. По степени гемолиза эритроцитов можно судить о состоянии антиокислительных систем клетки, в частности, об обеспеченности организма витамином Е. При нормальной обеспеченности спонтанный гемолиз, как правило, составляет 2-10%. Недостаток витамина Е резко повышает этот показатель. Имеется соответствие между спонтанным или индуцированным гемолизом и содержанием токоферолов в сыворотке крови. Способность витамина D2 ускорять пероксидное окисление липидов в мембранах эритроцитов и других клеток свидетельствует о его прооксидантных свойствах.

Работа 108. Определение скорости пероксидного окисления липидов в биомембранах

Реактивы. Трис-HCl буфер, 0,04 М раствор с рН 7,4*; соль Мора - Fe(NH4)2(SO4)2, 4·10-5 М свежеприготовленный раствор; трихлоруксусная кислота, 40%-ный раствор; тиобарбитуровая кислота, 0,8%-ный свежеприготовленный раствор; оксалат натрия, 1,34%-ный раствор; хлорид натрия, 0,9%-ный раствор; хлорид калия, 1,2%-ный раствор.

Оборудование. Штатив с пробирками; пипетки вместимостью 0,1; 1 и 5 мл; пастеровские пипетки; резиновая груша; водяная баня с термометром или водяная баня аппарата Варбурга; аптечные весы с разновесами; спектрофотометр или ФЭК типа КФК-2.

Материал.

Кровь, взятая в смеси с раствором оксалата натря в соотношении 10:1 (по объему).

Печень свежезабитого животного.

а. Определение скорости пероксидного окисления липидов в мембранах эритроцитов. Метод основан на определении содержания конечного продукта пероксидного окисления липидов - малонового диальдегида, который при взаимодействии с тиобарбитуровой кислотой образует окрашенный в розовый цвет триметиновый комплекс, имеющий максимум поглощения при 530-532 нм:

Окраска раствора пропорциональна концентрации малонового диальдегида. Молярный коэффициент экстинкции 1,56·10-5л·моль-1·см-1.

Ход определения. Оксалатную кровь центрифугируют 10 мин при 3000 об/мин, осаждая эритроциты. Верхний слой отсасывают, а осадок эритроцитов трижды промывают раствором хлорида натрия и переосаждают при том же режиме центрифугирования.

Отбирают 0,5 мл осадка эритроцитов в чистую центрифужную пробирку, приливают равный объем дистиллированной воды и оставляют стоять 30 мин для полного гемолиза.

Пробу центрифугируют 30 мин при 3000 об/мин, осторожно отсасывают пастеровской пипеткой надосадочную жидкость с серой прослойкой мембран эритроцитов и переносят в другую пробирку.

Берут три чистые пробирки. В первую опытную вносят по 0,3 мл растворов соли Мора, трис-буфера, аскорбиновой кислоты и 0,1 мл полученной взвеси мембран эритроцитов. Во вторую опытную приливают 0,3 мл трис-буфера, 0,1 мл взвеси мембран эритроцитов и 0,6 мл дистиллированной воды. В третью (контроль) добавляют те же реактивы, что и в первую пробирку, после чего сразу приливают 1 мл раствора трихлоруксусной кислоты.

Все пробирки помещают в водяную баню (или в баню аппарата Варбурга) и инкубируют пробы 20 мин при 37?С. Реакцию в опытных пробах останавливают, добавляя в обе пробирки по 1 мл раствора трихлоруксусной кислоты.

Все пробы центрифугируют 15 мин при 3000 об/мин. Сливают надосадочную жидкость (ее объем 2 мл) в три другие пробирки, прибавляют по 1 мл раствора тиобарбитуровой кислоты и помещают пробы на 10 мин в кипящую водяную баню. Затем пробирки охлаждают в ледяной воде.

Измеряют экстинкцию полученных проб против контроля на спектрофотометре при 532 нм или на ФЭКе (светофильтр зеленый) в кювете с толщиной слоя 1 см.

Расчет по формулам

Е13•6 Е23•6

х1 = -------- и х2 = -------- ,

0,156 0,156

где х1 - скорость образования в пробе малонового диальдегида в присутствии прооксидантов (индуцированное пероксидное окисление липидов), нмоль•ч-1;

х2 - скорость образования в пробе малонового диальдегида в отсутствие прооксидантов (спонтанное пероксидное окисление липидов), нмоль•ч-1;

3 - объем пробы, мл;

6 - коэффициент пересчета на 1 час;

0,156 - экстинкция 1 нмоля при 532 нм;

Е1 и Е2- экстинкции соответственно первой и второй проб против контроля.

б. Определение скорости пероксидного окисления липидов в гомогенатах тканей. Принцип метода описан выше.

Ход определения. Навеску 0,5 г печени гомогенизируют в 19,5 мл охлажденного до 0-4?С раствора хлорида калия, поместив стакан гомогенизатора в лед или снег. Полученный гомогенат сливают в пробирку.

В одну пробирку наливают 2,0 мл гомогената и 0,2 мл дистиллированной воды, во вторую - 2 мл гомогената и по 0,1 мл растворов аскорбиновой кислоты и соли Мора, в третью - те же вещества, что и во вторую, и, кроме того, добавляют 1 мл раствора трихлоруксусной кислоты.

Все пробирки помещают на 10 мин в водяную баню при 37?С, после чего прибавляют в первые две пробирки по 1 мл раствора трихлоруксусной кислоты. Далее все пробы центрифугируют 10 мин при 3000 об/мин.

По 2 мл надосадочной жидкости отбирают в три чистые пробирки, приливают по 1 мл раствора тиобарбитуровой кислоты и помещают пробы в кипящую водяную баню на 10 мин. После этого их охлаждают в ледяной воде до комнатной температуры.

Измеряют экстинкцию всех проб против контрольного раствора (2 мл раствора хлорида калия, 1 мл раствора трихлоруксусной кислоты и 1 мл раствора тиобарбитуровой кислоты, выдерживают 10 мин на кипящей водяной бане и охлаждают в ледяной воде до комнатной температуры) на спектрофотометре при 532 нм или ФЭКе (светофильтр зеленый) в кювете с толщиной слоя 1 см.

Расчет проводят по формулам:

Е1(Е2)3•3,2•6 Е33•3,2

х1 (х2)= ------------ и х3 = ------------ ,

0,156•2 0,156•2

где х1 - скорость спонтанного пероксидного окисления липидов в гомогенатах, измеряющаяся в наномолях образовавшегося малонового диальдегида в пробе за час инкубации;

х2 - скорость аскорбат-зависимого неферментативного пероксидного окисления липидов в наномолях образовавшегося малонового диальдегида в пробе за час инкубации;

х3 - содержание малонового диальдегида в исходном гомогенате, нмоль;

Е1, Е2 и Е3- экстинкции соответственно первой, второй и третьей проб;

3,2 - общий объем исследуемых проб, мл;

2 - объем надосадочной ждкости, взятой на определение малонового диальдегида, мл;

3 - объем проб, взятых на фотометрию, мл;

0,156 - экстинкция 1 нмоль малонового диальдегида в 1 мл при 532 нм;

Оформление работы. Рассчитать полученные результаты, дать сравнительную характеристику скорости спонтанного и индуцированного пероксидного окисления липидов, сделать вывод о возможности использования метода для оценки скорости пероксидного окисления липидов и его применимости на практике.

Практическое значение работы. Методы определения скорости пероксидного окисления липидов биомембран важны для оценки действия на эту систему природных веществ и ксенобиотиков, среди которых могут быть как прооксиданты, так и антиоксиданты. Эти исследования дают возможность практически использовать выявленный эффект различных соединений, в том числе лекарственных средств.

Увеличение скорости пероксидного окисления липидов возможно при старении, гиповитаминозе Е, дефиците селена, действии ионизирующего облучения, гипербарической оксигенации (действии кислорода под повышенным давлением), при некоторых заболеваниях и патологических состояниях (сердечно-сосудистых заболеваниях, гипоксии, отравлении четыреххлористым углеродом, гипервитаминозах А и D и т.д.).

Гемоглобин и кислород, содержащиеся в эритроцитах, ускоряют пероксидное окисление липидов, что вызывает повреждение мембран эритроцитов и их гемолиз. Защита эритроцитарных мембран осуществляется системой антиоксидантов: токоферолами, имеющимися в мембранах и плазме крови, глутатионпероксидазой, обезвреживающей гидропероксиды липидов, и альбумином плазмы, который связывает пероксиды липидов.

При недостаточности антиоксидантной системы развиваются гемолитические состояния, которые часто провоцируются некоторыми пищевыми факторами и лекарственными средствами.

ПРИЛОЖЕНИЕ

Некоторые биохимические показатели жидких сред организма

КРОВЬ 1. Общие показатели цельной крови

Эритроциты

4,0-5,0•1012 /л

Гемоглобин:

мужчины

130-160 г/л

женщины

120-140 г/л

Цветной показатель

0,8-1,0

Фетальный гемоглобин

0,75-0,97%

Гликозилированный гемоглобин

3-5,5% от общего гемоглобина

Ретикулоциты

0,2-1,0%

Лейкоциты

4,0-9,0•109 /л (100%)

Нейтрофилы

2,0-5,5•109 /л (47-72%)

Эозинофилы

0,02-0,3•109 /л (1-5%)

Базофилы

0-0,065•109 /л (0-1%)

Лимфоциты

1,2-3,0•109 /л (19-37%)

Моноциты

0,09-0,6•109 /л (3-11%)

Тромбоциты

180-320•109 /л

СОЭ

3-12 мм/ч

2. Биохимические показатели плазмы крови

а. Белки

Общие белки

65-85 г/л

Альбумины

35-60 г/л

Преальбумины

0,1-0,4 г/л

Глобулины:

25-35 г/л

б1-глобулины

2,5-5%

б2-глобулины

7-13%

в-глобулины

8-14%

г-глобулины

12-22%

фибриноген

2,0-7,0 г/л

Липопротеиды:

хиломикроны

0-0,5 г/л

пре-в-липопротеиды

1,5-2,0 г/л

в-липопротеиды

3,0-6,0 г/л

Гаптоглобин

0,28-1,90 г/л

б. Ферменты

Аланинаминотрансфераза

0,16-0,68 ммоль/(ч•л)

Аспартатаминотрансфераза

0,10-0,45 ммоль/(ч•л)

Лактатдегидрогеназа

0,8-4,0 ммоль/(ч•л)

Креатинкиназа

до 1,2 ммоль Р/(ч•л)

Фруктозо-1,6-бисфосфат-альдолаза

3,6-21,8 мкмоль/(ч•л)

Сорбитдегидрогеназа

0,9 мкмоль/(ч•л)

Ацетилхолинэстераза

160-340 ммоль/(ч•л)

б-Амилаза

15-30 г/(ч•л)

Кислая фосфатаза

0,05-0,13 ммоль/(ч•л)

Щелочная фосфатаза

0,5-1,3 ммоль/(ч•л)

г-глютамилтрансфераза

167-1767 нмоль/с•л

в. Небелковые азотсодержащие вещества

Азот остаточный (небелковый)

19,5-30 ммоль/л

Азот б-аминокислот

3,5-5,5 ммоль/л

Креатин

15-70 мкмоль/л

Креатинин

40-150 мкмоль/л

Мочевина

3,0-7,0 ммоль/л

Мочевая кислота

0,1-0,4 ммоль/л

Пигменты:

билирубин общий

8,0-20,0 мкмоль/л

билирубин неконъюгированный

75% общего

билирубин конъюгированный

25% общего

моноглюкуронид

5% общего

диглюкуронид

20% общего

г. Углеводы и метаболиты

Глюкоза

2,8-4,0 ммоль/л

Сахар

0,8-1,2 г/л

Лактат

0,5-2,0 ммоль/л

Пируват

0,1-0,13 ммоль/л

Сиаловые кислоты

2,00-2,36 ммоль/л

д. Липиды и метаболиты

Общие липиды

4,0-8,0 г/л

Триацилглицерины

0,5-2,1 ммоль/л

Фосфолипиды общие

2,0-3,5 ммоль/л

Холестерин общий

4,0-6,2 ммоль/л

Жирные кислоты свободные

0,3-0,8 ммоль/л

Кетоновые тела (в пересчете на ацетон)

100-600 мкмоль/л

е. Минеральные вещества

Плазма

Эритроциты

Калий

3,6-5,0 ммоль/л

80-100 ммоль/л

Натрий

135-155 ммоль/л

8,0-13 ммоль/л

Кальций

2,25-2,75 ммоль/л

Магний

0,7-1,2 ммоль/л

1,4-2,4 ммоль/л

Фосфор

3,0-5,0 ммоль/л

13-20 ммоль/л

Хлор

97-108 ммоль/л

75-85 ммоль/л

Сульфаты

0,4-0,6 ммоль/л

Железо

12-32 мкмоль/л

ж. Гормоны, медиаторы и их метаболиты

Инсулин

0,5-5,0 мкг/л

Адреналин

0,1-0,5 нмоль/л

Тироксин (общий)

90-120 нмоль/л

Альдостерон

300-800 нмоль/л

Эстрогены

0,07-1,7 ммоль/л

Тестостерон:

мужчины

10-40 нмоль/л

женщины

0,7-3,0 нмоль/л

17-оксикортикостероиды

300-600 нмоль/л

Гистамин

2,0-40 нмоль/л

Серотонин

30-60 нмоль/л

Осадочные пробы

Тимоловая проба

0-4 ед. мутности

Сулемовая проба

1,6-2,2 мл сулемы

Проба Вельтмана

0,4-0,5 хлорида кальция

з. Витамины

А (ретинол)

0,5-2,0 мкмоль/л

Е (токоферол)

20-40 мкмоль/л

В1 (тиамин)

40-400 нмоль/л

В2 (рибофлавин)

0,06-1,0 мкмоль/л

В3 (пантотеновая кислота)

0,3-1,5 мкмоль/л

В5 (никотиновая кислота)

2,0-12 мкмоль/л

С (аскорбиновая кислота)

30-90 мкмоль/л

Н (биотин)

40-75 нмоль/л

МОЧА 1. Общие клинические нормы

Объем:

мужчины

1500 мл/сут

женщины

1200 мл/сут

Цвет

Соломенно-желтый

Плотность

1,001-1,040 (в среднем 1,012-1,020)

рН

5,0-7,0

Осмотическая концентрация

1000-1200 мосмоль/л

Белки

Следы

Глюкоза

Следы

Ацетоновые тела

Следы

Лейкоциты

2•106 /л (по Нечипоренко)

Эритроциты

1•106 /л (по Нечипоренко)

2. Специальное исследование мочи

а. Ферменты

б-амилаза

28-160 г/(ч•л)

б. Небелковые азотсодержащие вещества

Аминокислоты (по азоту)

0,29-5,35 ммоль/сут

Мочевина

333-582,8 ммоль/сут

Мочевая кислота

2,36-5,9 ммоль/сут

Креатинин

4,4-17,6 ммоль/сут

Креатин

0-0,456 ммоль/сут

Аммиак

30-60 ммоль/сут

Дельта-аминолевулиновая кислота

3,9-19,0 мкмоль/г креатинина

Копропорфирин

30,5-122,0 нмоль/г креатинина

в. Минеральные компоненты

Калий

61-79 ммоль/сут

Натрий

174-222 ммоль/сут

Кальций

4,02-4,99 ммоль/сут

Магний

1,20-8,19 ммоль/сут

г. Гормоны, медиаторы и их метаболиты

Альдостерон

2,8-41,6 нмоль/сут

17-Оксикортикостероиды (общие)

3,61-20,38 мкмоль/сут

17-Кетостероиды:

мужчины

22,9-81,1 мкмоль/сут

женщины

17,2-62,5 мкмоль/сут

Ванилилминдальная кислота

3,53-19,2 мкмоль/сут

д. Витамины

С (аскорбиновая кислота)

113,5-170,3 мкмоль/сут

В1 (тиамин)

0,14-0,29 ммоль/сут

В2 (рибофлавин)

1,08-1,80 ммоль/сут

ЖЕЛУДОЧНЫЙ СОК

рН

1,5-3,5

Общая кислотность

40-60 ммоль/л (40-60 ед.)

Свободная соляная кислота

20-40 ммоль/л (20-40 ед.)

Связанная соляная кислота

5-20 ммоль/л (5-20 ед.)

СПИННО-МОЗГОВАЯ ЖИДКОСТЬ

Плотность

1,006-1,007

Цвет

Бесцветная

Белок

0,22-0,33 г/л

Альбумины

0,17-0,24 г/л

Глобулины

0,025-0,05 г/л

Альбумины

58,3%

Преальбумины

5,7%

б1-глобулин

5%

б2-глобулин

7%

в-глобулин

15,5%

г-глобулин

8,5%

Глюкоза

2,50-3,89 ммоль/л

Фруктоза

0,1-0,2 ммоль/л

Хлориды

12-130 ммоль/л

НЕКОТОРЫЕ ФУНКЦИОНАЛЬНЫЕ ПРОБЫ С ПРИМЕНЕНИЕМ БИОХИМИЧЕСКИХ МЕТОДОВ

Проба на коллоидную устойчивость (проба Вельтмана в модификации Тейфеля)

4-5•103 мл CaCl2 /л

Сулемовая проба (по Гринстедту)

3,2-4,4•103 мл сулемы/л

Клеточная фильтрация

7,2 л/ч

Клирентс мочевины:

«максимальный»

3,84-5,94 л/ч

«стандартный»

2,4-3,78 л/ч

2. Приготовление буферных растворов

1. Фосфатно-цитратный буфер (0,1 М, рН 5,0-8,0)

Исходные растворы:

0,2 М раствор Na2HPO4•2H2O (35,61 г соли растворяют в дистиллированной воде в мерной колбе вместимостью 1 л).

0,1 М раствор лимонной кислоты (21,01 г кислоты растворяют в дистиллированной воде в колбе вместимостью 1 л). Для получения нужного рН смешивают растворы в следующих количествах:

рН

Na2HPO4 0,2 М, мл

Лимонная кислота, 0,1 М, мл

5,6

5,8

4,2

6,4

6,9

3,1

6,8

7,7

2,3

7,2

8,7

1,3

8,0

9,7

0,3

2. Фосфатный буфер (0,1 М, рН 5,8-8,0)

Na2HPO4 0,2 М, мл

Na2H2PO4 0,2 М, мл

Вода, мл

рН

8,0

92,0

До 200

5,8

12,3

87,7

-?-

6,0

18,5

81,5

-?-

6,2

26,5

73,5

-?-

6,4

37,5

62,5

-?-

6,6

49,0

51,0

-?-

6,8

61,0

39,0

-?-

7,0

72,0

28,0

-?-

7,2

81,0

19,0

-?-

7,4

87,0

13,0

-?-

7,6

91,5

8,5

-?-

7,8

94,7

5,3

-?-

8,0

3. Трис-буфер (0,1 М, рН 7,1-9,2)

24,2 г трис-(гидроксиметил) аминометана растворяют в мерной колбе вместимостью 1 л (в 500 мл Н2О). Для получения необходимого значения рН прибавляют указанный в таблице объем 1 М HCl и доводят объем дистиллированной водой до 1000 мл.

рН

HCl, мл

рН

HCl, мл

7,1

189

8,3

70

7,2

183

8,5

50

7,4

170

8,7

16,5

7,8

150

9,2

5,75

8,1

90

4. Ацетатный буфер (0,2 М, рН 3,6-5,8)

Ацетат натрия 0,2 М, мл

Уксусная кислота 0,2 М, мл

рН

Ацетат натрия 0,2 М, мл

Уксусная кислота 0,2 М, мл

рН

0,75

9,25

3,6

5,90

4,10

4,8

1,20

8,80

3,8

7,00

3,00

5,0

1,80

8,20

4,0

7,90

2,10

5,2

2,65

7,35

4,2

8,60

1,40

5,4

3,70

6,30

4,4

9,10

0,90

5,6

4,90

5,10

4,6

9,40

0,60

5,8

5. Глициновый буфер (0,05 М, рН 8,6-10,6)

Смешивают указанные объемы глицина и гидроксида натрия и доводят объем дистиллированной водой до 200 мл

рН

Глицин 0,2 М, мл

NaOH 0,2 М, мл

рН

Глицин 0,2 М, мл

NaOH 0,2 М, мл

8,6

50

4,0

9,6

50

22,4

8,8

50

6,0

9,8

50

27,2

9,0

50

8,8

10,0

50

32,0

9,2

50

12,0

10,4

50

38,6

9,4

50

16,8

10,6

50

45,5

3. Приготовление некоторых реактивов

Активирующий раствор. В мерную колбу вместимостью 100 мл помещают 155 мг восстановленного глутатиона и 400 мг кристаллического альбумина, растворяют их в 50 мл дистиллированной воды и с помощью 1 М раствора NaOH доводят рН до 8,2. Затем доливают до метки воду.

Аммиачный раствор нитрата серебра. К 2-3%-ному раствору серебра добавляют концентрированный раствор аммиака до растворения осадка.

Ацетатный буферный раствор рН 3,6. Готовят смешивая 463 мл раствора А и 37 мл раствора Б, доводят до метки водой в мерной колбе до 1 л. Раствор А: 11,55 мл ледяной уксусной кислоты разводят водой в мерной колбе на 1 л. Раствор Б: 27,2 г ацетата натрия растворяют в воде в колбе на 1 л.

Биуретовый реактив (реактив Бенедикта). 173 г цитрата натрия и 100 г карбоната натрия растворяют в 300 мл дистиллированной воды на водяной бане. Отдельно в 300 мл воды растворяют 17,3 г сульфата меди. Оба раствора сливают и доводят общий объем до 1 л.

Буферный раствор. 2,76 г веронала и 2,06 г мединала растворяют в 1 л дистиллированной воды. Хранят в холодильнике, при появлении осадка раствор не пригоден к употреблению.

Взвесь угля. 0,25 г активированного угля помещают в мерную колбу на 100 мл и разбавляют ацетатным буфером рН 3,6. Перед употреблением тщательно встряхивать.

Восстанавливающий реактив. 1%-ный раствор аскорбиновой кислоты, приготовленный на 0,016%-ном растворе сульфата меди.

Гемоглобин, 4%-ный раствор на ацетатном буфере (рН 4,0). Сначала готовят 8%-ный раствор гемоглобина на 8 моль/л растворе мочевины, выдерживают его 2 ч в термостате при 60?С и перед употреблением разводят ацетатным буфером в 2 раза.

Глицил-глицин. 0,55 ммоль/л, рН - 8,3. 3,63 г глицил-глицина помещают в мерную колбу на 50 мл, доливают водой до метки (буферный раствор).

Денатурирующий раствор. Растворить 1 ампулу ацетонциангидрина (0,5 мл - 0,47 г из набора по определению гемоглобина в крови) в 1 л дистиллированной воды.

Диазореактив для определения билирубина. Готовят два раствора. Первый раствор: 3 г сульфаниловой кислоты растворяют в 500 мл дистиллированной воды, добавляют 15 мл концентрированной соляной кислоты (на горячей бане), доводят объем водой до 1 л. Второй раствор: 0,5%-ный водный раствор нитрита натрия. Перед употреблением смешивают 5 мл первого раствора и 0,25 мл второго.

Диацетил, рабочий раствор. 1 мл диацетила разводят дистиллированной водой в мерной колбе на 100 мл (раствор хранят в холодильнике). Рабочий раствор диацетила готовят перед употреблением, добавляя в 1 мл основного раствора диацетила 24 мл дистиллированной воды.

Дифениламиновый реактив. 1 г дифениламина растворяют в 100 мл ледяной уксусной кислоты. К раствору прибавляют 2,75 мл концентрированной серной кислоты.

Калибровочный раствор. Основной - 0,75 ммоль/л АЛК (100 мкг/мл) в пересчете на основание: 0,00635 г АЛК гидрохлорида растворяют в ацетатном буфере рН 3,6 в мерной колбе на 50 мл. Хранят в холодильнике не более месяца. Из основного готовится рабочий калибровочный раствор, 1 мкг/мл. Готовят перед употреблением разведением основного раствора ацетатным буфером в 100 раз.

Калибровочный раствор. 22,5 мг диоксиацетона при нагревании растворяют в 25 мл воды. 1 мл такого раствора содержит 10 мкмолей диоксиацетона. В ряд пробирок (см. работу) разливают калибровочный раствор диоксиацетона, доливают до нужного объема и далее проводят реакцию также, как и при определении активности фермента.

Калибровочный (стандартный) раствор железа (30 мкмоль/л).

Сначала готовят соли Мора.

содержащий 3 ммоль/л, растворяя 1,178 г в 5 мл 0,3 н. соляной кислоты, после чего доводят до 1 л водой (подкисленной 1 мл концентрированной серной кислоты). Рабочий стандартный раствор железа получают из основного путем разведения подкисленной водой в 100 раз. Полученный раствор содержит 30 мкмоль/л или 1,67 мкг/мл железа.

Кофеиновый реактив. 1 г чистого кофеина, 7,5 г бензоата натрия, 12,5 г ацетата натрия растворяют в 90 мл дистиллированной воды, нагревают до 50-60?С, перемешивают, охлаждают и доводят до 100 мл дистиллированной водой.

Молибдат аммония в азотной кислоте. 7,5 г молибдата аммония растворяют в 100 мл воды и прибавляют 100 мл 32%-ной азотной кислоты.

Моча при алкаптонурии. При отсутствии патологической в нормальную мочу добавляют гидрохинон из расчета 20 г/л.

Моча при гипераминоацидурии. При отсутствии патологической в нормальную мочу добавляют глицин из расчета 1,0 г/л.

Моча при мукополисахаридозе. При отсутствии патологической в нормальную мочу добавляют хонсурид или гепарин из расчета 0,05-0,1 г/л.

Моча при пентозурии. При отсутствии патологической в мочу добавляют ксилулозу или рибозу из расчета 1,0 г/л.

Моча при тирозинозе. При отсутствии патологической в нормальную мочу добавляют тирозин из расчета 0,4-0,5 г/л.

Моча при фруктозурии. При отсутствии патологической в нормальную мочу добавляют фруктозу из расчета 0,3-0,4 г/л.

Моча при цистинурии. При отсутствии патологической в нормальную мочу добавляют цистин из расчета 0,4-0,5 г/л.

Натрия ацетат 3-водный, насыщенный раствор. 375 г ацетата натрия 3-водного (или 226 г безводной соли) растворяют в 250 мл теплой воды, охлаждают до комнатной температуры. Хранят при комнатной температуре. Раствор должен быть бесцветным и прозрачным.

Натрий фосфат двузамещенный 0,25 моль/л. Готовят, растворяя 9,7 г Na2HPO4•12H2O или 18 г Na2HPO4•12H2O в воде в колбе на 200 мл. При добавлении 2 мл этого раствора к 1 мл раствора трихлоруксусной кислоты рН должен быть в пределах 5,0-6,0.

Основной калибровочный раствор креатинина, 10 ммоль/л. 113,1 мг креатинина доводят до 100 мл 0,1 моль/л раствором соляной кислоты. При построении калибровочного графика из основного раствора готовят рабочий раствор путем разведения основного раствора водой в 100 раз, 1 мл раствора содержит 0,1 ммоль креатинина. Исходя из этого получают ряд пробирок с соответствующими концентрациями креатина.

Окислительная смесь для определения тиамина. К 8 мл 1%-ного гексацианоферрата (III) калия приливают 20 мл 30%-ного раствора NaOH, тщательно перемешивают. Готовят перед употреблением.

Орциновый реактив. К 1 г орцина прилить 500 мл 30%-ной соляной кислоты (плотностью 1,15 г/см3). Перемешать до растворения и добавить 4-5 мл 10%-ного раствора хлорида железа (III) FeCl3. Реактив хранят в плотно закупоренной темной склянке.

Основной калибровочный раствор п-нитроанилина. 0,0829 г п-нитроанилина помещают в мерную колбу на 100 мл, доводят до метки водой и растворяют.

Осаждающий раствор. Растворить 561 г сульфата аммония в 1 л дистиллированной воды и через сутки профильтровать.

Основной фосфатный буферный раствор и его рабочие растворы № 1-4. Растворяют 33,5 г NaOH в 400 мл воды в мерной колбе вместимостью 500 мл и добавляют 226,8 г KH2PO4, встряхивают до полного растворения, охлаждают и доливают водой до метки. Для приготовления рабочих растворов основного фосфатного буфера в мерные колбы вместимостью 100 мл отмеривают следующие объемы основного фосфатного буфера (в мл): № 1 - 92,51; № 2 - 74,91; № 3 - 59,18 и № 4 - 48,68, после чего доводят их содержимое водой до метки.

Пикриновая кислота, насыщенный раствор. Товарная пикриновая кислота содержит 15-20% влажности, кислоту не сушить. Взрывоопасно! В 100 мл воды растворяют 2 г пикриновой кислоты при нагревании в горячей бане. После этого раствор оставляют стоять на 24 часа, периодически перемешивая. Затем раствор фильтруют. Раствор стабилен и хранится в посуде из темного стекла.

Пирофосфатный буфер 0,05 М с рН 8,2. Переносят 4,46 г пирофосфата натрия в мерную колбу вместимостью 200 мл, растворяют его примерно в 100 мл воды, доводят рН с помощью 0,1 М раствора HCl до 8,2 и доливают дистиллированной водой до метки.

Пирофосфатный буфер 0,1 М с рН 8,5. Переносят 4,46 г пирофосфата натрия в мерную колбу вместимостью 100 мл, растворяют его в 50 мл воды, доводят рН с помощью 0,1 М раствора HCl до 8,5 и доливают дистиллированной водой до метки.

Рабочий реактив. Готовят в день определения, смешивая 30 частей 0,3 н гидроксида натрия. 2 части 0,5% раствора фенолфталеина и 1 часть 0,12% раствора сульфата меди.

Раствор ацетонциангидрина. Растворить 1 ампулу ацетонциангидрина (0,5 мл - 0,47 г из набора по определению гемоглобина в крови) в 1 л дистиллированной воды.

Раствор ферриацетонциангидрина. Растворить в 1 л дистиллированной воды 200 мг железосинеродистого калия и 1 ампулу (0,5 мл - 0,47 г) ацетонциангидрина: возможно использование из набора реактивов для приготовления трансформирующего раствора по определению гемоглобина крови. Устойчив в течение нескольких месяцев при хранении в посуде из темного стекла при комнатной температуре.

Раствор глюоксидазы. Содержит около 300 ед. в 1 мг. Готовят, растворяя соответствующее количество сухого препарата в 10 мл воды.

Раствор сульфонированного бато-фенантролина. В пробирке к 100 мг бато-фенантролина приливают 0,5 мл хлорсульфоновой кислоты, нагревают на кипящей водяной бане 30 с, охлаждают и медленно приливают 10 мл бидистиллированной воды, вновь нагревают на водяной бане в течение 5 мин. Смесь переносят в колбу на 200 мл, добавляют 100 мл воды, рН раствора доводят до 4-5 н NaOH и добавляют водой до объема 200 мл.

Раствор иода в иодиде калия (раствор Люголя). В 100 мл дистиллированной воды растворяют 20 г иодида калия и 10 г иода. Перед употреблением раствор разводят в 5 раз.

Раствор п-нитрозодиметиланилина (НДМА). Имеющийся в продаже препарат НДМА перекристаллизовывают из этилового эфира. Для измерения алкогольдегидрогеназы 1 мг НДМА растворяют в 100 мл 0,1 М пирофосфатного буфера (рН 8,5). Полученный раствор фильтруют через бумажный фильтр и разводят фильтрат в 2 раза тем буфером. Хранят при 4?С в течение двух месяцев.

Реактив Илька. К 5 частям (по объему) уксусного ангидрида добавляют 1 часть ледяной уксусной кислоты, затем постепенно вливают 1 часть концентрированной серной кислоты. Хранить реактив на холоду!

Реактив Миллона. (Готовят под тягой!) В 57 мл концентрированной азотной кислоты растворяют 40 г ртути сначала на холоду, а затем нагревая на водяной бане. Полученный раствор разбавляют 2 объемами воды, дают отстояться и сливают с осадка. Хранят во флаконе из темного стекла.

Реактив молибдата аммония. 2,5 г молибдата аммония растворяют в 60 мл дистиллированной воды, фильтруют. Раствор вносят в колбу вместимостью 100 мл. В другой колбе к 25 мл дистиллированной воды приливают 7,5 мл концентрированной серной кислоты. Второй раствор приливают к первому, охлаждают и доводят дистиллированной водой до метки. Раствор пригоден в течение месяца.

Реактив «НАДИ». 1%-ный раствор диметил-п-фенилендиамина смешивают с равным объемом 1%-ного раствора б-нафтола в спирте и 1,5%-ного раствора карбоната натрия. Раствор окрашен в темно-коричневый цвет и не должен иметь розового оттенка. Готовят за 1 ч до занятия.

Реактив Наша. В колбу вместимостью 100 мл вносят 15,4 г ацетата аммония, 0,3 г ледяной уксусной кислоты и 0,2 г ацетилацетона, растворяют в дистиллированной воде и доводят объем до метки.

Реактив Несслера. В мерной колбе вместимостью 500 мл смешивают 150 г иодида калия, 110 г иода, 100 мл дистиллированной воды и около 140-150 г металлической ртути и сильно встряхивают в течение 15 мин. При этом раствор самопроизвольно разогревается, и окраска, обусловленная растворенным иодом, постепенно бледнеет. Затем смесь начинают охлаждать под струей воды до сохранения отчетливой красной окраски, после чего содержимое встряхивают до перехода красной окраски в зеленоватую. После декантации осадок ртути тщательно промывают водой. Объединяют раствор и промывные воды, разбавляют их водой до 2 л. Отбирают 75 мл полученного раствора в мерную колбу вместимостью 0,5 л, содержащую 75 мл воды и 350 мл 10%-ного раствора гидроксида натрия и доводят водой до метки.

Реактив Фелинга. Готовят отдельно два раствора. Раствор 1: в мерной колбе вместимостью 1 л растворяют 200 г сегнетовой соли и 150 г NaOH и доводят водой до метки. Раствор 2: в мерной колбе вместимостью 1 л растворяют в воде 40 г сульфата меди (II) и доводят водой до метки. Перед употреблением смешивают равные объемы этих растворов.

Реактив Фолина. В колбе вместимостью 1 л растворяют 1 г вольфрамата натрия и 20 г фосфорномолибденовой кислоты в 750 мл воды. Закрывают колбу пробкой с обратным холодильником и, включив ток воды в холодильнике, содержимое кипятят 10 ч; затем его охлаждают, переливают в мерную колбу и доводят водный объем реактива до 1 л.

Реактив Эрлиха. 0,7 г п-диметиламинобензальдегида растворяют в 150 мл концентрированной соляной кислоты, приливают к 100 мл воды и смешивают. Раствор должен быть бесцветным или слегка желтым. Хранят в посуде из темного стекла. Реактив стабилен.

Реактив Эрлиха. 1 г п-диметиламинобензальдегида растворяют в мерной колбе на 50 мл в 35 мл ледяной уксусной кислоты, добавляют 8 мл 57%-ной хлорной кислоты и доводят до метки ледяной уксусной кислотой. Хранят в посуде из темного стекла в холодильнике не более недели.

Спиртовой раствор тимола (10%). 10 г очищенного тимола растворяют в 100 мл 96? этилового спирта. Получение очищенного тимола проводят следующим образом. 100 г тимола растворяют в 100 мл 96? этилового спирта, фильтруют. К фильтрату добавляют 1 л холодной дистиллированной воды, сильно встряхивают и оставляют стоять на 20 мин. Фильтруют и кристаллы, оставшиеся на фильтре, промывают два раза холодной дистиллированной водой. Сушат вначале на фильтровальной бумаге, потом в течение 2-3 дней в эксикаторе над безводным хлористым кальцием до постоянного веса.

Стандартный раствор. Приготовление стандартного раствора проводится смешением двух растворов: 1) 0,0962 н раствор хлористого бария: 1,175 г кристаллического BaCl2•2H2O растворяют в 100 мл воды в мерной колбе. 2) 0,2 н раствор серной кислоты. Далее получают суспензию сульфата бария: 3 мл 0,0962 н раствора хлористого бария вливают в мерную колбу на 100 мл и доводят объем 0,2 н раствором серной кислоты при температуре +10?С (при этой температуре размеры частиц преципитированного сульфата бария дают относительно стабильный результат).

Субстратно-буферный раствор: в пробирку наливают 10 мл воды и добавляют 0,028 г L-глутамил-п-нитроанилина и 0,082 г хлорида натрия и, не переставая перемешивать, растворяют содержимое пробирки на кипящей водяной бане в течение 60 сек. Затем раствор охлаждают до 37?С и добавляют 2,5 мл буферного раствора. Приготовленный раствор субстрата во время работы хранят в водяной бане при 37?С. Неиспользованный раствор субстрата можно хранить в холодильнике в течение недели. Субстрат плохо растворим и при комнатной температуре выпадает в осадок. Поэтому перед употреблением выкристаллизовавшийся субстрат растворяют нагреванием в кипящей водяной бане. Нагревание и растворение субстрата можно повторять не более двух раз.

Субстратный раствор для определения АлАТ (раствор № 1). Навески 29,2 мг б-кетоглутаровой кислоты и 1,78 г аланина (0,89 г б-аланина) взвешивают на аналитических весах и растворяют в 1 М растворе гидроксида натрия до полного растворения осадка (рН 7,4). Раствор переливают в колбу вместимостью 100 мл и доводят объем до метки 0,1 М фосфатным буфером (рН 7,4). Добавляют 1 каплю хлороформа. Раствор хранят в холодильнике в замороженном состоянии.

Субстратный раствор для определения АсАТ (раствор № 2). Навески 29,2 мг б-кетоглутаровой кислоты и 2,66 г б-аспарагиновой кислоты (1,33 г б-аспарагиновой кислоты) взвешивают на аналитических весах. Далее раствор готовят так же, как раствор № 1.

Субстратный раствор для определения глюкозофосфатизомеразы. Готовят мединалово-ацетатный буферный раствор с рН 7,4 (9,714 г ацетата натрия и 14,714 г мединала растворяют в воде и доводят объем до 500 мл). Смешивают 8,33 мл 0,03 М раствора двунатриевой соли глюкозо-6-фосфата с 25 мл мединалово-ацетатного буфера; добавляют к смеси 25 мл 0,1 М раствора соляной кислоты и доводят водой до 100 мл. Хранят на холоду.

Субстратный раствор для определения лактатдегидрогеназы. Смешивают по 1 мл 1 М раствора лактата натрия, 9 М раствора NаCl, 0,05 M Cl2, раствора НАД концентрации 10 г/л. Добавляют к содержимому по 2,5 мл 0,5 М раствора фосфатного буфера (рН 7,4) и 1 г/л раствора нитротетразолиевого синего. Перед употреблением к смеси прибавляют 0,25 мл раствора фенанзинметасульфата концентрации 1 г/л.

Субстратный раствор для определения фруктозобисфосфатальдолазы. 270 мг бариевой соли фруктозобисфосфата растворяют в 3,5 мл 1 М раствора соляной кислоты. Добавляют 1 мл 14%-ного раствора сульфата натрия, а выпавший при этом осадок удаляют центрифугированием. К надосадочной жидкости добавляют 1 каплю сульфата натрия. Появление мути свидетельствует о недостаточно полном осаждении ионов бария. В этом случае добавляют еще сульфата натрия и вновь центрифугируют. Центрифугат доводят 3%-ным раствором гидроксида натрия до рН 7,4-7,6, переносят в колбу вместимостью 25 мл и объем доводят до метки. Полученный раствор смешивают с 25 мл 0,56 М раствора гидразинхлорида, 25 мл 0,002 М раствора моноиодуксусной кислоты, 100 мл 0,5%-ного раствора карбоната натрия и 25 мл дистиллированной воды. Хранят в холодильнике.

Тимолово-вероналовый буфер. В мерной колбе на 100 мл смешивают 80 мл буферного раствора и 1 мл 10%-ного спиртового раствора тимола, встряхивают и доливают буферным раствором до метки. Величина рН должна составить 7,55.

о-Толуидиновый реактив. 0,15 г тиомочевины растворяют в 94 мл ледяной уксусной кислоты и смешивают с 6 мл перегнанного О-толуидина. Хранят в темной склянке.

Фенол, насыщенный водой. В 100 г перегнанного фенола добавляют 35 мл воды и перемешивают, слегка подогревая смесь для ускорения растворения фенола.

Фенолфталин, рабочий раствор. Готовят, растворяя 75 мг вещества в 15 мл 0,1 н раствора гидроксида натрия, раствор должен быть бесцветным или слегка розоватым, окрашенные растворы для работы не пригодны. Для увеличения стойкости реактива к нему добавляют 3 мг трилона, который, связывая соли тяжелый металлов, препятствует самоокислению фенолфталеина кислородом воздуха.

Фибрин. Фибрин бычьей крови отмывают от кровяных пигментов в проточной воде в течение нескольких дней до получения белого сгустка. Воду отжимают, а фибрин, залитый глицерином, хранят в плотно укупоренной банке. Перед употреблением фибрин отмывают от глицерина.

Фосфорно-ванилиновый реактив. 4 части (по объему) концентрированной ортофосфорной кислоты смешивают с 1 частью 0,6%-ного водного раствора ванилина. Реактив хранят в посуде из темного стекла при комнатной температуре.

Фруктозо-1,6-бисфосфат, натриевая соль. 2,0 мл 10%-ного раствора натриевой соли фруктозо-1,6-бисфосфата разводят в колбе на 25 мл водой до метки. Стабилен при условии хранения в холодильнике.

Цветной реактив на мочевину. Таблетку из набора для определения мочевины, содержащую диацетилмонооксим и тиосемикарбазид, растворяют при нагревании в колбе на 50 мл. Раствор устойчив в течение трех недель. Перед употреблением смешивают равные объемы приготовленного раствора и 9,6%-ного раствора серной кислоты.

Щелочной раствор в-глицерофосфата. В мерную колбу вместимостью 100 мл вносят 1 г в-глицерофосфата натрия и 0,85 г мединала, приливают около 30 мл дистиллированной воды, растворяют и доводят водой объем до метки. В другую мерную колбу вместимостью 100 мл вносят 50 мл приготовленного раствора в-глицерофосфата, 2,8 мл 0,1 М раствора гидроксида натрия и доводят дистиллированной водой до метки (рН раствора 8,6). Наслаивают на жидкость около 3 мл толуола. Хранят раствор в холодильнике не более 10 дней.

Размещено на Allbest.ru


Подобные документы

  • Работа и зона мощности, выполняемая спринтером бегуном в соревновательных условиях. Соотношение аэробных и анаэробных процессов в организме при ее выполнении. Биохимические изменения в мышцах, крови и моче спортсмена. Антиоксидантные системы организма.

    курсовая работа [448,4 K], добавлен 01.12.2013

  • Физико-химическая характеристика сточных вод. Связь структуры некоторых веществ, содержащихся в сточных водах коксохимического производства и их способность к биохимическому распаду. Технологические схемы биохимических установок для очистки стоков.

    курсовая работа [733,6 K], добавлен 12.05.2014

  • Гликозиды — органические соединения, история их изучения и свойства. Ботаническая, фармакологическая и химическая классификация. Образование гликозидов в растениях, их роль и методы выделения. Качественные реакции и количественное определение гликозидов.

    презентация [1,6 M], добавлен 02.12.2015

  • Характеристика химических свойств актинидов. Количественное определение трансплутониевых элементов. Отделение осаждением неорганическими и органическими реагентами. Методы выделения и разделения трансплутониевых элементов. Получение металлического урана.

    реферат [75,3 K], добавлен 03.10.2010

  • Методы фотометрического анализа. Количественное определение веществ в газовой хроматографии. Сущность амперометрического титрования. Природа происхождения атомных спектров. Типы радиоактивных превращений, используемых в радиометрических методах анализа.

    контрольная работа [222,2 K], добавлен 17.05.2014

  • Факторы, влияющие на скорость реакции: концентрация реагирующих веществ или давление, природа реагирующих веществ, температура процесса и наличие катализатора. Пример гомогенных и гетерогенных реакций. Принцип Ле Шателье. Распределение молекул по энергии.

    лекция [144,0 K], добавлен 22.04.2013

  • Методы окислительно-восстановительного титрования. Основные окислители и восстановители. Факторы, влияющие на окислительно-восстановительные реакции. Применение реакции окисления-восстановления в анализе лекарственных веществ. Растворы тиосульфата натрия.

    презентация [1,0 M], добавлен 21.10.2013

  • Способы выделения, очистки и анализа органических веществ. Получение предельных, непредельных и ароматических углеводородов, спиртов, карбоновых кислот. Получение и разложение фенолята натрия. Методы выделения белков. Химические свойства жиров, ферментов.

    лабораторная работа [201,8 K], добавлен 24.06.2015

  • Хроматографическая система - метод разделения и анализа смесей веществ. Механизм разделения веществ по двум признакам. Сорбционные и гельфильтрационные (гельпроникающие) методы. Адсорбционная, распределительная, осадочная и ситовая хроматография.

    реферат [207,8 K], добавлен 24.01.2009

  • Влияние природы газа-носителя и его параметров на качество разделения веществ. Основные требования к газу-носителю. Газовая хроматография с применением паров. Природа неподвижной жидкости. Полярные и неполярные соединения. Образование водородной связи.

    реферат [18,5 K], добавлен 10.02.2010

Работы в архивах красиво оформлены согласно требованиям ВУЗов и содержат рисунки, диаграммы, формулы и т.д.
PPT, PPTX и PDF-файлы представлены только в архивах.
Рекомендуем скачать работу.